朱 嫦, 楊雅瑩, 易永芬
(重慶醫(yī)科大學(xué)病理教研室,分子醫(yī)學(xué)與腫瘤研究中心,重慶400016)
胃癌是全世界范圍內(nèi)最常見的惡性腫瘤之一,高居癌癥死因的第2位[1]。探討胃癌侵襲和轉(zhuǎn)移的相關(guān)機制并對其進行有效防治是長期以來的研究熱點。細胞表面糖蛋白的糖鏈結(jié)構(gòu)尤其是N-聚糖的改變與腫瘤的惡性生物學(xué)行為密切相關(guān)[2-4]。高爾基體α-甘露糖苷酶Ⅱ(Golgi mannosidaseⅡ,GMⅡ)是N-聚糖形成中的關(guān)鍵性糖苷酶之一,其被特異性抑制后腫瘤細胞的生長和轉(zhuǎn)移明顯降低,因此GMⅡ可能成為抗癌治療的重要靶點[5-7]。GMⅡ在胃癌中的作用和意義國內(nèi)外文獻均少見報道,本研究通過RT-PCR、免疫組織化學(xué)和Western blotting等方法分別檢測GMⅡ基因和蛋白在不同分化胃癌細胞系和組織中的表達,初步探討GMⅡ與胃癌的關(guān)系,為進一步研究GMⅡ在胃癌發(fā)生和發(fā)展中的作用奠定基礎(chǔ)。
1.1 主要試劑 RPMI-1640培養(yǎng)基干粉、DEPC水和DMSO購自Sigma。小牛血清、胰蛋白酶購自Hy-Clone。SP免疫組化試劑盒及DAB染色試劑盒購自北京中杉金橋生物技術(shù)公司。Trizol購自Invitrogen。RT-PCR試劑盒和DNA marker購自寶生物工程大連有限公司。蛋白裂解液、BCA蛋白質(zhì)定量試劑盒和蛋白marker購自碧云天生物技術(shù)公司。PVDF膜購自Millipore。MAN2A1(人GMⅡ基因)羊抗人多克隆抗體購自Santa Cruz。化學(xué)發(fā)光試劑盒購自天根生物技術(shù)有限公司。兔抗人β-actin多抗、HRP標(biāo)記兔抗羊IgG和HRP標(biāo)記羊抗兔IgG購自北京中杉金橋生物技術(shù)公司。
1.2 組織和細胞來源 收集2008年10月-2010年10月重慶醫(yī)科大學(xué)附屬第一醫(yī)院胃癌患者手術(shù)切除標(biāo)本,所有病例術(shù)前均未接受放化療。其中癌組織38例,正常癌旁胃黏膜組織30例(癌旁5cm以上)。其中高分化胃癌8例、中分化胃癌18例和低分化胃癌12例。手術(shù)標(biāo)本取材后立即放入液氮罐保存,組織標(biāo)本均經(jīng)甲醛固定,石蠟包埋,每例蠟塊4 μm厚連續(xù)切片做免疫組化,所有病例均經(jīng)過病理學(xué)診斷證實。永生化的人胃黏膜上皮細胞系(GES-1)購自第四軍醫(yī)大學(xué)細胞庫,高分化(MKN-28)、中分化(SGC-7901)和低分化(BGC-823)胃癌細胞系均為重慶醫(yī)科大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院分子醫(yī)學(xué)與腫瘤研究中心凍存。
2.1 細胞培養(yǎng)及爬片制備 以上4種細胞均接種在含10%小牛血清、1×105U/L青霉素、1×105U/L鏈霉素的 RPMI-1640培養(yǎng)液中,37℃、5%CO2溫箱中培養(yǎng),待細胞長到90%時進行傳代培養(yǎng),將對數(shù)生長期細胞用0.25%胰蛋白酶消化,加含10%小牛血清的RPMI-1640培養(yǎng)液終止消化,接種于6孔板中(內(nèi)置無菌載玻片),待細胞長至80%時后吸出培養(yǎng)液,加4%多聚甲醛固定30 min,PBS洗2遍后4℃保存?zhèn)溆谩?/p>
2.2 免疫組化檢測GMⅡ蛋白的表達 組織石蠟切片:常規(guī)脫蠟至水,用3%H2O2作用10 min以阻斷內(nèi)源性過氧化物酶干擾,枸櫞酸鈉緩沖液15 min抗原修復(fù),PBS洗后血清封閉30 min,滴加1∶50 GMⅡ多克隆抗體4℃孵育過夜,PBS清洗5 min×3次后加生物素化的 II抗,抗37℃孵育30 min,PBS清洗5 min×3次后DAB顯色,蘇木素復(fù)染,脫水,中性樹膠封片,PBS代替I抗做陰性對照,每張切片至少觀察5個隨機高倍視野,按照陽性細胞所占比例記分:≤5% 為0分;6% -24%為1分;25% -50%為2分;>50%為3分。同時根據(jù)染色強度記分為:無著色為0分;淡黃色為1分;黃色或深黃色為2分;褐色或深褐色為3分。兩項指標(biāo)的積分相加結(jié)果:≤1分為陰性,>1為陽性。細胞爬片:除無抗原修復(fù)外處理方法同石蠟切片,拍片后采用Image-Pro Plus 6.0圖像分析軟件計算視野累積吸光度值(IA),以吸光度值代表GMⅡ的相對含量。
