黃 洋,靳 輝,呂麗華,張春香
(山西農(nóng)業(yè)大學(xué)動物科技學(xué)院,山西太谷030801)
GDF-8(Growth and Differentiation Factor-8)最早于1997年McPherron等[1]研究小鼠骨骼肌cDNA文庫時發(fā)現(xiàn),它是一種對骨骼肌生長具有負(fù)調(diào)控作用的細胞因子,該基因的突變或敲除會使動物生長速度加快、肌肉含量升高、脂肪含量減少。GDF-8基因發(fā)生自然突變的雙肌?!壤麜r藍牛[2],其肌肉數(shù)量比一般品種多20%,且肉質(zhì)鮮嫩。因此,建立敲除GDF-8基因的轉(zhuǎn)基因動物具有非常廣闊的應(yīng)用前景。
本研究分別用LipofectamineTM2000與Fu-Gene HD這2種轉(zhuǎn)染試劑介導(dǎo)攜帶有綠色熒光蛋白基因標(biāo)記的GDF-8基因干擾質(zhì)粒轉(zhuǎn)染綿羊成纖維細胞,探索其最佳轉(zhuǎn)染效果。
1.1.1 表達載體與菌種 綠色熒光蛋白標(biāo)記的GDF-8基因干擾質(zhì)粒和大腸桿菌DH5α,為山西農(nóng)業(yè)大學(xué)動物科技學(xué)院遺傳育種與繁殖實驗室保存。
1.1.2 試 劑 DMEM/F12(Boster),Opti-MEM,F(xiàn)BS(GIBCO),胰蛋白酶(Solarbio),雙抗(Sigma),LipofectamineTM2000 (invitrogen),F(xiàn)uGene HD(Roche)。
1.2.1 細胞培養(yǎng)液配制 基本培養(yǎng)液:在DMEM/F12中添加10%FBS和1%雙抗,此培養(yǎng)液用于綿羊成纖維細胞的原代培養(yǎng)和傳代培養(yǎng)。無抗培養(yǎng)液:在DMEM/F12中添加10%FBS,此培養(yǎng)液用于質(zhì)粒的轉(zhuǎn)染。
1.2.2 綿羊成纖維細胞培養(yǎng) 取1周齡綿羊耳組織,用組織塊貼壁培養(yǎng)法進行原代培養(yǎng)、傳代培養(yǎng)和凍存,建立綿羊成纖維細胞系[3-7],為質(zhì)粒轉(zhuǎn)染提供靶細胞。
1.2.3 轉(zhuǎn)染
1.2.3.1 LipofectamineTM2000介導(dǎo)質(zhì)粒轉(zhuǎn)染綿羊成纖維細胞條件優(yōu)化 將傳至4代已經(jīng)純化的綿羊成纖維細胞接種于96孔板中,接種密度為1×104個/孔。當(dāng)細胞匯合至約70%時,將基本培養(yǎng)液換為無抗培養(yǎng)液,繼續(xù)培養(yǎng)24 h,此時細胞匯合度已達到90%。
優(yōu)化步驟:(1)將不同量的質(zhì)粒 DNA(0.1,0.2,0.4,0.6μg) 和不同量的 LipofectamineTM2000(0.1,0.5,1.0,1.5μL)分別稀釋于25μL的Opti-MEM中,然后將稀釋好的質(zhì)粒DNA和LipofectamineTM2000兩兩混合構(gòu)成50μL轉(zhuǎn)染液,進行轉(zhuǎn)染,共16個處理。轉(zhuǎn)染12 h后,棄掉轉(zhuǎn)染液,更換為基本培養(yǎng)液,繼續(xù)培養(yǎng)48 h后,在熒光倒置顯微鏡下檢測每個處理表達綠色熒光蛋白的陽性細胞數(shù)。檢測時每個轉(zhuǎn)染處理組隨機選取5個視野,檢測表達綠色熒光蛋白的陽性細胞數(shù),取其平均值。(2)用篩選出的最佳質(zhì)粒DNA用量和LipofectamineTM2000用量構(gòu)成轉(zhuǎn)染液,將轉(zhuǎn)染時間設(shè)定為 3,6,12,24,48 h,然后棄掉轉(zhuǎn)染液,更換為基本培養(yǎng)液,繼續(xù)培養(yǎng)48 h后,熒光倒置顯微鏡下檢測不同轉(zhuǎn)染時間的陽性細胞數(shù),用以篩選最佳轉(zhuǎn)染時間。
