章宏瓊,楊娟,周云,宋佳楠,朱憶思?jí)?,施孟如,張洪?/p>
(溫州醫(yī)學(xué)院,浙江 溫州 325035,1.仁濟(jì)學(xué)院;2.生物學(xué)實(shí)驗(yàn)教學(xué)中心)
紅樹(shù)植物秋茄ISSR條件的優(yōu)化
章宏瓊1,楊娟1,周云1,宋佳楠1,朱憶思?jí)?,施孟如2,張洪勤2
(溫州醫(yī)學(xué)院,浙江 溫州 325035,1.仁濟(jì)學(xué)院;2.生物學(xué)實(shí)驗(yàn)教學(xué)中心)
目的:探討紅樹(shù)植物秋茄簡(jiǎn)單序列重復(fù)區(qū)間擴(kuò)增多態(tài)性分子標(biāo)記(ISSR-PCR)分析的最優(yōu)條件,以獲得清晰、重復(fù)性好的簡(jiǎn)單序列重復(fù)區(qū)間擴(kuò)增多態(tài)性(ISSR)擴(kuò)增結(jié)果。方法:對(duì)ISSR-PCR多個(gè)條件中的單個(gè)條件包括DNA的提取、模板濃度、Taq酶的選擇與用量、Mg2+和三磷酸脫氧核糖核苷酸(dNTP)濃度等進(jìn)行了比較、優(yōu)化。結(jié)果:從單條件中得出每個(gè)條件的最優(yōu)條件,從而獲得清晰、重復(fù)性高的電泳圖譜。結(jié)論:秋茄ISSR-PCR分析最適宜的擴(kuò)增條件為:25μL PCR反應(yīng)體積中,0.75~1.0 U Taq DNA聚合酶,0.8μmol/L引物,0.2 mmol/L dNTP,2.0~2.5 mmol/L MgCl2,40 ng/μL模板DNA。
紅樹(shù)科;秋茄;簡(jiǎn)單序列重復(fù)區(qū)間;條件優(yōu)化
紅樹(shù)林是處于亞熱帶、熱帶海洋與陸地過(guò)渡帶的特殊生態(tài)系統(tǒng),是海岸帶的生態(tài)關(guān)鍵區(qū),具有抵抗海嘯和臺(tái)風(fēng)、調(diào)節(jié)區(qū)域氣候、維護(hù)生物多樣性等重要生態(tài)功能[1]。秋茄(Kandelia candel)是我國(guó)分布最廣的常見(jiàn)紅樹(shù)植物,其天然分布最北至福建福鼎市,人工種植最北至寧波象山港,全世界最北分布的紅樹(shù)植物也是秋茄[2]。
簡(jiǎn)單序列重復(fù)區(qū)間擴(kuò)增多態(tài)性(inter-simple sequence repeat,ISSR)DNA分析由Zietkiewicz等[3]于1994創(chuàng)建,是建立在PCR反應(yīng)基礎(chǔ)上的一種新的分子生物學(xué)技術(shù),它把隨機(jī)擴(kuò)增多態(tài)性DNA分子標(biāo)記(random amplified polymorphic DNA,RAPD)和微衛(wèi)星標(biāo)記(simple sequence repeat,SSR)的優(yōu)點(diǎn)相結(jié)合,不但具有RAPD所需DNA量少、操作簡(jiǎn)單、不需預(yù)知研究對(duì)象的基因組序列等優(yōu)點(diǎn),而且具有SSR的穩(wěn)定性[4]。因此,ISSR近年來(lái)已迅速應(yīng)用于遺傳多樣性的研究、種質(zhì)資源研究和品種鑒定,成為構(gòu)建遺傳圖譜的重要工具之一[5-6]。盡管ISSR擴(kuò)增技術(shù)原理簡(jiǎn)單,但由于PCR條件的變化,往往會(huì)出現(xiàn)不同的擴(kuò)增結(jié)果,其影響因素主要有:Mg2+的濃度、三磷酸脫氧核糖核苷酸(dNTP)濃度、Tag酶和DNA模板的濃度。
本研究通過(guò)對(duì)ISSR-PCR實(shí)驗(yàn)條件的優(yōu)化,建立重復(fù)性好、結(jié)果清晰而穩(wěn)定的秋茄ISSR的實(shí)驗(yàn)參數(shù),為進(jìn)一步研究紅樹(shù)植物秋茄種群的遺傳變異和規(guī)律奠定良好的基礎(chǔ)。
1.1 實(shí)驗(yàn)材料的采集與處理 秋茄葉片采自廈門(mén)漳江口、溫州西門(mén)島和寧波象山港。在選定的三個(gè)不同緯度居群中每隔5~10 m選擇長(zhǎng)勢(shì)良好的植株,采集當(dāng)年生的展開(kāi)完全的幼嫩葉片(倒二葉)每樹(shù)10片,用棉花蘸取足夠的水分包住莖枝條的基部,為保持葉片新鮮不變質(zhì),必須迅速放冰上保存,處理待測(cè),并于-20 ℃冰箱內(nèi)保存。
