姬新穎,李 濤,劉瑞敏,白慧玲,牛保華,婁 強,馬遠方
(河南大學(xué)醫(yī)學(xué)院 河南省細胞與分子免疫學(xué)重點實驗室,河南 開封475004)
在動脈粥樣硬化發(fā)生機制中,免疫學(xué)說越來越引起人們的重視。在動脈粥樣硬化發(fā)生發(fā)展過程中,諸如氧化型低密度脂蛋白、熱休克蛋白、病原微生物和β3糖蛋白Ⅰ等相關(guān)抗原與抗體相繼被發(fā)現(xiàn)證實由上述抗原或抗體誘發(fā)的免疫反應(yīng),包括天然免疫和獲得性免疫都在動脈粥樣硬化過程中起作用,尤其是在早期。研究發(fā)現(xiàn)免疫細胞在粥樣硬化斑塊中聚集,說明免疫在動脈粥樣硬化發(fā)展和轉(zhuǎn)歸中也起作用。加強動脈粥樣硬化免疫機制的研究,確定動脈粥樣硬化的免疫學(xué)性質(zhì),尤其探索天然免疫在動脈粥樣硬化發(fā)生早期的作用,有助于徹底闡明動脈粥樣硬化的發(fā)生機制。動脈粥樣硬化是一種漸進的、復(fù)雜的、無痛感的組織病變過程,是心腦血管系統(tǒng)的常見疾病。近年來發(fā)現(xiàn),動脈粥樣硬化過程除了與傳統(tǒng)的動脈粥樣硬化危險因素有關(guān)外,還與感染、炎癥和自身免疫等因素有關(guān)。動脈粥樣硬化的發(fā)生完全符合Witebsky和Rose提出的關(guān)于自身免疫疾病的四條規(guī)則。免疫系統(tǒng)的各個成員(細胞因子、自體抗原、自體抗體)在動脈粥樣硬化形成過程中起著同樣重要的作用。
血液流經(jīng)血管主要產(chǎn)生2種機械力——WSS和CS。前者與血管長軸平行,作用于血管內(nèi)皮細胞(EC),后者是垂直于血管壁的環(huán)形張力,作用于血管壁所有細胞,包括內(nèi)膜EC、中膜平滑肌細胞(SMC)和外膜成纖維細胞[1-2]。血流對血管內(nèi)皮細胞的作用力WSS被認(rèn)為在引起血管張力和內(nèi)徑改變,血管壁慢性重塑和動脈疾病(動脈粥樣硬化和內(nèi)膜增生)方面起著非常突出的作用[3-4]。由于 WSS是如此重要的血管機械力,所以美國生物醫(yī)學(xué)工程學(xué)會原主席,國際心血管動力學(xué)研究權(quán)威Tarbell教授率領(lǐng)的研究組研究多年,致力于搞清何種力可以影響WSS的幅度、時間和空間分布,及其對內(nèi)皮細胞所產(chǎn)生的生物學(xué)效應(yīng)。
圖1 作用于內(nèi)皮細胞單層的應(yīng)力模式示意圖
Tarbell小組首先研究了血管幾何學(xué)效應(yīng)(如血管彎曲,分枝,吻合[5-6],血流搏動[7],血液流變學(xué)[8]和血管壁彈性[9]。他們建立了冠狀動脈的彈性彎曲管狀模型[10],彈性吻合模型[5],彈性主動脈分枝模型[10-11]和彈性頸動脈分枝模型[12]。這些研究使人們深刻認(rèn)識到這樣一個事實,即除了WSS之外,EC同時也經(jīng)受機械牽張力的作用(周圍應(yīng)力circumferential stresses或者環(huán)狀應(yīng)力hoop stresses),這種力是由搏動血管內(nèi)的周圍牽拉造成的。
這些開創(chuàng)性的研究使我們認(rèn)識到,WSS和CS并不總是處于空間同相位(in phase temporally);為了說明 這 個 相 外/出 相 (out-of-phase)或 者 不 同 相(asynchronous)的現(xiàn)象,Tarbell教授引入了應(yīng)力相位角(stress phase angle,SPA)的概念(圖1)。SPA是CS與WSS之間的相位角,而CS是與血管直徑的改變同步的[10]。直到今天,依然只有6篇相關(guān)的文獻報導(dǎo)。其中5篇屬于我們在內(nèi)的Tarbell課題組[12-15],另一篇則由英國科學(xué)家[16]發(fā)表。