1.2.3.2 FuGene HD介導(dǎo)質(zhì)粒轉(zhuǎn)染綿羊成纖維細胞條件優(yōu)化 將傳至第4代已經(jīng)純化的綿羊成纖維細胞接種于96孔板中,接種密度為1×104個/孔。按照FuGene HD試劑說明書要求控制質(zhì)粒DNA的量,篩選FuGene HD用量以及轉(zhuǎn)染液的用量。操作步驟為:(1)將2μg質(zhì)粒DNA分別和 6,8,10,12 μLFuGene HD混合后,加入Opti-MEM構(gòu)成4個梯度的轉(zhuǎn)染液,使得每個梯度轉(zhuǎn)染液終體積為100μL。(2)每孔中加入轉(zhuǎn)染液的量分別定為 5,10,20,40μL,進行轉(zhuǎn)染。不更換轉(zhuǎn)染液,轉(zhuǎn)染48 h后,熒光倒置顯微鏡下檢測轉(zhuǎn)染陽性細胞數(shù)。
2.1.1 最佳質(zhì)粒DNA用量和LipofectamineTM2000用量 試驗結(jié)果(圖1)表明,當(dāng)質(zhì)粒DNA用量為0.4μg,LipofectamineTM2000用量1.0μL時,轉(zhuǎn)染效率最高,與其他處理之間差異達極顯著水平(P<0.01)。
2.1.2 轉(zhuǎn)染的最佳時間 按照2.1.1篩選出的最佳質(zhì)粒DNA和LipofectamineTM2000用量,繼續(xù)篩選最佳轉(zhuǎn)染時間。結(jié)果(圖2)表明,轉(zhuǎn)染時間為6 h時,可以獲得最高的轉(zhuǎn)染效率,與轉(zhuǎn)染時間為12 h時差異顯著(P<0.05),與其余處理之間差異極顯著(P<0.01)。
結(jié)果(圖3)表明,當(dāng)每100μL轉(zhuǎn)染液內(nèi)含2μg質(zhì)粒DNA與10μLFuGene HD,每孔內(nèi)加入轉(zhuǎn)染液5μL時能獲得最佳轉(zhuǎn)染效果,與其余處理之間差異顯著(P<0.05)。
將以上篩選的LipofectamineTM2000最佳轉(zhuǎn)染條件下的轉(zhuǎn)染效率與FuGene HD轉(zhuǎn)染效率比較,結(jié)果(圖4)表明,F(xiàn)uGene HD轉(zhuǎn)染效率極顯著高于 LipofectamineTM2000(P<0.01)。熒光倒置顯微鏡觀察這2種轉(zhuǎn)染試劑的轉(zhuǎn)染效果如圖5、圖6所示。
脂質(zhì)體是借助超聲處理使復(fù)合脂質(zhì)在水溶液中膨脹形成的一種連續(xù)的雙層或多層復(fù)合脂質(zhì)組成的人工小球囊,其表面帶有正電荷,能吸附DNA的磷酸基團和帶負(fù)電荷的細胞膜。然后通過胞吞作用,使得脂質(zhì)體與DNA的復(fù)合物進入細胞,最終外源基因?qū)系郊毎蚪M上進行表達。LipofectamineTM2000是一種常用的商品化陽離子脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染試劑,由幾種陽離子脂質(zhì)體混合而成。對于多種細胞有較高的轉(zhuǎn)染效率,在基因轉(zhuǎn)染的研究中已有很多文獻[8-11]報道。
