韋瀟湘,唐 深,王春雙,陳長艷,陸彩玲,郭松超,李習(xí)藝
(廣西醫(yī)科大學(xué)1.公共衛(wèi)生學(xué)院;2.基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院;廣西南寧 530021)
氫醌(hydroquinone,HQ)又名對苯二酚[C6H(OH)],是苯在生物體內(nèi)的代謝產(chǎn)物,在苯血液毒性中發(fā)揮重要的作用,可導(dǎo)致再生障礙性貧血、骨髓異常增生綜合征、白血病及淋巴瘤等多種造血系統(tǒng)功能障礙,研究HQ血液毒性機制對探討苯的毒性機制具有重要的意義。前期研究發(fā)現(xiàn),在人胚肺成纖維細胞MRC-5及人臍血單個核細胞中,HQ的毒性可能與過氧化物酶2-Cys過氧化物氧還蛋白(peroxiredoxins)(2-Cys Prxs)有關(guān)[1-2]。2-Cys Prxs是細胞內(nèi)一類抗氧化蛋白家族,它們都有兩個高度保守的具有氧化還原活性的半胱氨酸殘基,即過氧化活性的胱氨酸殘基cys51和還原活性的半胱氨酸殘基cys172。2-Cys Prxs在氧化應(yīng)激中發(fā)揮重要的作用[3],保護細胞免受氧自由基損害,同時它們在細胞增殖與分化中也起著重要的作用[4]。HL-60細胞株是人前髓細胞株,其髓系祖細胞特性明顯,具有多向分化能力,在豆蔻酰佛波醇(phorbol 12-myristate 13-acetate,PMA)或二甲亞砜(DMSO)誘導(dǎo)下可分別向單核系或粒系分化,適用于粒系、單核系分化研究[5-6]。本實驗主要研究HQ對HL-60細胞向單核系、粒系分化的影響,并探討2-Cys Prxs在其中的作用。
HL-60細胞購自上海細胞生物所,IMDM培養(yǎng)基購自美國??寺嶒炇夜?,PMA和HQ購自Sigma公司,硝基四氮唑藍(NBT)購自Sanland公司,Cell Counting Kit-8(CCK-8試劑盒)、顯影定影試劑盒購自碧云天生物技術(shù)研究所。cDNA合成試劑盒、PCR試劑盒與熒光定量 PCR引物購自沈陽TaKaRa公司;Trizol購自美國 Invitrogen公司,Western印跡抗體購自Santa Cruz公司及Fermantas公司,其余試劑為國產(chǎn)分析純。
HL-60細胞培養(yǎng)于IMDM培養(yǎng)基,含胎牛血淸200 ml·L-1,青霉素 100 kU·L-1,鏈霉素 100 mg·L-1。在37℃,含體積分數(shù)為0.05 CO2的培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)傳代。
根據(jù)前期實驗結(jié)果及文獻[2,5-6],細胞分為正常對照組、PMA 20 nmol·L-1、PMA 20 nmol·L-1+HQ 1,5 和50 μmol·L-1,以及 1.25%DMSO對照、DMSO+HQ 1,5 和 50 μmol·L-1組,各組細胞數(shù)為1×109L-1。HQ用前用無血清IMDM配制,正常對照組加入相應(yīng)體積無血清IMDM。分別在48和96 h收集細胞。
取各個實驗組的HL-60細胞懸液5 μl推片晾干,乙醇 50 ml·L-1固定 5 min,乙醇 80 ml·L-1固定5 min后晾干,瑞氏-姬姆薩染液染色5~10 min沖洗晾干,光鏡下觀察。
收集各個實驗組的HL-60細胞,錐蟲(臺盼)藍檢測細胞活力,取200 μl含有1×1 O5個活細胞的細胞懸液,加入200 μl 1%NBT 溶液含終濃度為2 mg·L-1的佛波酯(PMA)混合,放入37℃孵育60 min,再將細胞離心后去除上清液,每份標本加入200 μl DMSO,在室溫下振蕩20 min,測波長570 nm的吸光度值(absorbance,A)[7-8]。A 值越大表明細胞分化程度越佳。
參照CCK-8試劑說明書收集各組HL-60細胞,棄原培養(yǎng)液,每組細胞加入含 CCK-8 100 ml·L-1的培養(yǎng)基,37℃繼續(xù)培養(yǎng)1 h后,測定A450nm。
1.7.1 總 RNA 制備