2.3 RT-PCR檢測GMⅡmRNA的表達 按Trizol試劑盒說明提取各組組織和細胞的總RNA。瓊脂糖凝膠電泳和紫外分光光度儀測定RNA的質(zhì)量、濃度及純度。按RT-PCR試劑盒說明合成cDNA第1鏈GMⅡ引物序列如下:上游引物 5'-GTTTATTGTCGAAAGTCTCACACC -3',下游引物 5'- CACCTCAACTGGATTCGG -3',擴增產(chǎn)物長度為126 bp;βactin上游引物5'-GCACCCAGCACAATGAAG -3',下游引物 5'-GCCAATCTCATCTTGTTTTC -3',擴增產(chǎn)物長度為356 bp,引物由上海生工合成。PCR反應(yīng)條件如下:95℃預(yù)變性 2 min,94℃ 30 s,56℃30 s,72℃ 1 min,共30個循環(huán),72℃ 10 min。結(jié)束后取反應(yīng)產(chǎn)物5 μL進行1.5%瓊脂糖凝膠電泳。采用Quantity One軟件分析電泳條帶的灰度值,以βactin為內(nèi)參照,以各條帶與內(nèi)參照的灰度值的比值表示GMⅡmRNA的相對含量。
2.4 Western blotting檢測GMⅡ蛋白的表達 提取各組組織和細胞的總蛋白,BCA法測定蛋白濃度,樣品和上樣緩沖液以4∶1混合變性,SDS-PAGE電泳后電轉(zhuǎn)到PVDF膜上,脫脂奶粉封閉1 h,加入GMⅡ抗體(1∶300)和 β -actin抗體(1∶400),4 ℃孵育過夜,HRP標(biāo)記 II抗(1∶1 000)孵育1 h,TBST洗脫3次,ECL化學(xué)發(fā)光顯影,采用Quantity One軟件測定條帶的吸光度值,以β-actin為內(nèi)參照,以各條帶與內(nèi)參照的吸光度的比值表示GMⅡ蛋白的相對含量。
GMⅡ陽性染色位于胞漿,為均勻一致的棕黃色顆粒。30例正常胃組織中陽性染色為53%(16/30),8例高分化胃癌組織中的陽性染色為63%(5/8),18例中分化胃癌組織的陽性染色為83%(15/18),12例低分化胃癌組織的陽性染色為100%(12/12),各組之間比較差異顯著(P<0.05),見表1、圖1。
表1 高、中、低分化胃癌組和正常胃黏膜組織組中GMⅡ的表達情況Table 1.The expression of GMⅡin well-differentiated,moderately differentiated and poorly-differentiated gastric cancer tissues and normal gastric tissues
正常胃黏膜上皮細胞系GES-1和3種胃癌細胞系MKN-28、SGC -7901、BGC-823染色平均吸光度分別為0.18±0.02、0.21±0.01、0.27±0.04、0.29±0.06,各組間差異顯著(P<0.05,n=3)。GMⅡ在低分化胃癌細胞系BGC-823中表達最高;而在正常胃黏膜上皮細胞系GES-1中表達最低,見圖2。
Figure 1.The positive expression of GMⅡ protein by immunohistochemistry in four gastric tissues(SP,×400).A:human normal gastric tissues;B:well-differentiated gastric cancer tissues;C:moderately-differentiated gastric cancer tissues;D:poorly-differentiated gastric cancer tissues.圖1 免疫組化檢測GMⅡ在胃組織中的陽性表達
Figure 2.The positive expression of GMⅡ protein detected by immunohistochemistry in four gastric cell lines(SP,×400).A:GES-1;B:MKN-28;C:SGC-7901;D:BGC -823.圖2 免疫組化檢測GMⅡ在4種細胞系中的陽性表達
GMⅡmRNA在正常胃黏膜上皮細胞系GES-1與3種不同分化的胃癌細胞系中均呈陽性表達。與GES-1相比,3種胃癌細胞系MKN-28、SGC-7901和BGC-823中GMⅡmRNA的表達水平顯著增加,并且在低分化胃癌細胞系BGC-823中表達最高;而在高分化胃癌細胞系MKN-28中表達最低。各組之間比較差異顯著(P<0.05),見圖3。