1.2 實(shí)驗(yàn)儀器與試劑 BID-RAD Gel Doc凝膠成像分析儀(美國(guó),BIO-RAD公司);Sartorius BT124S電子分析天平(上海恒剛儀器儀表有限公司);MILLIPORE F5CN29159超純水制備系統(tǒng)(美國(guó),Millipore公司);Hybaid Px2PCR梯度擴(kuò)增儀(Thermo公司);NanoDrop 2000(Thermo公司);Taq酶(大連寶生物);ISSR引物、DNA分子marker(上海捷瑞);其余瓊脂糖粉末、十六烷基三甲基溴化銨(CTAB)等常用試劑均為國(guó)產(chǎn)分析純。
1.3 秋茄DNA的提取及檢測(cè) 秋茄葉片總DNA采用改良后的CTAB法[7]提?。?% CTAB,0.1 mol/L Tris HCl pH 8.0,20 mmol/L EDTA,1.4 mol/L NaCl,1% β-巰基乙醇),獲得的DNA由NanoDrop 2000測(cè)定其濃度及純度。根據(jù)基因組DNA濃度值將樣品分別稀釋至10、20、30、40、60 ng/μL用于ISSR-PCR。
1.4 ISSR-PCR反應(yīng) PCR擴(kuò)增體系:反應(yīng)體系中含10× PCR Buffer(Mg2+free)、dNTP mixture(2.5 mmol/L)、引物(10μmol/ L)、DNA(30~50 ng)、TaKaRa Taq(5 U/μL),最后加ddH2O至25μL,用漩渦混合器對(duì)所加的各組分進(jìn)行混合。擴(kuò)增程序:94 ℃預(yù)變性5 min,之后進(jìn)行45個(gè)循環(huán),每個(gè)循環(huán)包括94 ℃變性45 s,52 ℃退火45 s,72 ℃延伸90 s,最后于72 ℃再延伸7 min。將擴(kuò)增產(chǎn)物置于4 ℃冰箱保存。將PCR擴(kuò)增產(chǎn)物用1×TAE配制的瓊脂糖凝膠電泳分離,以DNA ladder Marker(100~2000 bp) 作為相對(duì)分子質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn),在恒定電壓下電泳,電泳結(jié)束后在電泳凝膠成像系統(tǒng)中觀察記錄擴(kuò)增產(chǎn)物的泳帶,并保存圖像。
2.1 DNA提取 本實(shí)驗(yàn)提取的DNA呈無(wú)色絮狀沉淀,電泳顯示該DNA完整,并無(wú)明顯降解(見(jiàn)圖1)。將DNA溶液稀釋后用TE緩沖液為空白對(duì)照測(cè)其在260 nm及280 nm波長(zhǎng)的紫外吸收,其紫外吸收比值(A260/280) 為1.89~1.93。結(jié)果顯示改良后的CTAB法是一種提取后DNA所含雜質(zhì)少、提取方法簡(jiǎn)單的基因組DNA提取方法。所提取的秋茄DNA由NanoDrop 2000測(cè)定其濃度及純度。根據(jù)基因組DNA濃度值將樣品稀釋至特定濃度用于ISSR分析。
圖1 三個(gè)居群部分個(gè)體的總DNA
2.2 模板DNA濃度 模板DNA濃度是影響ISSR-PCR擴(kuò)增的主要因素之一。本次實(shí)驗(yàn)對(duì)比了6種用于PCR反應(yīng)的模板DNA濃度(分別為10、20、30、40、50、60 ng/μL)。結(jié)果顯示,模板DNA的濃度對(duì)ISSR結(jié)果有明顯的影響,當(dāng)模板DNA的濃度為10 ng/μL時(shí)條帶不多,而在30~50 ng/μL時(shí)均擴(kuò)增出基本相同的帶型,但當(dāng)濃度升到至60 ng/μL時(shí)擴(kuò)增的ISSR譜帶反而減少。所以在檢測(cè)秋茄遺傳多樣性研究中,我們采用的DNA模板濃度為40 ng/μL。
2.3 引物濃度 引物合適的終濃度可在0.1~1.0 μmol/L之間選擇。在控制其他條件一致時(shí),我們?cè)O(shè)置了0.2、0.4、0.6、0.8、1.0μmol/L的一系列引物濃度梯度,結(jié)果表明,引物濃度太低時(shí)(0.2~0.4μmol/L),擴(kuò)增產(chǎn)物太少甚至無(wú)擴(kuò)增條帶;引物濃度太高時(shí),又容易出現(xiàn)非特異性擴(kuò)增反應(yīng)。實(shí)驗(yàn)結(jié)果(見(jiàn)圖2)證明,在引物濃度為0.8 μmol/L時(shí)條帶最清晰,因此,在秋茄ISSR-PCR實(shí)驗(yàn)中,引物濃度為0.8μmol/L最佳。
圖2 不同模板DNA質(zhì)量濃度的ISSR擴(kuò)增結(jié)果(引物BW09481HAP)
