王曉凡,熊光權(quán),汪 蘭,王海濱
(1.武漢工業(yè)學(xué)院食品科學(xué)與工程學(xué)院,湖北武漢430023;2.湖北省農(nóng)業(yè)科學(xué)院農(nóng)產(chǎn)品加工與核農(nóng)技術(shù)研究所,湖北武漢430064)
油菜在世界油料作物產(chǎn)量中位居前三。20世紀(jì)80年代以來,我國(guó)的油菜種植面積和產(chǎn)量都穩(wěn)居世界第一位,菜籽中約含21%—24%的蛋白[1]。菜籽蛋白是指油菜籽榨油后從菜籽餅中提取的蛋白質(zhì),菜籽餅中蛋白質(zhì)含量在30%—40%[2],雖然本身營(yíng)養(yǎng)價(jià)值較高,是一種潛在的優(yōu)質(zhì)植物蛋白資源,但由于其中還含有較多的硫甙和植酸等抗?fàn)I養(yǎng)因子,因而大大限制了其在飼料、食品等行業(yè)的利用程度。筆者以自制的多菌種復(fù)合固態(tài)發(fā)酵脫毒后的菜籽粕為原料,初步探索發(fā)酵菜籽蛋白的優(yōu)化提取工藝,對(duì)發(fā)酵菜籽蛋白資源的開發(fā)利用具有重要意義。
本文利用傳統(tǒng)簡(jiǎn)便的堿提酸沉的方法提取發(fā)酵菜籽蛋白,并用響應(yīng)面分析法優(yōu)化各個(gè)影響因素的提取條件,主要研究了pH值、溫度、料液比3個(gè)因素對(duì)發(fā)酵菜籽蛋白提取率的影響,以期為發(fā)酵菜籽蛋白的進(jìn)一步開發(fā)利用提供一定的理論參考。
菜籽粕由中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)院油料作物研究所提供,經(jīng)多菌種復(fù)合固態(tài)發(fā)酵后得到本試驗(yàn)的原料即發(fā)酵菜籽粕。發(fā)酵菜籽粕的主要成分見表1。
表1 發(fā)酵菜籽粕的主要成分 /%
數(shù)顯鼓風(fēng)干燥箱:GZX-9070ME,上海博迅實(shí)業(yè)有限公司醫(yī)療設(shè)備廠;分析天平:AL204,METTLER TOLEDO;馬弗爐:DRZ-4型,上海實(shí)驗(yàn)電爐廠;分光光度計(jì):715型,上海分析儀器廠。
1.3.1 堿提酸沉工藝[3]
稱取一定量的發(fā)酵菜籽粕,調(diào)節(jié)反應(yīng)溫度、料液比、pH值三個(gè)參數(shù),攪拌20 min浸提3次后靜置,將料液進(jìn)行3500 r/min離心20 min后取上清液。上清液用0.5 mol/L HCl分別調(diào)節(jié)pH值到3.8和5.8,再分別離心20 min,將沉淀調(diào)至中性后冷凍干燥,即得發(fā)酵菜籽蛋白。
式中,W0為上清液中發(fā)酵菜籽蛋白質(zhì)質(zhì)量,W1為發(fā)酵菜籽粕中總蛋白質(zhì)量。
1.3.2 響應(yīng)面法對(duì)堿提發(fā)酵菜籽蛋白條件的優(yōu)化[4-6]
結(jié)合各個(gè)影響因子的單因素試驗(yàn)結(jié)果,對(duì)pH值、溫度、料液比3個(gè)因素進(jìn)行因素水平試驗(yàn)的優(yōu)化設(shè)計(jì),利用專業(yè)軟件Designer—Expert 7.0進(jìn)行數(shù)據(jù)擬合處理,試驗(yàn)因素水平見表2。
表2 發(fā)酵菜籽蛋白提取工藝試驗(yàn)因素水平
1.3.3 酸沉發(fā)酵菜籽蛋白的優(yōu)化
選取調(diào)節(jié)pH2.8—7.8,對(duì)提取出的發(fā)酵菜籽蛋白溶液進(jìn)行沉淀,以發(fā)酵菜籽蛋白的沉淀率為指標(biāo)進(jìn)行參數(shù)優(yōu)化。
式中,W0為上清液中發(fā)酵菜籽蛋白質(zhì)質(zhì)量[7],W2為發(fā)酵菜籽蛋白制品的質(zhì)量。