這些有關(guān)彈性血管的模擬研究揭示,最容易出現(xiàn)動脈粥樣硬化和內(nèi)膜增生的循環(huán)區(qū),如彎曲血管內(nèi)壁,分枝血管外壁,移植血管的遠端吻合處,也是WSS與CS最不同步的部位(SPA離0度最遠)。事實上,體內(nèi)動脈粥樣硬化最顯著的地方,如冠狀動脈和頸內(nèi)動脈分枝外側(cè)壁,在循環(huán)中表現(xiàn)最不同步,即SPA接近于-180°[10],上述這些研究和其他有關(guān)的研究[17-18]顯示,彎曲血管內(nèi)壁,分枝血管外壁,移植血管的遠端吻合處的平均WSS相對較低,振動剪切指數(shù)(用來測定振動剪切力在血液循環(huán)周期中反轉(zhuǎn)方向的指標(biāo),oscillatory shear index,OSI)較高。實際上,與不同相SPA相比,作為動脈粥樣硬化時血流動力學(xué)的局部因素,平均 WSS較低,而OSI較高的情況得到了人們更多的關(guān)注。
因此,這些流體機械觀測結(jié)果促使我們提出問題:面對同時出現(xiàn)的 WSS和CS時,SPA是否能夠?qū)C的生物學(xué)反應(yīng)產(chǎn)生任何影響?10年前,Tarbell小組首先報導(dǎo)了實驗方法來證明這個問題[10]。他們將牛主動脈內(nèi)皮細胞(BAEC)培養(yǎng)在彈性管的內(nèi)壁,然后給細胞施加同樣的外力:WSS10±10dynes/cm2,CS10±4dyn/cm2,SPA分別為-15°或-100°,作用時間為4h。相比于SPA-15°,不同步的程度較高(SPA為-100°)時,誘導(dǎo)出血管收縮劑內(nèi)皮素1(ET1)的生成,而抑制血管擴張劑NO和前列環(huán)素(PGI2)的產(chǎn)生。由于ET-1具有促動脈粥樣硬化作用,而NO和PGI2則有抗動脈粥樣硬化作用,所以該項體外資料提供了循環(huán)系統(tǒng)內(nèi)疾病易患區(qū)的非同步血流動力學(xué)特點與內(nèi)皮細胞促動脈粥樣硬化性生物反應(yīng)的聯(lián)系。該研究也顯示,當(dāng)用硬外套緊緊地包住彈力管以防管壁伸縮,并施加同樣的剪應(yīng)力波形時,PGI2、NO和ET-1的產(chǎn)生水平幾乎與無外套包繞時的非同步情況一致。近來,約翰霍普金森大學(xué)的David Kass小組[19]研究了搏動性血流對培養(yǎng)在硬管或軟管內(nèi)的BAEC細胞的影響,并對二者進行了比較。結(jié)果提示,與軟管相比,硬管抑制依賴Akt的抗凋亡信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路。盡管該文并未談及SPA或相位角的影響,但是從該課題組[20]較早前的文章可以很清楚地看出,軟管的牽拉和剪切幾乎是同相的。因此,我們提出如下的假設(shè),Kass小組所用的軟管能夠誘導(dǎo)出和硬管相似的細胞反應(yīng),即促動脈粥樣硬化性反應(yīng)。
為進一步確認(rèn)非同步血流動力學(xué)和內(nèi)皮細胞的生物學(xué)反應(yīng),Tarbell小組研制出了新的血流動力學(xué)模擬儀(hemodynamic simulator)。該儀器能夠產(chǎn)生出更加寬泛的SPA[14]。將BAEC細胞用該儀器處理5h和12h(SPA為0°和-180°),然后測定基因表達水平(ET-1,eNOS,COX-2)和相關(guān)的產(chǎn)物(ET-1,NO,PGI2),以及細胞間連接蛋白(occludin,ZO-1,VE-cadherin)。觀察到SPA對基因表達有重要影響,這就更加支持其假設(shè),即WSS和CS不同步時,具有促動脈粥樣硬化作用。只有很少一些其他研究小組也注意到了同步WSS和CS對內(nèi)皮細胞行為的影響[21-23],但是他們沒有意識到SPA 的重要性,也沒有描述SPA的特點。從這些研究使用的血流環(huán)的性質(zhì),我們認(rèn)為,其SPA接近0°,不可能像Tarbell課題組的研究那樣達到高度不同步(-180°)。