Figure 3.Expression of GMⅡ mRNA detected by RT-PCR infour gastric cell lines.M:DNA marker;Lane 1:GES-1;Lane 2:MKN-28;Lane 3:SGC-7901;Lane 4:BGC-823.±s.n=3.*P<0.05 vs GES-1.#P<0.05 vs SGC-7901;△P<0.05 vs BGC-823.圖3 RT-PCR檢測4種胃細胞系中GMⅡmRNA的表達水平
GMⅡmRNA在30例正常胃黏膜組織、8例高分化胃癌組織、18例中分化胃癌組織和12例低分化胃癌組織中相對含量分別為0.25±0.13、0.40±0.27、0.58±0.56和0.74±0.23。GMⅡmRNA在正常胃黏膜組織中GMⅡ表達最低,低分化胃癌組織中表達最高,各組間比較差異顯著(P<0.05),見圖4。
內(nèi)參照β-actin位于42 kD位置,條帶粗細亮度基本一致,沒有顯著差異,4種細胞系在132kD處均出現(xiàn)GMⅡ的陽性表達,與β-actin蛋白的灰度比值顯示GMⅡ蛋白在GES-1中的表達量最低,在MKN-28、SGC-7901和BGC-823 3組不同分化的胃癌細胞系中表達逐漸增加,分化越差,GMⅡ蛋白的表達越高。各組之間比較差異顯著(P<0.05),見圖5。
Figure 4.Expression of GMⅡmRNA detected by RT-PCR in four gastric cell tissues.M:DNA marker;Lane 1:human normal gastric tissues;Lane 2:well-differentiated gastric cancer tissues;Lane 3:moderately-differentiated gastric cancer tissues;Lane 4:poorly-differentiated gastric cancer tissues.±s.n=3.*P<0.05 vs group 1.#P <0.05 vs group 3;△P <0.05 vs group 4.圖4 RT-PCR檢測4種胃組織中GMⅡ的基因表達水平
Figure 5.Expression of GMⅡ protein detected by Western blotting in four gastric cell lines.Lane 1:GES-1;Lane 2:MKN-28;Lane 3:SGC-7901:Lane 4:BGC-823.±s.n=3.*P<0.05 vs GES-1.圖5 Western blotting檢測4種胃細胞系中GMII蛋白的表達水平
GMⅡ蛋白在30例正常胃黏膜組織、8例高分化胃癌組織、18例中分化胃癌組織、12例低分化胃癌組織中相對含量分別為0.12±0.03、0.33±0.24、0.49±0.17和0.62±0.51,GMⅡ在正常胃黏膜組織中表達最低,在中、低分化胃癌組織中表達最高,高分化胃癌組織中表達居中。各組之間比較差異顯著(P <0.05),見圖6。
Figure 6.Expression of GMⅡ protein detected by Western Blotting in four gastric cell tissues.Lane 1:human normal gastric tissues;Lane 2:well-differentiated gastric cancer tissues;Lane 3:moderately-differentiated gastric cancer tissues;Lane 4:poorly-differentiated gastric cancer tissues.圖6 Western blotting檢測4種胃組織中GMⅡ的蛋白表達水平
惡性腫瘤細胞的侵襲和轉(zhuǎn)移實質(zhì)上是細胞與其周圍環(huán)境(包括相鄰細胞、細胞外可溶性生物活性分子及不溶性細胞外基質(zhì))之間相互作用失常所致,而細胞表面正是介導(dǎo)了細胞與周圍環(huán)境的相互作用。細胞表面以糖蛋白分布最為廣泛,如信號分子的受體、細胞黏附分子等。糖蛋白借助其糖鏈所攜帶的多種多樣的生物識別信息,實現(xiàn)細胞與周圍環(huán)境的聯(lián)系,從而影響細胞的存活或凋亡、增殖與分化、遷移與侵襲等活動[8]。因此,細胞表面糖蛋白的的改變與腫瘤的生物學(xué)行為,如惡性轉(zhuǎn)化、轉(zhuǎn)移與侵襲等密切相關(guān)[9]。