蛋白含量的測(cè)定:采用凱氏定氮法,參照GB/T 9823-2008。
水分含量的測(cè)定:采用常壓干燥法,參照GB/T 5009.3-2003。
脂肪含量的測(cè)定:采用索氏提取法,參照GB/T 5009.6-2003。
灰分的測(cè)定:采用碳化灼燒法,參照 GB/T 5009.4-2003。
硫甙含量的測(cè)定:氯化鈀分光光度計(jì)法[8]。
植酸含量的測(cè)定:三氯化鐵比色法[9]。
2.1.1 不同提取pH值對(duì)發(fā)酵菜籽蛋白提取率的影響
由圖1可知,發(fā)酵菜籽蛋白的提取率隨pH值的升高而升高。pH值為13時(shí)發(fā)酵菜籽蛋白提取率可達(dá)到53.15%,這是因?yàn)樵趬A性環(huán)境中發(fā)酵菜籽蛋白與水的親合力較強(qiáng)。pH值大于13時(shí),提取液逐漸變暗出現(xiàn)黑色,是發(fā)酵菜籽蛋白在強(qiáng)堿溶液中變性[5]。在所選pH值范圍內(nèi),pH值為13時(shí)發(fā)酵菜籽蛋白的提取效果較理想。
圖1 pH值對(duì)發(fā)酵菜籽蛋白提取率的影響
2.1.2 不同提取溫度對(duì)發(fā)酵菜籽蛋白提取率的影響
圖2 溫度對(duì)發(fā)酵菜籽蛋白提取率的影響
由圖2可知,發(fā)酵菜籽蛋白的提取率剛開始是隨溫度上升而增加,在55℃時(shí)發(fā)酵菜籽蛋白的提取率達(dá)到最大值,由于溫度升高,發(fā)酵菜籽蛋白的分子運(yùn)動(dòng)加劇而使蛋白提取率明顯增大。55℃之后發(fā)酵菜籽蛋白的提取率下降可能因?yàn)闇囟冗^高,發(fā)酵菜籽蛋白發(fā)生變性[5]。所以在所選溫度范圍內(nèi),在55℃時(shí)提取發(fā)酵菜籽蛋白的效果最好。
2.1.3 不同料液比對(duì)發(fā)酵菜籽蛋白提取率的影響
由圖3可知,發(fā)酵菜籽蛋白的提取率隨著料液比的增大而增加,在料液比l∶15時(shí)提取率達(dá)到最大值。在l∶15以后,發(fā)酵菜籽蛋白的提取率會(huì)逐漸下降,這是因?yàn)榱弦罕冗^大會(huì)將一些堿溶性非蛋白和水溶性蛋白物質(zhì)溶解出來[5]。所以在所選料液比范圍內(nèi),料液比為l∶15時(shí)發(fā)酵菜籽蛋白的提取效果最為理想。
圖3 料液比對(duì)發(fā)酵菜籽蛋白提取率的影響
綜合考慮發(fā)酵菜籽蛋白提取率與經(jīng)濟(jì)效益之間的關(guān)系,響應(yīng)面法優(yōu)化試驗(yàn)只考察pH值、溫度和料液比3個(gè)因素對(duì)發(fā)酵菜籽蛋白提取率的影響。以pH值(Z1)、溫度(Z2)、料液比(Z3)為自變量,以發(fā)酵菜籽蛋白的提取率為響應(yīng)值進(jìn)行響應(yīng)面優(yōu)化分析,試驗(yàn)結(jié)果見表3。方差分析表明R2=0.9947,此時(shí)回歸方程達(dá)到極顯著水平(P<0.001)。將所得試驗(yàn)數(shù)據(jù)做數(shù)學(xué)模型擬合,獲得發(fā)酵菜籽蛋白提取率與溫度(B)、pH(A)值和料液比(C)的回歸方程如下:
表3 發(fā)酵菜籽蛋白提取工藝的響應(yīng)面設(shè)計(jì)和結(jié)果
分別取pH值、溫度和料液比為零水平,考察其余2個(gè)因素的交互作用對(duì)發(fā)酵菜籽蛋白的提取率的影響,各個(gè)因素交互作用的響應(yīng)面見圖4—圖6。由各圖的曲面變化率可以清晰地看出,pH值對(duì)發(fā)酵菜籽蛋白提取率的影響最為顯著,料液比和溫度次之。經(jīng)過專業(yè)軟件分析回歸方程得到:在pH值12.4,溫度55.7℃,料液比為1∶16.2時(shí),發(fā)酵菜籽蛋白的提取率達(dá)到最大,為64.79%。此試驗(yàn)設(shè)計(jì)的中心值與優(yōu)化所得的反應(yīng)條件比較相近。并且此時(shí)兩者發(fā)酵菜籽蛋白的提取率也比較接近,這表明此回歸方程能夠較好地反映出pH值、溫度和料液比與發(fā)酵菜籽蛋白提取率的變化關(guān)系。