Kamm實驗室[24]也設(shè)計出一種儀器從肺外壓迫靜脈,研究短暫血流和血管變形情況下的NO產(chǎn)生水平。但是從其研究方法的介紹部分,可以清楚地看出,血管變性和剪切力幾乎是同相的。所以,關(guān)于SPA的假設(shè)是一項理論創(chuàng)新,需要很多的實驗結(jié)果來進一步驗證,需要不同領(lǐng)域的科學(xué)家來共同探討,我們的目的就是在Tarbell教授的研究基礎(chǔ)之上,全面了解不同步SPA(-180°)的致病機理,為搞清血流動力學(xué)與基因表達的關(guān)系,找到與動脈粥樣硬化發(fā)病最密切關(guān)聯(lián)的基因,篩選能夠改變血管內(nèi)皮細胞基因表達譜的藥物,如CLA等。
人們普遍認(rèn)為,機械因素在決定動脈疾病的發(fā)生部位方面起到很重要的作用,但是影響最大的機械環(huán)境有何特點的問題尚不十分清楚?,F(xiàn)有的很多文獻只是專注于血流產(chǎn)生的WSS本身作為決定發(fā)病部位的因素,特別是與血管分叉有關(guān)的低均值WSS和反轉(zhuǎn)性振動 WSS(Reversing oscillatory WSS)。但是,經(jīng)過對青少年和低齡成年人冠狀動脈粥樣硬化的大規(guī)模研究發(fā)現(xiàn),57%的動脈粥樣硬化病變與分叉并無任何關(guān)聯(lián)[25]。近期研究[26]表明,人類冠狀動脈的內(nèi)膜厚度與 WSS的模式并不相干。Steianman et al[27]也發(fā)現(xiàn),頸動脈分叉處的 WSS模式與內(nèi)膜厚度之間也無關(guān)。這些研究提示,除了 WSS之外,尚有其他因素起著重要作用。值得注意的是,冠狀動脈和頸動脈分叉處的WSS和CS最不同步(圖2)。
圖2 降主動脈和冠狀動脈的血流,血壓及其SPA血流引起管壁剪應(yīng)力(Wall shear stress,WSS),而血壓形成周圍牽張力(circumferential strain,CS)。升主動脈血壓與冠狀動脈近端血壓基本相同;主動脈血流(WSS)和血壓(CS)均在收縮期達到高峰,所以升主動脈具有同步性血流動力學(xué)特點。而冠狀動脈血流(WSS)卻在舒張期達到高峰,此時血壓(CS)卻在下降之中,因而冠狀動脈具有非同步性血流動力學(xué)特點,WSS與CS二者具有相位差。一個心跳周期時相為360度,對冠狀動脈來講,血流和血壓的峰值基本上各占1/2周,SPA達到180度;而主動脈的血流峰值則基本上與血壓峰值同步,即二者沒有相位差,SPA為0度。計算方法如下:SPA=CSWSS=P(血壓)-Q(血流)=45-225=-180度。
根據(jù)冠狀動脈的彎曲特性,采用冠狀動脈的三維彈性管模型對其搏動性血流進行數(shù)字化模擬,結(jié)果提示,冠狀動脈內(nèi)側(cè)壁的WSS比外側(cè)壁要低50%,但內(nèi)側(cè)壁的 WSS振動卻較強[10]。與其他動脈血管比較,冠狀動脈的WSS與CS之間的SPA高出許多:內(nèi)側(cè)壁SPA為-250°,外側(cè)壁為-220°,顯示出非常不同相。這說明,除了WSS,SPA對于動脈粥樣硬化的發(fā)生部位也有很重要的作用。這是關(guān)于SPA的第一個證據(jù)。在此基礎(chǔ)上,Tarbell博士[15]設(shè)計出了能夠模擬體內(nèi)血流動力學(xué)特點的血流動力學(xué)模擬儀。采用該儀器,通過特殊設(shè)計的電腦軟件的控制,和與CO2培養(yǎng)箱的聯(lián)合使用,可以實時記錄 WSS和CS聯(lián)合作用于內(nèi)皮細胞時的波形改變。然后測定內(nèi)皮細胞的基因表達,結(jié)果是,與SPA為0°相比,SPA為-180°時內(nèi)皮細胞表現(xiàn)為促動脈粥樣硬化性(proatherogenic)基因表達:eNOS 和Cox-2減少,而ET-1升高;SPA為0°則為動脈保護性(athero-protective,antiatherogenic)基因表達,或者是正常動脈性(atheronormic)基因表達譜。
