中圖分類號(hào):TU992.3 文獻(xiàn)標(biāo)志碼:A
Effect of Magnetic Particles on Initiation Process of Composite Bio-denitrification System
XUAN Siqi ?1 , ZHANG Shuai 1 , ZHANG Fengjun2, ZHANG Dong3, SUN Shaofang 1 ,WANG Jiabin 1
(1.School of Civil Engineering and Architecture,University of Jinan,Jinan 25O022,Shandong,China; 2.Shandong Fangyun Software Technology Co.,Ltd., Jinan 25OooO,Shandong,China; 3.Shandong Qingdao Municipal Engineering Designand Research Institute Co.,Ltd.,Qingdao,Shandong,266000)
Abstract:To investigate theroleof ading magnetic particles intheinitiation processof biological denitrificationsystem, two biological denitrification reactors, R1 and R2 ,were constructed. In reactor R2 ,the amount of magnetic particles added was 30 g/L.In the first stage,influentcontainingammonia nitrogenandnitrite nitrogen was inoculated with denitrifying sludge,while in the second stage,influent containing only ammonia nitrogen was inoculatedwith nitrifying sludge.A comparativestudywasconductedtoinvestigatetheimpactof magneticparticlesontheinitiationprocessofthecomposite denitrification system,andthe mechanism of actionof the magnetic particles was exploredthroughtheanalysis of microbial community structure.The results show thatboth reactors can be successfully initiated.In the first stage,reactors R1 and R2 both undergo primarily anaerobic ammonia oxidation reactions,with reactor R2 exhibiting a higher proportion of anaerobic ammoniaoxidation.In thesecond stage,under lowdissolved oxygen conditions,acomposite biological denitrification system is formed,combining anaerobicammonia oxidation with short-range nitrification-denitrification,with reactor R2 (204號(hào) achieving a higher total nitrogen removalrate.Compared to the inoculated sludge samples,theabundanceof anaerobic ammonia oxidation bacteria in the first stage of reactors R1 and R2 is increased,with a more significant increase in the abundance of anaerobic ammonia oxidation bacteria Candidatus_Kuenenia in reactor R2 . In the second stage,reactor R2 (204號(hào) exhibits inhibitionofnitrite-oxidizing bacteriaandnitritebacteria Nitrosomonas,whiletheabundanceofThaueraand Thermomonas bacteria is significantly increased.