離心收集各實驗組的細胞,棄培養(yǎng)液,加入1 ml Trizol,室溫放置 10 min,加 0.2 ml氯仿,振蕩 15 s,靜置3 min,4℃,12 000×g離心15 min,取水相加入0.5 ml異丙醇,室溫放置10 min,4℃,12 000 ×g離心10 min,75%乙醇洗滌干燥后溶于純焦碳酸二乙酯,紫外分光光度儀檢測提取總RNA的質(zhì)量和濃度。要求A260/A280在1.8~2.1范圍,并計算 RNA含量。
1.7.2 cDNA 的合成
反應(yīng)體系 20 μl,取隨機引物(100 μmol·L-1)1 μl,每一份標本取總 RNA 1 μg,RNA 酶抑制劑(40 kU·L-1)0.5 μl,dNTP 混合物 (各 10 μmol·L-1)1 μl,5 倍反應(yīng)緩沖液4 μl,逆轉(zhuǎn)錄酶100 U,加純焦碳酸二乙酯至 20 μl。按 42℃ 30 min,95℃ 2 min,進行逆轉(zhuǎn)錄。合成好的cDNA置于-20℃保存?zhèn)溆谩?/p>
1.7.3 實時熒光定量 PCR檢測2-Cys Prxs基因表達
20 μl反應(yīng)體系中包括:上下游引物 10 μmol·L-1各 0.8 μl,SYBR ? Premix Ex TaqTM(2 × )10 μl,ROX Reference DyeⅡ(50 × )0.4 μl,雙蒸水 7 μl,cDNA標本1 μl。各基因擴增片段長度如下:PrxⅠ為141 bp,PrxⅡ為129 bp,PrxⅢ為98bp,PrxⅣ為75 bp,引物序列見表 1。按 95℃,30 s;40個循環(huán)(95℃,5 s;60℃,34 s)進行反應(yīng),反應(yīng)結(jié)束后,儀器自動記錄每個反應(yīng)管中的熒光信號到達所設(shè)定的域值時所經(jīng)歷的循環(huán)數(shù)(threshold cycles,Ct)值。以β肌動蛋白基因為內(nèi)參,采用雙ΔCt法計算目的基因表達量,每個樣品目的基因表達量除以內(nèi)參基因β肌動蛋白表達量即為樣品基因相對含量[8]。以2-(實驗組ΔCt-對照組ΔCt)表示實驗組目的基因相對于正常對照組表達的變化倍數(shù)。其中實驗組ΔCt和對照組ΔCt分別是實驗組和對照組目的基因與內(nèi)參基因β肌動蛋白的Ct的差值。
表1 過氧化物氧還蛋白(Prx)Ⅰ,PrxⅡ,PrxⅢ,PrxⅣ及β肌動蛋白引物序列Tab.1 Primer of peroxiredoxin(Prx)Ⅰ,PrxⅡ,PrxⅢ,PrxⅣand β-actin in real time PCR
各實驗組細胞用Trizol抽提RNA的同時抽提總蛋白,用Bradford法定量蛋白,調(diào)整總蛋白上樣量,以β肌動蛋白為內(nèi)參照。SDS-PAGE電泳后,0.1 A恒流轉(zhuǎn)膜35 min;5%脫脂牛奶封閉1 h,一抗4℃孵育過夜,TBST洗膜3次,每次10 min,二抗常溫孵育1 h,TBST洗膜3次,每次10 min,在暗房進行化學(xué)發(fā)光試劑染膜后顯影成像。以目標條帶與β肌動蛋白條帶積分吸光度(integrated absorbance,IA)的比值定量蛋白表達。
圖1染色結(jié)果顯示,正常對照組細胞胞體較大,胞核大而圓,胞質(zhì)堿深染,核質(zhì)比例大。DMSO,HQ+DMSO組可見細胞胞體明顯縮小,胞核凹陷,核質(zhì)比例縮小,桿狀核、分葉核細胞增多,細胞趨于向成熟粒系分化。PMA和HQ+PMA組可見部分細胞易貼壁,細胞核漿比例變小,核形狀不規(guī)則,有明顯的扭曲或折疊,呈腎形或U形、馬蹄形等,呈現(xiàn)向單核或巨噬細胞分化的特征。
圖1 氫醌(HQ)對HL-60細胞形態(tài)的影響 (瑞氏-姬姆薩染色 ×400).A:正常對照細胞,箭頭示細胞胞核大而圓;B:豆蔻酰佛波醇乙酯(phorbol 12-myristate 13-acetate,PMA)處理細胞48 h后,箭頭示U形細胞;C:1.25%二甲亞砜(DMSO)處理細胞96 h后,箭頭示多葉核細胞;D:PMA+HQ 50 μmol·L-1處理細胞48 h后,箭頭示不規(guī)則核細胞;E:DMSO+HQ 5 μmol·L-1處理細胞96 h后,箭頭示細胞胞核凹陷;F:DMSO+HQ 50 μmol·L-1處理細胞96 h后,箭頭示多葉核細胞.Fig.1 Effect of hydroquinone(HQ)on morphological changes in HL-60 cells(Wright Giemsa ×400).