轉(zhuǎn)染試劑將外源核酸片段導(dǎo)入細胞的同時,也將影響內(nèi)源基因表達水平,從而對細胞的代謝和狀態(tài)造成不利影響,或影響試驗數(shù)據(jù)的客觀性,這稱為Off-target效應(yīng)。FuGene HD的這種效應(yīng)明顯低于LipofectamineTM2000,即FuGene HD的毒性小于LipofectamineTM2000。
體細胞介導(dǎo)轉(zhuǎn)基因技術(shù)是克隆技術(shù)的進一步成熟和完善,它為家畜的遺傳改良提供了一條新的途徑。對于用轉(zhuǎn)基因體細胞克隆的方法生產(chǎn)轉(zhuǎn)基因動物來說,從細胞轉(zhuǎn)染開始到獲得陽性克隆細胞,至少需要傳10代左右。因此,轉(zhuǎn)染試劑對細胞所造成的微小傷害都會對細胞造成嚴(yán)重影響。FuGene HD不但對細胞毒性低,而且試驗結(jié)果表明,F(xiàn)uGene HD對于綿羊成纖維細胞的轉(zhuǎn)染效率明顯高于LipofectamineTM2000。在體細胞介導(dǎo)轉(zhuǎn)基因技術(shù)中,F(xiàn)uGene HD不失為一種優(yōu)良的轉(zhuǎn)染試劑,具有良好的應(yīng)用前景。
[1]Alexandra CMcPherron,Ann M Lawler,Se-Jin Lee.Regulation of Skel etalmusclemass in mice by a new TGF-βsuperfamily member[J].Nature,1997,387:83-90.
[2] Grobet L,Mani L J,Poncelet D,et al.A deletion in the bovine myostatin gene causes the double-muscled phenotype in cattle[J].NatGenet,1997,17(1):71-74.
[3]李桂芳,李巖,趙宗勝,等.綿羊耳成纖維細胞的體外培養(yǎng)[J].中國草食動物,2003,23(4):5-7.
[4]萬發(fā)春,劉曉牧,宋恩亮,等.用于保種的蒙山牛耳成纖維細胞的培養(yǎng)研究[J].華北農(nóng)學(xué)報,2009,24(增刊):109-112.
[5]王亮,劉婷婷,彭濤,等.荷斯坦奶牛耳組織成纖維細胞分離培養(yǎng)及冷凍保存方法研究 [J].黑龍江畜牧獸醫(yī),2006(5):9-11.
[6]關(guān)偉軍,馬月輝,丁鴻,等.小尾寒羊耳組織成纖維細胞系的建立與生物學(xué)特性研究 [J].畜牧獸醫(yī)學(xué)報,2005,36(5):511-516.
[7]靳輝,黃洋,岳文斌,等.GDF-8干擾質(zhì)粒轉(zhuǎn)染綿羊耳成纖維細胞最佳條件研究[J].山西農(nóng)業(yè)科學(xué),2011,39(6):586-588.
[8]張艷麗,許丹,龐訓(xùn)勝,等.奶山羊胎兒成纖維細胞的分離培養(yǎng)及脂質(zhì)體法轉(zhuǎn)染研究 [J].南京農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報,2010,33(1):81-86.
[9]劉偉,吳華莉,張德福.豬耳成纖維細胞的體外培養(yǎng)及EGFP基因的轉(zhuǎn)染[J].上海農(nóng)業(yè)學(xué)報,2007,23(4):10-13.
[10]安星蘭,王子竹,張志崇,等.帶有綠色熒光蛋白外源DNA轉(zhuǎn)染綿羊成纖維細胞的研究 [J].中國畜牧獸醫(yī),2009,36(12):67-69.
[11]崔奎青,劉慶友,陳凌聲,等.水牛胎兒成纖維細胞轉(zhuǎn)染外源基因的初步研究 [J].廣西農(nóng)業(yè)生物科學(xué),2008,27(3):192-196.