Keywords:biological denitrification process;magnetic particle;anaerobic ammonia oxidation;short-range nitrficationdenitrification
在我國節(jié)能減排大背景下,以厭氧-缺氧-好氧生物處理法(AAO)為代表的生物脫氮工藝曝氣量大、能耗高的問題急需解決。相比之下,厭氧氨氧化耦合短程硝化反硝化復(fù)合脫氮體系曝氣量小,污泥產(chǎn)量少,碳源需求量低,能源消耗少,是一種具有良好應(yīng)用前景的生物脫氮新技術(shù)。
近年來的研究[表明,通過改變厭氧氨氧化和短程硝化反硝化的反應(yīng)參數(shù)能夠成功啟動(dòng)該反應(yīng)體系,并且磁場(chǎng)會(huì)影響微生物對(duì)底物的降解能力,促進(jìn)活性污泥系統(tǒng)中含氮化合物的轉(zhuǎn)化。Tao等[2]通過膜生物反應(yīng)器(MBR)的方式運(yùn)行178d成功啟動(dòng)了厭氧氨氧化(ANAMMOX)工藝。Li等3在升流式厭氧污泥床反應(yīng)器(UASB)中接種亞硝化污泥和厭氧氨氧化顆粒污泥的混合物,運(yùn)行 120d 后獲得較好的脫氮效果。Chen等4采用分步進(jìn)料策略將硝化、短程硝化、反硝化和厭氧氨氧化工藝整合,在水力停留時(shí)間(HRT)低至 5h 的條件下脫氮負(fù)荷為0.224kg/(m3?d) 。Chi等5通過對(duì)游離氨含量和溶解氧(DO)含量等關(guān)鍵參數(shù)的優(yōu)化實(shí)現(xiàn)了短程硝化-厭氧氨氧化-反硝化生物脫氮體系的快速啟動(dòng)。Cui等[6]、Duan 等[7]研究了溫度、溶解氧含量、酸堿度 ΔpH 、碳氮質(zhì)量比、游離亞硝酸、污泥齡期(SRT)等因素對(duì)亞硝酸鹽氧化菌(NOB)的抑制效果。 Hu 等[8]、 Xu 等[9]、孫紹鈞等[10]、Wang等[1]研究發(fā)現(xiàn),納米四氧化三鐵磁性粉末能夠提高污水處理中的微生物活性,刺激硝化細(xì)菌亞硝酸菌屬、硝化螺旋菌、反硝化細(xì)菌膠菌屬等功能菌的生物活性;但是,由于厭氧氨氧化菌具有世代周期長、難以富集、工藝啟動(dòng)耗時(shí)長[12]的特點(diǎn),短程硝化反硝化也存在亞硝酸鹽的積累調(diào)控困難的問題,因此如何保障該體系的快速啟動(dòng)與穩(wěn)定高效運(yùn)行,還有待深入研究。
本文中構(gòu)建磁性生物脫氮體系,對(duì)比研究磁性顆粒對(duì)反應(yīng)器復(fù)合脫氮效能的影響和作用規(guī)律,并分析其對(duì)微生物作用機(jī)制
材料與方法
1. 1 磁性顆粒
本文中研究所使用磁性顆粒為課題組自制,以納米四氧化三鐵磁粉為主要材料,配以鈦酸酯偶聯(lián)劑、聚乙烯醇-海藻酸鈉黏合劑、無水乙醇,經(jīng)烘干、成球、固化與充磁等工序制備獲得磁性顆粒。磁性顆粒磁感應(yīng)強(qiáng)度可達(dá)到 0.85mT ,經(jīng)過 30d 的衰退,磁感應(yīng)強(qiáng)度能穩(wěn)定在 0.75mT 。磁性顆粒表面的掃描電子顯微鏡圖像見圖1。由圖可以看出,磁性顆粒表面多孔,可為微生物的附著提供載體。
1. 2 反應(yīng)器
本文中使用的反應(yīng)器裝置示意圖見圖2。該反應(yīng)器為有機(jī)玻璃制成,高度為 1 200mm ,半徑為50mm ,設(shè)有進(jìn)水口、出水口、內(nèi)循環(huán)管及曝氣管接口。配備溫度控制儀、溶解氧測(cè)試儀實(shí)現(xiàn)運(yùn)行參數(shù)的實(shí)時(shí)監(jiān)測(cè)與控制,外壁包裹黑色材料避光,使用內(nèi)循環(huán)泵攪拌。
本文中使用2組反應(yīng)器 R1 、 R2 開展對(duì)比實(shí)驗(yàn),其中反應(yīng)器 R1 不添加磁性顆粒,反應(yīng)器 R2 中磁性顆粒添加量為 30g/L ,反應(yīng)器中心的磁感應(yīng)強(qiáng)度為0.75mT 。
1.3 分析方法
本文中涉及的氨氮( NH4+-N )、亞硝態(tài)氮( NO2- N)、硝態(tài)氮( NO3--N? )、總氮(TN)、DO水質(zhì)參數(shù)采用國家標(biāo)準(zhǔn)分析方法[13], pH 采用PB-10 型酸度計(jì)測(cè)定。