表2所示各實驗組的HL-60細胞對NBT還原力。與正常對照組比較,PMA組和DMSO組HL-60細胞NBT還原力明顯增加(P<0.05),說明PMA和DMSO可分別誘導(dǎo)HL-60細胞向單核細胞和粒細胞分化。與PMA和DMSO對照組比較,PMA+HQ和DMSO+HQ各組細胞對NBT還原力均下降,PMA+HQ 5 和 50 μmol·L-1組與 PMA 組比較有明顯差異(P <0.05),說明 HQ 1 和5 μmol·L-1可以抑制 HL-60 細胞向單核系分化;DMSO+HQ 50 μmol·L-1組和DMSO對照組比較有顯著差異(P<0.05),表明HQ 50 μmol·L-1可抑制細胞向粒系分化。
表2 氫醌對HL-60細胞分化的影響Tab.2 Effect of HQ on differentiation of HL-60 cells
如表 3 所示,HQ 50 μmol·L-1+PMA 作用于HL-60細胞后,細胞CCK-8還原值與單獨PMA組比較明顯下降;HQ 5,50 μmol·L-1+DMSO 組細胞CCK-8的還原值與單獨DMSO組比較明顯下降。這表明 HQ 5 和 50 μmol·L-1與誘導(dǎo)劑的共同作用可以抑制HL-60細胞增殖。
表3 氫醌對HL-60細胞增殖的影響Tab.3 Effect of HQ on proliferation of HL-60 cells
總RNA凝膠電泳后,28 s亮度明顯強于18 s,5 s很弱,說明RNA完整性較好(圖2),分光光度計測A260/A280在1.8~2.1。各目的基因在 HL-60 細胞表達相對定量檢測結(jié)果顯示,PrxⅠ~PrxⅣ各引物融解曲線均呈清晰的單一峰型,說明設(shè)計的引物擴增出的擴增產(chǎn)物沒有非特異性擴增,引物可用。各基因表達Ct值在16~24,各基因的相對表達量在0.15~2。與正常對照組比較,PMA組2-Cys Prxs基因表達水平均有降低的趨勢,PrxⅢ的表達水平與正常對照組比較有明顯差異(P<0.05);DMSO組的2-Cys Prxs基因表達水平顯著降低(P<0.01)。給予 HQ 刺激后,在PMA+HQ 5 μmol·L-1組,PrxⅢ,PrxⅣ的表達高于對照組(P<0.01),在PMA+HQ 50 μmol·L-1組,PrxⅠ,PrxⅢ,PrxⅣ的表達水平與正常對照組和PMA組相比明顯增高(P<0.01)。PrxⅡ在各處理組的表達水平低于對照組,但沒有統(tǒng)計學(xué)意義。而隨著 HQ 濃度的增加,只有 HQ 50 μmol·L-1+DMSO組PrxⅠ,PrxⅢ的表達水平與DMSO組相比明顯增高(P <0.01),HQ 5 μmol·L-1+1.25%DMSO各組與單獨DMSO組比較,2-Cys Prxs各基因表達水平的差別沒有統(tǒng)計學(xué)意義(表4,表5)。
圖2HQ作用HL-60細胞后的核蛋白體RNA瓊脂糖凝膠電泳圖.M:標志物;條帶1~5:分別為正常對照,PMA,PMA+HQ1,5 和50 μmol·L-1組.Fig.2 RNA agarose gel electrophoresis of HL-60 cells affected by HQ.