圖4 pH值和溫度對(duì)發(fā)酵菜籽蛋白提取率的交互影響
圖5 pH值和料液比對(duì)發(fā)酵菜籽蛋白提取率的交互影響
圖6 溫度和料液比對(duì)發(fā)酵菜籽蛋白提取率的交互影響
選用pH2.8—7.8對(duì)提取出的發(fā)酵菜籽蛋白溶液進(jìn)行沉淀,其沉淀率的變化如圖7所示。由圖7可知,在pH3.8和pH5.8時(shí)發(fā)酵菜籽蛋白的沉淀率最高,都超過69%,因此我們采用pH3.8和pH值5.8的兩步沉淀法來制備發(fā)酵菜籽蛋白,分別沉淀不同等電點(diǎn)的發(fā)酵菜籽蛋白,從而達(dá)到分離純化的目的。
圖7 不同pH值下的發(fā)酵菜籽蛋白沉淀率
(1)本試驗(yàn)利用堿提酸沉的方法初步探索了發(fā)酵菜籽蛋白的提取工藝。分別從pH值、溫度和料液比3個(gè)因素進(jìn)行了單因素分析,得出了發(fā)酵菜籽蛋白提取的最佳工藝條件,即:pH值12,溫度55℃,料液比1∶15,提取時(shí)間為20 min,提取次數(shù)為3次。
(2)在各個(gè)單因素試驗(yàn)的基礎(chǔ)上,筆者又對(duì)pH值、溫度和料液比3個(gè)因素進(jìn)行響應(yīng)面優(yōu)化分析,確定了提取發(fā)酵菜籽蛋白的最佳條件,即在pH值12.4,溫度55.7℃,料液比為1∶16.2時(shí),發(fā)酵菜籽蛋白的提取率達(dá)到最大值。
[1] 郭興鳳,周瑞寶,湯堅(jiān),等.菜籽蛋白的制備[J].鄭州工程學(xué)院學(xué)報(bào),2001,22(1):60-62.
[2] 伍坪,胡佩.油菜籽粕中蛋白質(zhì)的提取與分離研究[J].資源開發(fā)與市場(chǎng),2007,23(6):483-485.
[3] Rosenthal A,Pyle D L,Niranjan K.Mechanisms in the simultaneous aqueous extraction of oil and protein from soybean[J].Transactions of the Institute of Chemical Engineers,Part C,F(xiàn)ood and Bioproducts,1998,76:224-305.
[4] 慕運(yùn)動(dòng),朱碧,郭興鳳.RSM優(yōu)化菜籽蛋白酶水解條件及結(jié)果分析[J].河南工業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),2009,30(3):87-90.
[5] 鮑俊杰,齊海生.菜籽粕脫毒及菜籽蛋白分離的工藝研究[J].安徽農(nóng)業(yè)科學(xué),2011,39(3):1505-1507.
[6] 王金梅,張占琴,王學(xué)軍,等.菜籽蛋白的制備及其體外模擬消化[J].中國(guó)油脂,2008,33(9):10-15.
[7] Bradford M M.A rapid and sensitive method for the quantification of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye biding[J].Anal Biochem,1976,72:248-254.
[8] 劉絢霞,楊莉.分光光度法測(cè)定油菜籽中硫代葡萄糖甙[J].陜西農(nóng)業(yè)科學(xué),2002,(6):5-8.
[9] 傅啟高,李慧荃.三氯化鐵比色法測(cè)定植酸含量的研究[J].營(yíng)養(yǎng)學(xué)報(bào),1997,19(2):216-219.