高通量測(cè)序基于IlluminaHiSeq 測(cè)序平臺(tái)。本文中根據(jù)所擴(kuò)增的16SrRNA區(qū)域特點(diǎn),構(gòu)建小片段文庫對(duì)反應(yīng)器 R1 ! R2 不同階段污泥樣品的第3、4個(gè)可變區(qū)(V3V4)區(qū)進(jìn)行聚合酶鏈?zhǔn)剑≒CR)擴(kuò)增和雙末端測(cè)序。PCR擴(kuò)增引物為341F(CCTAYGGGRB-GCASCAG)和 806R(GGACTACNNGGGTATCTAAT)。使用 TruSeq@DNAPCR-FreeSamplePreparationKit 建庫試劑盒進(jìn)行文庫構(gòu)建,構(gòu)建好的文庫經(jīng)過Qubit熒光定量儀和定量PCR分子生物學(xué)技術(shù)檢測(cè),文庫合格后,使用HiSeq2500PE250測(cè)序儀上機(jī)并完成雙末端測(cè)序,獲取分類注釋結(jié)果并分析生物群落結(jié)構(gòu)。
1.4 模擬廢水
反應(yīng)器進(jìn)水采用人工模擬生活污水,氯化銨NH4Cl 和亞硝酸鈉 NaNO2 分別提供氨氮和亞硝態(tài)氮,碳酸氫鈉 NaHCO3 提供碳源。
2 結(jié)果與分析
2.1 反應(yīng)器第1階段處理效果
反應(yīng)器 R1 ! R2 接種污泥為濟(jì)南某中水站反硝化污泥,反應(yīng)器內(nèi)溫度控制為 30°C , pH 控制為 7.5~ 8.5,反應(yīng)器換水率為 40% 。進(jìn)水前在進(jìn)水箱內(nèi)通入氮?dú)?15min ,吹脫進(jìn)水中的溶解氧。2組反應(yīng)器啟動(dòng)運(yùn)行 100d ,設(shè)置進(jìn)水中氮元素含量:第0—35天氨氮、亞硝態(tài)氮的質(zhì)量濃度分別為 41~86 、 38~ 64mg/L ,第36—65天氨氮、亞硝態(tài)氮的質(zhì)量濃度分別為 86~80,64~91mg/L ,第67—100天氨氮、亞硝態(tài)氮的質(zhì)量濃度分別為80\~118、 90~133mg/L 。
反應(yīng)器 R1 ! R2 中氮元素的轉(zhuǎn)化規(guī)律如圖3所示。由圖可知:在反應(yīng)器運(yùn)行 0~30d ,反應(yīng)器 R1 、R2 均出現(xiàn)出水氨氮含量大于進(jìn)水氨氮含量的情況,這可能是由于接種污泥適應(yīng)新環(huán)境過程,部分細(xì)菌死亡,菌體裂解,導(dǎo)致出水氨氮含量升高[14]。反應(yīng)器運(yùn)行 30~35d 時(shí),進(jìn)水氨氮的含量增加幅度較大,出水硝態(tài)氮含量與進(jìn)水氨氮含量差距逐漸增大,說明在厭氧環(huán)境下全程硝化反應(yīng)的比例不斷下降,發(fā)生厭氧氨氧化反應(yīng)概率較大,短程硝化反硝化反應(yīng)比例不斷上升。反應(yīng)器運(yùn)行 35~100d 時(shí),反應(yīng)器R1 、 R2 出水氨氮、亞硝態(tài)氮含量不斷降低,出水硝態(tài)氮含量不斷升高,反應(yīng)器厭氧氨氧化反應(yīng)逐漸穩(wěn)定。運(yùn)行 95d 時(shí),反應(yīng)器 R1 1 R2 中亞硝態(tài)氮消耗量與硝態(tài)氮生成質(zhì)量比分別為1.11和1.17,參考相關(guān)研究數(shù)據(jù)[15]發(fā)現(xiàn),厭氧氨氧化反應(yīng)在反應(yīng)器中占主導(dǎo)地位。本文構(gòu)建的反應(yīng)器中厭氧氨氧化反應(yīng)比例偏小,可能是因?yàn)檫M(jìn)水中有 SO42- 存在,發(fā)生了硫銨氧化反應(yīng),部分氨氮被氧化成硝態(tài)氮[16]
反應(yīng)器 R2 中氨氮、亞硝態(tài)氮的去除率更高,出水硝態(tài)氮含量高于反應(yīng)器 R1 中的。運(yùn)行 35~100d 時(shí),反應(yīng)器 R2 中厭氧氨氧化反應(yīng)的占比更高,可能是反應(yīng)器 R1 1 R2 中的厭氧氨氧化菌均得到富集。反應(yīng)器出水氨氮、亞硝態(tài)氮的含量繼續(xù)降低,總氮去除量逐漸增大,且反應(yīng)器 R2 的總氮去除量大于反應(yīng)器 R1 的,主要表現(xiàn)在反應(yīng)器運(yùn)行 65~100d 時(shí)反應(yīng)器運(yùn)行 95d 時(shí),反應(yīng)器 R1 ! R2 中亞硝態(tài)氮消耗量與硝態(tài)氮消耗量的質(zhì)量比分別為1.11和1.17,推測(cè)反應(yīng)器 R1 中的厭氧氨氧化反應(yīng)比例小于反應(yīng)器 R2 中的。