通過建立血管分叉處(頸總動脈進入頸內(nèi)動脈和頸外動脈處)的彈力模型,對與此有關(guān)的液體-固體相互作用的問題進行了超級計算機模擬,首次進行了復(fù)雜的CS/WSS比值的計算和分析[12]。分析表明,在頸動脈外側(cè)壁的WSS和CS之間的相位角(SPA)負(fù)值較大,此處常出現(xiàn)動脈粥樣硬化斑塊。該結(jié)果與冠狀動脈和主動脈分叉處的測定和計算結(jié)果一致,即較大的負(fù)SPA值與動脈粥樣硬化斑塊的發(fā)生有關(guān)[11];同時與體外細胞學(xué)研究的結(jié)論也相符,即較大的負(fù)SPA值產(chǎn)生促動脈粥樣硬化性基因表達譜和代謝物釋放譜。給牛主動脈內(nèi)皮細胞(BAEC)以二種作用力,WSS和CS,持續(xù)5h,然后比較不同SPA對NO分泌的影響,研究顯示,SPA 0°屬于正常動脈性表型,與其相比,SPA為-180°時,表現(xiàn)為促動脈粥樣硬化性表型,即NO分泌減少;所以,提出了這樣一種假設(shè),即SPA為較大負(fù)值(-180°)時,為促動脈粥樣硬化性作用。
最近,一項臨床研究結(jié)果再一次驗證了SPA理論的正確性。英國科學(xué)家[16]采用計算機流體動力學(xué)的方法,探討了右冠狀動脈(RCA)經(jīng)皮冠狀介入治療前后流速波形和動脈幾何學(xué)改變的影響。首先,他們根據(jù)一動脈狹窄患者的多幅計算機斷層掃描圖像,對右側(cè)冠狀動脈進行了重建。同時作為對照,對非狹窄患者的冠狀動脈也作了重建(圖3)。結(jié)果表明,冠狀介入治療前后的波形差異不影響WSS和OSI(振動應(yīng)力指數(shù),oscillatory shear index),但是,血壓和WSS之間的SPA卻顯著不同。PCI之前的平均SPA為-63.9°(范圍為-204°至-10°),PCI后的平均SPA則為10.4°(范圍為71.1°至25.4°)。PCI手術(shù)前WSS與血壓之間的不同步性更明顯。因此他們認(rèn)為,SPA是預(yù)測動脈粥樣硬化的一個重要指標(biāo)。
圖3 血流動力學(xué)模擬儀示意圖
我們推測,在冠狀動脈處的-180°SPA可以通過抑制EC糖衣的機械感應(yīng),造成NO生成減少,提高血管內(nèi)皮對動脈粥樣硬化的易感性;而在主動脈等處,0°SPA則能夠刺激EC糖衣的機械感應(yīng),誘導(dǎo)NO生成增多,起到保護血管的作用(圖4)。
圖4 SPA,糖衣與信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路A SPA與血流動力學(xué)的關(guān)系;B SPA與內(nèi)皮細胞的eNOS信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路。
表1、2總結(jié)了50種與動脈硬化的發(fā)生密切有關(guān)的基因。我們認(rèn)為,與SPA為0°相對應(yīng)的基因表達應(yīng)該呈現(xiàn)抗動脈粥樣硬化性特點,其基本表現(xiàn)為ET-1減少,而NOS和Cox-2升高[15]。在50種最常見的被證明與動脈粥樣硬化有關(guān)的基因中,27種分子屬于此類(表中顯示加號+);在動物的非動脈粥樣硬化好發(fā)部位(如主動脈弓外環(huán)、胸、腹主動脈等)的動脈內(nèi)皮細胞中,這27種基因的mRNA或者蛋白質(zhì)可能出現(xiàn)部分或全部升高,而另外21類基因可能會降低,這個結(jié)論有待進一步的實驗去驗證。和SPA為180°相對應(yīng)的基因表達應(yīng)該呈現(xiàn)抗動脈粥樣硬化性特點,其基本表現(xiàn)為ET-1減少,而NOS和Cox-2升高。在50種最常見的被證明與動脈粥樣硬化有關(guān)的基因中,21種分子屬于此類表中顯示為減號-)。