表4 HQ對PMA誘導(dǎo)的HL-60細胞向單核系分化過程中過氧化物酶2-Cys過氧化物氧還蛋白(2-Cys Prx)基因表達的影響Tab.4 Effect of HQ on expression of 2-Cys peroxiredoxins(2-Cys Prxs)in HL-60 cells during monocytic differentiation induced by PMA
表5 HQ對DMSO誘導(dǎo)的HL-60細胞向粒系分化過程中2-Cys Prxs基因表達的影響Tab.5 Effect of HQ on expression of 2-Cys Prxs in HL-60 cells during granulocytes differentiation induced by DMSO
如圖3和圖4所示,PMA對照組和DMSO對照組PrxⅢ蛋白表達水平均低于正常對照組。在PMA誘導(dǎo)分化的實驗組中,給予HQ共同處理后,各組PrxⅢ蛋白表達量有顯著增加的趨勢(P<0.01)。在DMSO誘導(dǎo)分化的實驗組中,只有在HQ 50 μmol·L-1+DMSO組PrxⅢ表達量明顯高于DMSO對照組(P<0.01)但低于正常對照組(P<0.05)。蛋白免疫印跡結(jié)果與熒光定量PCR結(jié)果是一致的,說明PrxⅢmRNA表達水平變化和蛋白表達水平的變化是一致的。
圖3HQ對PMA誘導(dǎo)的HL-60細胞向單核系分化過程中PrxⅢ蛋白表達的影響.A:Western印跡;B:半定量結(jié)果.1~5分別為正常對照,PMA對照,PMA+HQ 1,5和50 μmol·L-1組.±s,n=6.*P<0.05,與正常對照組比較;##P<0.01,與PMA對照組比較.Fig.3 Effect of HQ on expression of PrxⅢ protein in HL-60 cells during monocytic differentiation induced by PMA detected by Western blotting.
圖4HQ對1.25%DMSO誘導(dǎo)的HL-60細胞向粒系分化過程中PrxⅢ蛋白表達的影響.A:Western印跡;B:半定量結(jié)果.1~5分別為正常對照,DMSO對照,DMSO+HQ 1,5和50 μmol·L-1組.±s,n=6.*P<0.05,與正常對照組比較;##P<0.01,與DMSO組比較.Fig.4 Effect of HQ on expression of PrxⅢ protein in HL-60 cells during grannlocytes differentiation induced by 1.25%DMSO detected by Western blotting.
本研究結(jié)果顯示,HQ作用后,PMA誘導(dǎo)HL-60細胞向單核系分化受到抑制,與Oliveira等[7]所報道的一致。但關(guān)于HQ對HL-60細胞向粒系分化的影響,Oliverira[7]與 Hedli等[9]報道不一,可能是由于HQ劑量不同所致。而在本實驗中,HQ 1 μmol·L-1對粒系分化無影響,但較高劑量HQ可抑制細胞向粒系分化,這些結(jié)果提示細胞向單核系分化較向粒系分化對HQ所引起的細胞毒性作用更為敏感。在本實驗中也發(fā)現(xiàn),較高劑量HQ抑制分化的同時伴隨細胞增殖的抑制,說明一定劑量HQ可以影響細胞的分化與增殖,它可能就是通過這種途徑而發(fā)揮其在血液系統(tǒng)中的毒性作用。
本研究結(jié)果顯示,PrxⅠ,PrxⅢ和PrxⅣ與HQ對HL-60細胞分化和增殖抑制的生物學(xué)效應(yīng)有關(guān)。其中PrxⅢ在所有分化抑制的細胞組表達顯著增高,而在分化未受到抑制的組未見誘導(dǎo)表達,提示其在HQ抑制分化過程中扮演重要角色。但在本次實驗中,未能用RNAi技術(shù)抑制PrxⅢmRNA表達來進一步觀察PrxⅢ是否真正地參與HQ抑制HL-60細胞分化的過程,因此還不能說明PrxⅢ與此過程有真正的因果關(guān)系,這在后續(xù)的實驗中會繼續(xù)研究。PRXⅢ定位于線粒體,在線粒體抗氧化防御機制中起著重要作用,并且參與細胞的增殖、分化、轉(zhuǎn)化和凋亡等活動[10-11]。Yang 等[10]研究表明 PrxⅢ與紅細胞的分化有關(guān),Wonsey等[11]也發(fā)現(xiàn)PrxⅢ是Myc的靶基因,參與Myc介導(dǎo)的增殖、凋亡和腫瘤轉(zhuǎn)化。但PrxⅢ在粒系分化中的作用如何尚未見報道,其在HQ對HL-60細胞分化影響過程中的具體作用及機制如何,其表達水平的變化是分化的原因還是結(jié)果等問題都還有待進一步研究。
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