李德喜,楊淑華,何劍斌
(沈陽農(nóng)業(yè)大學畜牧獸醫(yī)學院,遼寧沈陽 110161)
熱應激能在短時間內(nèi)向高溫轉換所誘導出的一種固定的應激反應,以維持動物機體自身生理平衡,防止細胞受到應激環(huán)境的過度傷害,保護細胞免受應激環(huán)境變化而造成的損傷[1-2],從而誘發(fā)細胞中活性氧增加,超氧陰離子自由基(O-2)、過氧化氫(H2 O2)等具有較強的氧化能力,對生物體內(nèi)大分子產(chǎn)生破壞。而超氧化物岐化酶(superoxide dismutase,SOD)、過氧化氫酶(caltalase,CAT)通過體內(nèi)的協(xié)同作用,能有效的清除O-2·、H 2O2[3]。試驗選用了能間接反映體內(nèi)氧化水平的SOD與CAT進行分析,來研究熱應激對家兔機體損害程度和體內(nèi)自由基的清除能力[4]。
1.1.1 主要儀器與試劑 722可見分光光度計,上海儀器分析總廠;考馬斯亮蘭蛋白質含量測定試劑盒,南京建成生物工程研究所;CAT活力測定試劑盒,南京建成生物工程研究所;SOD活力測定試劑盒,南京建成生物工程研究所。
1.1.2 實驗動物與分組 選健康3月齡新西蘭兔60只,隨機為 3組,每組20只,預飼1周后,置于自制人工氣候室內(nèi)。高溫組溫度控制在39℃~41℃,低溫組32℃~34℃,對照組采用室溫,相對濕度控制在56%~60%。
1.2.1 測定指標與樣品處理 分別在熱應激后15、30、45、60 d每組隨機選取5只新西蘭兔,心臟采血處死后,迅速取出垂體與下丘腦,冰浴下研磨組織并制成100 g/L組織勻漿液。采用比色法測定SOD。其中SOD的測定方法采用黃嘌呤氧化酶法,具體測定步驟及計算公式均按照試劑盒說明書進行。
1.2.2 數(shù)據(jù)處理 用SPSS13.0軟件對試驗數(shù)據(jù)進行一般線性模型(GLM)分析;統(tǒng)計結果以平均數(shù)±標準差表示。
2.1.1 下丘腦CAT的活性 如表1所示,隨著時間的延長,常溫對照組下丘腦CAT活性變化不明顯;低熱組15 d與 30 d對比不顯著、與45 d和60 d對比差異顯著(P <0.05);高熱組15 d時與30 d、45 d和60 d對比差異顯著(P<0.05)。隨著應激溫度的升高,下丘腦中CAT的活性呈降低趨勢,且同一時間點CAT活性組間比較差異顯著(P<0.05)。
2.1.2 垂體CAT活性 如表2所示,隨著時間的延長,常溫對照組與低熱組垂體CAT活性變化不明顯,組內(nèi)各時間點CAT活性比較差異不顯著(P>0.05);高熱組在 15、30、45、60 d 比較CAT 活性差異顯著(P<0.05);低熱組和高熱組CAT活性均呈降低趨勢。隨著溫度的升高,垂體組織CAT濃度呈降低趨勢。各時間點組間CAT活性比較差異顯著(P<0.05)。
表1 熱應激對兔下丘腦CAT活性的影響Table1 Effect of heat stress on CAT activity in hypothalam us U/m g
表2 熱應激對兔垂體CAT活性的影響Table2 E ffect of heat stress on CAT activity in hypophysis U/m g
2.2.1 下丘腦中SOD的活性 如表3所示,常溫對照組SOD活性變化不明顯;低熱組與高熱組隨著應激時間的延長,SOD活性均呈降低趨勢,低熱組15 d與30 d的SOD活性比較差異不顯著(P>0.05),與45 d和60 d比較差異顯著(P<0.05);高熱組在15 d與其他時間比較差異顯著(P<0.05)。隨著溫度的升高,下丘腦中SOD濃度呈降低趨勢,各時間點組間SOD活性比較差異顯著(P<0.05)。
表3 熱應激對兔下丘腦SOD活性的影響Table3 Effect of heat stress on SOD activity in hypothalamus U/m g
2.2.2 垂體中SOD的活性 如表4所示,隨著時間的延長,垂體SOD的活性呈下降趨勢。常溫對照組在15 d時SOD的活性與30 d比較差異不顯著(P>0.05),與45 d和60 d比較差異顯著(P<0.05);低熱組各時間點對比差異顯著(P<0.05);高熱組在15 d、30 d與45 d、60 d比較差異顯著(P<0.05)。