糖蛋白是糖鏈通過N-糖基化和O-糖基化作用修飾蛋白質(zhì)而形成。α-甘露糖苷酶是蛋白質(zhì)N-糖基化修飾中關(guān)鍵性糖苷酶,它通過剪切N-糖鏈甘露糖殘基而在聚糖從高甘露糖型轉(zhuǎn)化成復(fù)雜型結(jié)構(gòu)中起著重要的作用。迄今為止,已克隆的α-甘露糖苷酶cDNA有20多種,其中來自人類的有6種。高爾基體α-甘露糖苷酶Ⅱ(GMⅡ)在哺乳動物組織中分布廣泛,它位于高爾基體的反面和中間體,分子量約為132 kD,其cDNA與鼠科動物的相近,位于5號染色體。GMⅡ分 子中含有糖基水解酶家族38(glycosyl hydrolase family 38)的保守序列,因此能特異性地剪切GlcNAc2Man5GlcNAc上 α -1,3和 α -1,6連接的甘露糖殘基,形成 Glc2Man3GlcNAc[10]。
研究表明,GMⅡ與多種類型腫瘤的侵襲和轉(zhuǎn)移行為密切相關(guān)。在乳腺、結(jié)腸及皮膚癌中,GMⅡ所引起的細胞表面復(fù)合糖數(shù)量分布的異常促進了腫瘤的發(fā)生發(fā)展,其臨床預(yù)后更差。GMⅡ被苦馬豆堿(swainsonine,SW)特異性抑制后,細胞表面的N-聚糖發(fā)生改變,肝癌細胞的黏附和遷移行為被明顯抑制;正常尿路上皮及膀胱癌細胞GMⅡ被SW抑制后,其與纖維連接蛋白及IV型膠原纖維結(jié)合能力分別增加1.5及2倍,同時膀胱癌細胞的遷移率下降20%;在惡性黑色素瘤和淋巴瘤中也有類似的研究發(fā)現(xiàn)[11,12]。GMⅡ促進腫瘤的侵襲和轉(zhuǎn)移的確切機制目前并不清楚。有研究者認為,GMⅡ可能通過對糖蛋白分子的質(zhì)量控制、成熟、運輸以及分泌來調(diào)控細胞之間、細胞與細胞外基質(zhì)之間的識別[13]。GMⅡ抑制后腫瘤細胞與血管內(nèi)皮細胞的黏附降低、對LAK和NK細胞的殺傷敏感性增強、細胞表面整合素糖蛋白分子中的寡糖基與其它細胞的配體結(jié)合受阻或者通過細胞表面凝集素介導(dǎo)的凋亡等均提示GMⅡ可能成為抗癌治療的重要靶點[11,12]。
GMⅡ蛋白在胃癌中作用目前研究較少,國內(nèi)研究者[13]曾用SW處理的胃癌細胞接種至裸鼠,結(jié)果顯示裸鼠體內(nèi)成瘤能力及轉(zhuǎn)移能力均降低,這提示GMⅡ在胃癌的發(fā)生和發(fā)展中可能發(fā)揮重要的作用。但是,SW對GMⅡ抑制的非特異性(SW同時抑制細胞漿、溶酶體α-甘露糖苷酶)[6]以及體內(nèi)實驗中SW抗癌作用的發(fā)揮可能是通過免疫調(diào)節(jié)機制而非抑制GMⅡ,使得GMⅡ在胃癌發(fā)生和發(fā)展中的具體作用有待更加深入的研究。在癌變過程中,為糖鏈合成酶編碼的基因表達異?;虬l(fā)生突變或活性異常是導(dǎo)致糖鏈結(jié)構(gòu)形成發(fā)生異常的重要原因。GMⅡ基因及其蛋白在胃癌中的表達情況國內(nèi)外文獻均鮮見報道。前期實驗中我們已應(yīng)用免疫組化法研究分析了GMⅡ與臨床病理特征之間的關(guān)系,表明GMⅡ在胃癌的發(fā)生發(fā)展、侵襲遷移中可能扮演著重要的角色[14]。本研究進一步通過RT-PCR、免疫組化法和Western blotting等方法分別檢測GMⅡ基因和蛋白在3種不同分化胃癌細胞系及胃癌組織中的差異表達。結(jié)果顯示,與正常胃黏膜上皮相比,3種胃癌細胞系MKN-28、SGC-7901、BGC-823中GMⅡ的基因及蛋白表達水平顯著增加。并且,GMⅡ在低分化胃癌細胞系BGC-823中表達最高;而在高分化胃癌細胞系MKN-28中表達最低。此外,本研究還應(yīng)用同樣方法對不同分化的臨床組織標(biāo)本進行進一步研究,結(jié)果顯示,GMⅡ表達水平在正常胃組織中最低,在低分化胃癌組織中表達最高,結(jié)果與對細胞系的研究結(jié)果一致。這進一步提示GMⅡ參與了胃癌的發(fā)生和發(fā)展,GMⅡ蛋白表達與胃癌的分化程度相關(guān);而胃癌組織中GMⅡ基因表達的增高,為以GMⅡ為靶點的基因治療提供重要的理論基礎(chǔ)。
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