在動物的動脈粥樣硬化好發(fā)部位(如主動脈弓內(nèi)環(huán),冠狀動脈等)的動脈內(nèi)皮細胞中,這21種基因的mRNA或者蛋白質(zhì)可能出現(xiàn)部分或全部升高,而另外的27種基因的mRNA或者蛋白質(zhì)可能出現(xiàn)部分或全部降低,也有待進一步的實驗去驗證。根據(jù)已有的實驗結(jié)果,結(jié)合SPA的理論假設(shè),我們認(rèn)為用血流動力學(xué)刺激儀,在體外分別給予血管內(nèi)皮細胞SPA為0°和180°的刺激,持續(xù)5h,其細胞的基因表達譜應(yīng)該類似于上述的體內(nèi)實驗結(jié)果。為驗證這些基因的表達與血流動力學(xué)的關(guān)系,很有必要總結(jié)有關(guān)的研究結(jié)果,以便找到一些血管內(nèi)皮細胞基因表達的規(guī)律,并與表1、2進行對比。
表1 動脈粥樣硬化有關(guān)基因及作用
表2 動脈粥樣硬化有關(guān)的基因作及作用
動脈粥樣硬化的發(fā)生不僅與WSS有關(guān),更與CS有關(guān);不僅與CS有關(guān),更與WSS和CS之間的相位角有關(guān);細胞水平上,當(dāng)給予BAEC的剪切力為SPA-180°時,基因表達呈現(xiàn)動脈粥樣硬化性特點,即eNOS和Cox-2減少,而ET-1升高;而對照細胞的SPA為-0°,基因表達則呈現(xiàn)抗動脈粥樣硬化性特點,即ET-1減少,而NOS和Cox-2升高。動物實驗方面,冠狀動脈為動脈粥樣硬化好發(fā)部位,其SPA為-180°(計算機模擬結(jié)果),基因表達呈現(xiàn)動脈粥樣硬化性特點,即eNOS和Cox-2減少,而ET-1升高;主動脈為動脈粥樣硬化非好發(fā)部位,其SPA為-0°(計算機模擬結(jié)果),基因表達呈現(xiàn)抗動脈粥樣硬化性特點,即ET-1減少,而eNOS和Cox-2升高。藥物作用方面,當(dāng)給予BAEC細胞SPA為-180°的同時,加入共軛亞麻酸,則基因表達呈現(xiàn)抗動脈粥樣硬化性特點,即ET-1減少,而eNOS和Cox-2升高;其對照組僅SPA為-180°,沒有給予共軛亞麻酸,基因表達呈現(xiàn)動脈粥樣硬化性特點,即eNOS和Cox-2減少,而ET-1升高。預(yù)期SPA為-180°時,動脈內(nèi)皮細胞的基因表達呈現(xiàn)動脈硬化保護性基因的減少和易感性基因的激活,二者之間不平衡,如表1所示。而SPA為0°時,動脈內(nèi)皮細胞的基因表達則相反。
預(yù)期在不同的動脈內(nèi)皮細胞內(nèi)有不同的特異基因的表達,在冠狀動脈等動脈粥樣硬化好發(fā)部位,基因表達呈現(xiàn)動脈粥樣硬化性特點;而在主動脈等動脈粥樣硬化非好發(fā)部位,其基因表達呈現(xiàn)抗動脈粥樣硬化性特點。通過比較細胞核動物水平的基因表達差異,可以篩選出動脈粥樣硬化性基因和動脈粥樣硬化保護性基因。進一步可以在細胞水平進行這些基因的沉默,研究基因的功能;如果目的基因沉默后對BAEC的eNOS等基因表達有影響,則有必要做基因敲除研究。比較某一基因敲除后,有關(guān)基因如eNOS的表達的改變和對內(nèi)皮細胞和血管功能的影響,見圖5。
致謝:感謝美國紐約城市大學(xué)生物醫(yī)學(xué)工程系主任,杰出教授,美國生物醫(yī)學(xué)工程學(xué)會前主席John M Tarbell教授對本項目的悉心指導(dǎo)和大力支持。
圖5 驗證SPA概念的實驗設(shè)計(信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路——另圖為圖4)
[1]Caro C G.Discovery of the role of wall shear in atherosclerosis[J].Arterioscler Thromb Vasc Biol,2009,29(2):158-161.
[2]Fleming I.Molecular mechanisms underlying the activation of eNOS[J].Pflugers Arch,2009(113):13.