2.4 Taq酶濃度 在ISSR-PCR的反應(yīng)體系中,Taq酶的用量會(huì)直接導(dǎo)致ISSR-PCR擴(kuò)增反應(yīng)的成功與否。當(dāng)其他反應(yīng)條件一致時(shí),我們對(duì)比設(shè)置了0.5、0.75、1.0、1.5 U的梯度Taq酶用量,結(jié)果表明,0.5 U酶含量過(guò)低,產(chǎn)物的合成效率極低,無(wú)擴(kuò)增產(chǎn)物出現(xiàn);0.75~1.0 U可以得到重復(fù)的清晰條帶,而且無(wú)非特異性擴(kuò)增;而1.5 U酶含量則過(guò)大,雖然能夠得到擴(kuò)增產(chǎn)物,但是出現(xiàn)大量的非特異性擴(kuò)增,同時(shí)擴(kuò)增產(chǎn)物主帶相連,分離效果低,模糊難以辨認(rèn)。因此,在秋茄ISSR-PCR實(shí)驗(yàn)中,Taq酶的使用量在0.75~1.0 U范圍內(nèi)為最佳。
2.5 Mg2+濃度 Mg2+濃度也是ISSR-PCR的一個(gè)重要影響因素。Mg2+作為T(mén)aq酶的輔助因子,其濃度不僅可以影響反應(yīng)液中的dNTP、模板DNA及引物結(jié)合效率,也會(huì)影響Taq酶活性,影響模板與PCR產(chǎn)物的解鏈溫度以及引物二聚體的形成和產(chǎn)物的特異性[8]。本實(shí)驗(yàn)對(duì)所采用的每個(gè)引物均設(shè)置了Mg2+濃度梯度的比較,即1.5、2.0、2.5、3.0、3.5 mmol/L。結(jié)果表明,在ISSR-PCR反應(yīng)液中,當(dāng)Mg2+濃度為1.5 mmol/L時(shí),無(wú)擴(kuò)增產(chǎn)物出現(xiàn);濃度為2.0~2.5 mmol/L時(shí)能得到清晰重復(fù)性好的條帶,而且無(wú)非特異性擴(kuò)增;當(dāng)濃度為3.0~3.5 mmol/L時(shí)雖然也能得到擴(kuò)增條帶,但是條帶變少,而且具有非特異性擴(kuò)增。所以,Mg2+濃度我們采用2.5或2.0 mmol/L,但是不同的引物對(duì)反應(yīng)系統(tǒng)中的Mg2+濃度要求不同,根據(jù)引物而決定其濃度。在一般的秋茄DNA的PCR反應(yīng)中,2.0~2.5 mmol/L Mg2+較為合適[9]。
2.6 dNTP濃度 dNTP為ISSR-PCR反應(yīng)提供原料。為了確定最適合的dNTP量,分別設(shè)置0.12、0.16、0.20 mmol/L的dNTP濃度梯度(Mg2+濃度設(shè)定為2.0 mmol/L)。結(jié)果表明,dNTP濃度為0.20 mmol/L時(shí)能得到清晰的條帶,而且沒(méi)有非特異性擴(kuò)增;當(dāng)dNTPs的濃度過(guò)低(低于0.20 mmol/L)時(shí),會(huì)出現(xiàn)條帶不清晰或非特異性擴(kuò)增條帶;當(dāng)濃度高于0.20 mmol/L時(shí),條帶數(shù)量會(huì)急劇減少甚至全部消失,可能是因?yàn)閐NTP濃度過(guò)高會(huì)螯和大量Mg2+從而造成Taq DNA聚合酶活性降低,最終導(dǎo)致擴(kuò)增量減少甚至整個(gè)反應(yīng)失敗[10]。所以我們認(rèn)為dNTP濃度為0.20 mmol/L是秋茄ISSR的最佳濃度。
影響ISSR結(jié)果的因素很多,本次實(shí)驗(yàn)采取單因素方法來(lái)優(yōu)化條件,結(jié)果顯示每個(gè)單因素的優(yōu)化并不能使ISSR-PCR有最好的結(jié)果。綜合多個(gè)單因素優(yōu)化條件得出紅樹(shù)植物秋茄ISSR-PCR分析較適宜的擴(kuò)增條件是:25μL PCR反應(yīng)體積中,0.75~1.0 U Taq DNA聚合酶,0.8μmol/L引物,0.2 mmol/L dNTP,2.0~2.5 mmol/L MgCl2,40 ng/μL模板DNA。我們利用此優(yōu)化系統(tǒng),順利地從9個(gè)引物中篩選出擴(kuò)增條帶清晰、重復(fù)性好的4個(gè)引物(BW09461HAP、BW09480HAP、BW09481HAP、BW09492HAP)作為正式擴(kuò)增的引物。結(jié)果表明優(yōu)化后的PCR反應(yīng)體系中秋茄3個(gè)居群,24個(gè)個(gè)體均可擴(kuò)增出明顯條帶。圖3為選用BW09481HAP引物(CTCTCTCTCTCTCTCTRG),對(duì)三個(gè)居群的24個(gè)個(gè)體進(jìn)行ISSR-PCR擴(kuò)增,得到清晰、多態(tài)性高的ISSR帶譜,并具有較好的重復(fù)性。而圖4為引物BW09497HAP對(duì)24個(gè)個(gè)體的ISSR-PCR擴(kuò)增結(jié)果,對(duì)比可見(jiàn)圖4的ISSR帶譜沒(méi)有圖3清晰、重復(fù)性好,由此可知:只有進(jìn)行了PCR條件的優(yōu)化才能進(jìn)行引物的篩選,篩選出適合該物種的引物,進(jìn)行下一步研究。
