楊 欣,劉 杰,劉 瑛,吳永林,范鳳鳴,劉 輝,張鵬艷,李玉華
(成都生物制品研究所有限責(zé)任公司,四川 成都 610023)
流行型感冒(流感)是一種常見的急性呼吸道傳染病,由甲、乙、丙三型流感病毒引起,接種流感疫苗是預(yù)防流感的有效手段。雞胚尿囊腔接種是常用的流感病毒培養(yǎng)方法,它具有病毒產(chǎn)量高,操作簡(jiǎn)便,經(jīng)濟(jì)實(shí)用等優(yōu)點(diǎn)。然而雞胚尿囊病毒液常含有雞胚中的雜蛋白,其中卵清蛋白是引起疫苗使用者過敏的主要物質(zhì)之一,所以雞胚尿囊病毒液的純化是制備流感疫苗的關(guān)鍵技術(shù)。目前純化病毒的方法主要有超濾法、超速離心法和柱色譜法[1-3]。本文采用中空纖維柱超濾和分子篩色譜的方法純化雞胚流感病毒。
750 kD中空纖維超濾系統(tǒng)(Quixstand Benchtop System,GE公司);K50/100柱、P-50泵、Uvis 920檢測(cè)儀、REC 112記錄儀(Phamacia公司)。
流感病毒毒種(H1N1 NYMC X-181 reassortant、H3N2 NYMC X-187 reassortant、B NYMC BX-35 reassortant)、標(biāo)準(zhǔn)抗原及標(biāo)準(zhǔn)抗血清均來自英國國家生物制品檢定所(NIBSC);海藍(lán)白種蛋購自北京藍(lán)風(fēng)養(yǎng)殖有限公司;卵清蛋白ELISA檢測(cè)試劑盒,Seramun Diagnostica GmbH公司產(chǎn)品;預(yù)染蛋白標(biāo)準(zhǔn),New England Biolabs(NEB)產(chǎn)品;兔抗甲流(H1N1)病毒HA單克隆抗體購自Sino Biological Inc.;羊抗兔IgG(AP標(biāo)記)購自Sigma公司。
從工作毒種庫中取毒種1支,1∶10 000倍稀釋,接種于10 d齡雞胚尿囊腔,經(jīng)33~35℃培養(yǎng)48~72 h后,篩選活胚置2~8℃冷胚24 h,收獲病毒尿囊液,尿囊液血凝滴度應(yīng)不低于1∶160,微生物限度檢測(cè)符合《中國藥典》要求[4]。尿囊液中加入甲醛至終濃度1:5 000,2~8℃放置7 d,滅活病毒。
將滅活的單價(jià)病毒尿囊液用5,3和1 μm濾器過濾后,再用750 kD中空纖維超濾系統(tǒng)超濾濃縮至50倍,緩沖液為pH 7.2,0.01 mol/L磷酸鹽緩沖液(PBS)。
用K50/100的Sepharose 4FF凝膠色譜柱,平衡緩沖液和洗脫緩沖液為pH 7.2,0.01 mol/L PBS;流速為15 mL/min;收集洗脫峰,用直接血凝法測(cè)定洗脫峰的血凝滴度,以確定流感病毒峰。
在經(jīng)過一次Sepharose 4FF凝膠色譜純化的流感病毒液中加入終濃度為0.6%的Triton N-101,25 ℃ 震搖 2 h[5]。
采用直接血凝法,在96孔U型板中每孔加入生理鹽水25 μL,取待檢樣品 25 μL,從第一孔開始做倍比稀釋,最后一孔棄掉液體25 μL,每孔加入1%雞紅細(xì)胞懸液25 μL,同時(shí)做血球?qū)φ?,振蕩均勻后?5℃ 40 min,觀察結(jié)果,50%血球發(fā)生凝集的最高稀釋度為待檢樣品血凝滴度。
用卵清蛋白ELISA檢測(cè)試劑盒,按說明書操作,用酶標(biāo)儀檢測(cè)450 nm波長處的吸光度值(參比波長620 nm),然后用直線回歸方程計(jì)算待檢樣品的卵清蛋白含量。
采用單向免疫擴(kuò)散法,將適量的標(biāo)準(zhǔn)抗體(參考NIBSC根據(jù)不同型別的流感病毒的推薦量)加入56℃,1.5%瓊脂糖中,倒在玻璃板上,凝固后用直徑為3 mm的打孔器打孔;將待檢樣品和標(biāo)準(zhǔn)抗原用10%Zwittergent 3-14 Detergent裂解劑,室溫裂解30 min,每孔加入樣品 10 μL,擴(kuò)散 24 h,PBS 浸泡 2 h,晾干,0.5%考馬斯亮藍(lán)染色10 min,脫色后測(cè)定標(biāo)準(zhǔn)品和待檢樣品擴(kuò)散圈直徑,采用直線回歸方程計(jì)算。
濃縮膠4%,分離膠12%,用還原樣品處理液(含 β-巰基乙醇)處理,上樣量 5 μg,200 V 電泳,考馬斯亮藍(lán)染色。
SDS-PAGE電泳后,用半干電轉(zhuǎn)儀將樣品轉(zhuǎn)移到硝酸纖維膜上,兔抗甲流(H1N1)病毒HA單克隆抗體加量是 2 μg/mL,AP標(biāo)記到羊抗兔 IgG按1∶5 000加入,用 NBT/BCIP 顯色。
采用 Lowry法測(cè)定[4]。
用750 kD中空纖維柱超濾濃縮,將分子質(zhì)量較大的流感病毒截流,部分小分子雜質(zhì)如卵清蛋白被去除,達(dá)到濃縮提純的目的。