[3]Alenghat F J,Ingber D E.Mechanotransduction:all signals point to cytoskeleton,matrix,and integrins[J].Sci STKE,2002(119):pe6.
[4]Tarbell J M.Mass transport in arteries and the localization of atherosclerosis[J].Annu Rev Biomed Eng,2003(5):79-118.
[5]Qiu Y,Tarbell J M.Computational simulation of flow in the end-to-end anastomosis of a rigid graft and a compliant artery[J].ASAIO J,1999,42(5):702-709.
[6]Lee C S,Tarbell J M.Wall shear rate distribution in an abdominal aortic bifurcation model:effects of vessel compliance and phase anglbetween pressure and flow waveforms[J].J Biomech Eng,1997,119(3):333-342.
[7]Lee C S,Tarbell J M.Influence of vasoactive drugs on wall shear stress distribution in the abdominal aortic bifurcation:an in vitro study[J].Ann Biomed Eng,1998,26(2):200-212.
[8]Dutta A,Tarbell J M.Influence of non-Newtonian behavior of blood on flow in an elastic artery model[J].J Biomech Eng,1996,118(1):111-119.
[9]Qiu Y,Tarbell J M.Interaction between wall shear stress and circumferential strain affects endothelial cell biochemical production[J].J Vasc Res,2000,37(3):147-157.
[10]Qiu Y,Tarbell J M.Numerical simulation of pulsatile flow in a compliant curved tube model of a coronary artery[J].J Biomech Eng,2000,122(1):77-85.
[11]Qiu Y,Tarbell J M.Numerical simulation of oxygen mass transfer in a compliant curved tube model of a coronary artery[J].Ann Biomed Eng,2000,28(1):26-38.
[12]Tada S,Tarbell J M.A computational study of flow in a compliant carotid bifurcation-stress phase angle correlation with shear stress.Ann Biomed Eng,2005,33(9):1 202-1 212.
[13]Tada S,Dong C,Tarbell J M.Effect of the stress phase angle on the strain energy density of the endothelial plasma membrane[J].Biophys J,2007,93(9):3 026-3 033.