圖3 優(yōu)化的ISSR-PCR系統(tǒng)對(duì)三個(gè)居群(寧波、溫州、廈門(mén))24個(gè)體擴(kuò)增的ISSR帶型(引物BW09481HAP)
圖4 優(yōu)化的ISSR-PCR系統(tǒng)對(duì)三個(gè)居群(寧波、溫州、廈門(mén))24個(gè)體擴(kuò)增的ISSR帶型(引物BW09497HAP)
綜上所述,本研究?jī)?yōu)化了秋茄植物ISSR的反應(yīng)體系和程序,并篩選出適宜秋茄種質(zhì)資源分子鑒定的ISSR引物,這將為更好地利用秋茄種植資源進(jìn)行育種及相關(guān)研究提供幫助。
[1] Nagelkerken I, Blaber SJM, Bouillon S, et al. The habitat function of mangroves for terrestrial and marine fauna:A review[J]. Aquatic Botany, 2008, 89(2):155-185.
[2] 仇建標(biāo), 黃麗, 陳少波, 等. 強(qiáng)潮差海域秋茄生長(zhǎng)的宜林臨界線[J]. 應(yīng)用生態(tài)學(xué)報(bào), 2010, 21(5):1252-1257.
[3] Zietkiewicz E, Rafalski A, Labuda D. Genome fingerprinting by simple sequence repeats (SSR) -anhored polymerase chain reaction amplification[J]. Genomics, 1994, 20(2):176-183.
[4] 何予卿, 張宇, 孫梅, 等. 利用ISSR分子標(biāo)記研究栽培稻和野生稻親緣關(guān)系[J]. 農(nóng)業(yè)生物技術(shù)學(xué)報(bào), 2001, 9(2):123-127.
[5] Gilbert JE, Lewis RV, Wilkinson MJ, et al. Developing an appropriate strategy to assess genetic variability in plant germplasm collections[J].Theor Appl Genet, 1999, 98(6-7):1125-1131.
[6] Bornet B, Goraguer F, Joly G, et al. Genetic diversity in European and Argentinian cultivated potatoes (Solanum tuberosum subsp.tuberosum) detected by intersimple sequence repeats(ISSRs)[J]. Genome, 2002, 45(3):481-484.
[7] Rogers OS, Bendich AJ. Extraction of DNA plant tissue,plant molecular[M]. Gelvin SB, Schilpe RA, Verna DS. Plant molecular biology manual. Dordecht:Kluwer Academic Publishiers,1988:1-10.
[8] 林萬(wàn)明. PCR技術(shù)操作和應(yīng)用指南[M]. 北京:人民軍醫(yī)出版社, 1993:7-14.
[9] 盧圣棟. 現(xiàn)代分子生物學(xué)實(shí)驗(yàn)技術(shù)[M]. 2 版.北京:中國(guó)協(xié)和醫(yī)科大學(xué)出版社, 1999.
[10] 文曉鵬, 鄧秀新. 刺梨及其近緣種PCR實(shí)驗(yàn)體系的建立與優(yōu)化[J]. 果樹(shù)學(xué)報(bào), 2003, 20(1):35-39.
Q503
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1000-2138(2012)06-0566-03
2012-05-14
章宏瓊(1990-),女,浙江三門(mén)人,本科生?,F(xiàn)工作單位為臺(tái)州市三門(mén)縣恒康制藥有限公司。
張洪勤,高級(jí)實(shí)驗(yàn)師,Email:zh429@126.com。
丁敏嬌)
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