用此方法超濾了7批流感病毒尿囊液,卵清蛋白去除率在76.53% ~93.66%之間,結(jié)果見表1。結(jié)果顯示中空纖維柱超濾能有效地去除卵清蛋白等小分子雜蛋白。
表1 中空纖維濾柱超濾病毒尿囊液后卵清蛋白去除率Tab.1 Removal rate of ovalbumin after hollow fiber filtration
收集Sepharose 4FF凝膠色譜的洗脫峰1和峰2,用直接血凝法測(cè)定洗脫峰血凝滴度,確認(rèn)流感病毒主要在洗脫峰1,見圖1。
圖1 流感病毒第一次Sepharose 4FF凝膠色譜圖Fig.1 The first Sepharose 4FF chromatography of influenza virus
凝膠色譜上樣量過多,會(huì)影響分離純化效果。比較了上樣量為柱床體積的3%,4%和5%的分離純化效果,結(jié)果見表2??梢娚蠘恿啃∮谥搀w積的5%時(shí),洗脫峰1的卵清蛋白含量、總蛋白含量與血凝素含量的比值均較低,純化效果較好。
采用中空纖維柱超濾濃縮、二次Sepharose 4FF凝膠色譜的純化工藝,純化了7批流感病毒,結(jié)果見表3。純化后流感病毒鑒別試驗(yàn)均與推薦病毒株一致,總蛋白含量與血凝素含量比值小于4.5,卵清蛋白含量也均小于500 ng/mL,符合《中國藥典》的要求[4]。
表2 凝膠色譜不同上樣量純化結(jié)果比較Tab.2 Chromatography results with different amounts of samples
表3 7批流感病毒的純化結(jié)果Tab.3 Purification results of 7 batches of influenza virus
將流感病毒超濾濃縮、一次Sepharose 4FF色譜和二次Sepharose 4FF色譜樣品與英國NIBSC的標(biāo)準(zhǔn)抗原進(jìn)行SDS-PAGE電泳,結(jié)果(圖2)顯示,經(jīng)過純化,雜蛋白逐漸減少,二次Sepharose 4FF色譜樣品與英國NIBSC的標(biāo)準(zhǔn)抗原的電泳條帶沒有明顯差別,在47和29 kD處均有明顯的蛋白條帶。Western免疫印跡也顯示,二次Sepharose 4FF色譜樣品(還原和非還原處理)的血凝素條帶與英國NIBSC的標(biāo)準(zhǔn)抗原的一致,在29和76 kD分別有HA2和HA0的特異性條帶(圖3)。
圖2 流感病毒純化樣品SDS-PAGE電泳圖Fig.2 SDS-PAGE of purified influenza virus samples
流感疫苗是用WHO推薦的當(dāng)年流行的流感病毒株制備的,包括H1N1、H2N3和B型流感病毒。本文采用的純化工藝包括中空纖維柱超濾、一次Sepharose 4FF凝膠色譜、裂解和二次Sepharose 4FF凝膠色譜,通過中空纖維超濾,可以去除大部分的卵清蛋白,而且中空纖維超濾是一種較柔和的超濾方法,它的開放流路在濃縮病毒時(shí)不易堵膜且不易聚集。二次Sepharose 4FF凝膠純化,去除了更多的雜蛋白,純化后樣品卵清蛋白殘留量、總蛋白含量與血凝素含量之比值均符合《中國藥典》的要求。該純化工藝操作較蔗糖密度梯度離心操作簡(jiǎn)單,更節(jié)約時(shí)間和成本,還可按比例線性放大數(shù)十至數(shù)百倍,且采用柱色譜技術(shù)純化流感病毒,更容易對(duì)制品生產(chǎn)的中間過程進(jìn)行控制。
圖3 流感病毒純化樣品Western免疫印跡圖片F(xiàn)ig.3 Western blot of purified influenza virus samples
血凝素是流感疫苗刺激機(jī)體產(chǎn)生中和抗體的主要抗原,它首先在細(xì)胞內(nèi)質(zhì)網(wǎng)合成分子質(zhì)量為76 kD、含有562~566個(gè)氨基酸的血凝素前體(HA0);隨后HA0分子水解成為HA1(分子質(zhì)量47 kD)和HA2(分子質(zhì)量為29 kD)兩個(gè)多肽,HA1和HA2靠二硫鍵相連[6]。SDS-PAGE電泳時(shí),用含 β-巰基乙醇樣品處理液處理后,二次Sepharose 4FF色譜樣品與英國NIBSC的標(biāo)準(zhǔn)抗原在47和29 kD處均有明顯的蛋白條帶,而Western免疫印跡使用的兔抗甲流(H1N1)病毒HA單克隆抗體與血凝素的結(jié)合位點(diǎn)在HA2,所以在29和76 kD分別有HA2和HA0的特異性條帶,而HA1未顯色。
綜上,通過上述工藝純化后,3個(gè)型的流感病毒純度均達(dá)到2010版《中國藥典》的要求,而且純化后樣品經(jīng)SDS-PAGE電泳和Western免疫印跡證實(shí),電泳條帶和血凝素特異性條帶與購自英國NIBSC的標(biāo)準(zhǔn)品一致。
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