隨著溫度的升高,垂體中SOD濃度呈降低趨勢。15 d和30 d高熱組SOD的活性與常熱組和低熱組比較差異顯著(P<0.05);45 d和60 d常熱組與高熱組、低熱組比較差異顯著(P <0.05)。
表4 熱應激對兔垂體SOD活性的影響Table4 E ffect of heat stress on SOD activity in hypophysis U/m g
在熱應激條件下,動物機體代謝過程紊亂,從多種代謝途徑產(chǎn)生的氧自由基含量增加,機體由于代謝受阻不能及時清除而積累[5-7]。此外,熱應激狀態(tài)下,細胞能量分解大于合成,從而為氧自由基大量生成提供了條件,并且在缺血狀態(tài)下,血液和組織中的SOD活性下降,細胞清除氧自由基的能力更顯不足,造成氧自由基的堆積[8]。超氧陰離子自由基,是生物體多種生理反應中自然生成的中間產(chǎn)物,具有極強的氧化能力,是生物氧毒害的重要因素之一。超氧陰離子在SOD作用下和氫離子反應,生成過氧化氫;過氧化氫在過氧化氫酶的作用下最終生成水。SOD可以清除超氧陰離子(O-2)而保護動物機體細胞免受損傷,其活力的高低間接反映了機體清除氧自由基的能力[9-10]??寡趸覆坏芮宄M織中過多的活性氧,還維持相對穩(wěn)定的氧化水平而使細胞免受過氧化損害。SOD、CA T在生物體內(nèi)的水平高低,能準確地反映體內(nèi)抗氧化能力。
本試驗顯示在熱應激條件下,同一溫度組隨著時間的增加,垂體與下丘腦中SOD、CA T的活性呈下降趨勢,說明隨著熱應激時間的延長,兔抗氧化能力有所減弱。此外,在同一時間內(nèi),家兔垂體與下丘腦內(nèi)SOD、CAT的活性高溫組顯著低于低溫組與對照組,SOD與CAT的活性隨著溫度的升高呈下降趨勢。說明隨著溫度的升高,熱應激時間的延長,垂體與下丘腦抗氧化能力降低。這些內(nèi)分泌器官抗氧化能力的減弱同時影響到家兔的內(nèi)分泌功能,使熱應激的不良影響得以放大。
在本試驗中,隨著溫度的升高,熱應激時間的延長,熱應激組新西蘭兔的垂體與下丘腦中SOD活性和CAT活性與對照組相比顯著降低。
[1]董淑麗,王占彬,雷雪芹,等.熱應激對動物血液生化指標的影響[J].家畜生態(tài),1998,25(2):54-56.
[2]尹 鋒,陳光英,余絲莉,等.熱應激對小鼠垂體前葉細胞構筑的影響[J].安徽農(nóng)業(yè)科學,2009,37(9):4052-4053.
[3]W ilesM E,W agner T L,W egliekiW B.Dietary magnesium affects suscep tibility of lipoproteins and tissues to peroxidation inrats[J].Life-Sci,1997,60(3):221-236.
[4]王琤華,瞿明仁,蔣顯仁,等.Poultrygrow 250TM對寧都三黃雞消化酶活性、營養(yǎng)物質消化率、抗熱應激、免疫機能及生產(chǎn)性能的影響研究[J].江西農(nóng)業(yè)大學學報,2008,30(4):302-310.
[5]王 燦,王悅妮,李延龍,等.兩種熱暴露對大鼠脂質過氧化反應的影響[J].沈陽醫(yī)學院學報,2003,5(4):225-228.
[6]李玉榮.熱應激對蛋雞的影響[J].畜牧獸醫(yī)雜志,1999(4):17.
[7]趙洪進,郭定宗.硒和維生素E在熱應激豬自由基代謝中的作用[J].中國獸醫(yī)學報,2005,25(1):78-80,56.
[8]鄧發(fā)清.熱應激對泌乳奶牛抗氧化性能及微量元素代謝的影響[J].黑龍江動物繁殖,2008,44(5):61-62.
[9]劉扭湘.我國雞熱應激的研究進展[J].中國家禽,1998(6):41.
[10]Bogin E,Peh H C,Avidar Y,et al.Sex and genotype dependence on the effects of long term high environmental temperatu res on cellular enzyme actiyities from chicken organs[J].A-vian Pathol,1997,26:511-524.