[14]Dancu M B,Tarbell J M.Large Negative Stress Phase Angle(SPA)attenuates nitric oxide production in bovine aortic endothelial cells[J].J Biomech Eng,2006,128(3):329-334.
[15]Dancu M B,Berardi D E,Vanden Heuvel JP,et al.A-synchronous shear stress and circumferential strain reduces endothelial NO synthase and cyclooxygenase-2but induces endothelin-1gene expression in endothelial cells[J].Arterioscler Thromb Vasc Biol,2004,24(11):2 088-2 094.
[16]Torii R,Wood N B,Hadjiloizou N,et al.Stress phase angle depicts differences in coronary artery hemodynamics due to changes in flow and geometry after percutaneous coronary intervention[J].Am J Physiol Heart Circ Physiol,2009,296(3):765-776.
[17]Friedman M H,Deters O J,Mark F F,et al.Arterial geometry affects hemodynamics:apotential risk factor for atherosclerosis[J].Atherosclerosis,1983(46):225-231.
[18]Ku D N,Giddens D P,Zarins C K,et al.Pulsatile flow and atherosclerosis in the human carotid bifurcation:positive correlation between plaque location and low and oscillating shear stress[J].Artheriosclerosis,1985(5):293.
[19]Li M,Chiou K R,Bugayenko A,et al.Reduced wall compliance suppresses Akt-dependent apoptosis protection stimulated by pulse perfusion[J].Circ Res,2005,97(6):587-595.
[20]Peng X,Recchia F A,Byrne B J,et al.In vitro system to study realistic pulsatile flow and stretch signaling in cultured vascular cells[J].Am J Physiol Cell Physiol,2000,279(3):797-805.
[21]Zhao S,Suciu A,Ziegler T,et al.Synergistic effects of fluid shear stress and cyclic circumferential stretch on vascular endothelial cell morphology and cytoskeleton[J].Arterioscler Thromb Vasc Biol,1995,15(10):1 781-1 786.
[22]Benbrahim A,L'Italien G J,Kwolek C J,et al.Characteristics of vascular wall cells subjected to dynamic cyclic strain and fluid shear conditions in vitro[J].J Surg Res,1996,65(2):119-127.
[23]Ziegler T,Bouzourène K,Harrison V J,et al.Influence of oscillatory and unidirectional flow environments on the expression of endothelin and nitric oxide synthase in cultured endothelial cells[J].Arterioscler Thromb Vasc Biol,1998,18(5):686-692.
[24]Dai G,Tsukurov O,Chen M,et al.Endothelial nitric oxide production during in vitro simulation of external limb compression[J].Am J Physiol Heart Circ Physiol,2002,282(6):2 066-2 075.
[25]Tuzcu E M,Kapadia S R,Tutar E,et al.High prevalence of coronary atherosclerosis in asymptomatic teenagers and young adults:evidence from intravascular ultrasound[J].Circulation,2001,103(22):2 705-2 710.
[26]Joshi A K,Leask R L,Myers J G,et al.Intimal thickness is not associated with wall shear stress patterns in the human right coronary artery[J].Arterioscler Thromb Vasc Biol,2004,24(12):2 408-2 413.
[27]Steinman D A,Thomas J B,Ladak H M,et al.Reconstruction of carotid bifurcation hemodynamics and wall thickness using computational fluid dynamics and MRI[J].Magn Reson Med,2002,47(1):149-159.
[28]Albertini R,Passi A,Abuja PM,et al.The effect of glycosaminoglycans and proteoglycans on lipid peroxidation[J].Int J Mol Med,2000,6(2):129-136.
[29]Florian J A,Kosky J R,Ainslie K,et al.Heparan sulfate proteoglycan is a mechanosensor on endothelial cells[J].Circ Res,2003,93(10):136-142.
[30]Lopez-Quintero SV,Amaya R,Pahakis M,et al.The endothelial glycocalyx mediates shear-induced changes in hydraulic conductivity[J].Am J Physiol Heart Circ Physiol,2009,296(5):1 451-1 456.