2.2 反應(yīng)器第2階段處理效果
在第2階段中,反應(yīng)器投加硝化污泥 500mL 污泥接種量為 4 300mg/L ,進(jìn)水中停止添加亞硝態(tài)氮,停止進(jìn)水氮?dú)獯得?,進(jìn)水溶解氧質(zhì)量濃度控制在 1mg/L 左右,游離氨(FA)的質(zhì)量濃度為7.8mg/L[17] [對(duì)NOB和氨氧化菌(AOB)的抑制質(zhì)量濃度分別為 0. 1~60 ! 10~150mg/L] ,溫度為32°C 。適應(yīng)運(yùn)行 10d 后,調(diào)整進(jìn)水氨氮質(zhì)量濃度約為 180mg/L 。
反應(yīng)器 R1 ! R2 中氨氮、硝態(tài)氮和總氮含量變化如圖4所示。由圖可知:反應(yīng)器運(yùn)行 10~26d 時(shí),氨氮和總氮的去除率下降,原因主要是反應(yīng)器中溶解氧環(huán)境、進(jìn)水底物發(fā)生改變,AOB菌群尚不能為反硝化菌和厭氧氨氧化菌提供充足的亞硝態(tài)氮,溶解氧的存在也限制了反硝化菌和厭氧氨氧化菌的活性。反應(yīng)器運(yùn)行 26~42d 時(shí),反應(yīng)器出水氨氮、硝態(tài)氮、總氮含量不斷下降,可能是由AOB活性逐漸恢復(fù),短程硝化比例逐漸升高,厭氧氨氧化反應(yīng)與短程硝化反硝化反應(yīng)的比例逐漸增大造成的。反應(yīng)器運(yùn)行 42~58 d時(shí),反應(yīng)器 R1 的氨氮去除率達(dá)到60% ,反應(yīng)器 R2 的達(dá)到 74% ,穩(wěn)定運(yùn)行過程中2個(gè)反應(yīng)器的總氮去除率分別達(dá)到 50% 和 60% ,短程硝化反硝化和厭氧氨氧化復(fù)合脫氮反應(yīng)比例逐漸增加,然后保持穩(wěn)定。
反應(yīng)器 R2 中氨氮、總氮的去除率均高于反應(yīng)器 R1 中的,原因是磁性顆粒有利于微生物富集和微生物膜增厚。隨著反應(yīng)的進(jìn)行,反應(yīng)器 R2 中磁性顆粒表面生長的生物膜增厚,在生物膜外表面利用水中溶解氧及氨氮產(chǎn)生亞硝態(tài)氮和硝態(tài)氮,反硝化菌利用不適應(yīng)新環(huán)境裂解的細(xì)菌作為碳源發(fā)生短程硝化反硝化反應(yīng),而生物膜內(nèi)表面處于缺氧階段,一部分存活下來的厭氧氨氧化菌利用亞硝態(tài)氮和氨氮發(fā)生厭氧氨氧化反應(yīng)。反應(yīng)器 R2 中的厭氧氨氧化反應(yīng)與短程硝化反硝化反應(yīng)的比例大于反應(yīng)器 R1 中的,原因是磁性顆粒的存在提高了反硝化菌的相對(duì)豐度。反應(yīng)器運(yùn)行 42~58d 時(shí),反應(yīng)器 R2 的氨氮、總氮去除率均大于反應(yīng)器 R1 的,NOB不斷被抑制,AOB不斷將氨氮氧化成亞硝態(tài)氮,為反硝化菌和厭氧氨氧化菌提供亞硝態(tài)氮,短程硝化反硝化和厭氧氨氧化反應(yīng)比例逐漸增加,直到穩(wěn)定,原因是磁性顆粒的加入抑制了NOB的活性,對(duì)AOB有一定的促進(jìn)作用。AOB、反硝化細(xì)菌和厭氧氨氧化菌能夠共存,反應(yīng)器主要發(fā)生短程硝化反硝化反應(yīng)和厭氧氨氧化反應(yīng),磁性顆粒的添加提高了厭氧氨氧化菌、硝化細(xì)菌和反硝化細(xì)菌的活性。
2.3 厭氧氨氧化菌的確定及微生物群落分析
結(jié)合高通量測(cè)序,進(jìn)一步分析磁性顆粒對(duì)微生物群落的影響。濟(jì)南某中水站反硝化污泥為樣本A0 ,第1階段運(yùn)行 100d 的反應(yīng)器 R1 、 R2 的污泥為樣本 A1 、 A2 ,第2階段運(yùn)行 60d 的反應(yīng)器 R1 1 R2 的污泥為樣本 A3 、 A4 。不同污泥樣品的有效序列數(shù)見圖5。由圖可知,接種污泥樣本 A0 的微生物的有效序列數(shù)遠(yuǎn)大于其余4個(gè)樣本的。反應(yīng)器 R1 !R2 的反硝化污泥在第1階段啟動(dòng)過程中淘汰掉不適應(yīng)新環(huán)境的微生物,微生物多樣性下降。第2階段反應(yīng)器 R1 ! R2 中由于溶解氧的加入和溫度的升高改變了反應(yīng)器的微生物環(huán)境,因此序列數(shù)較第1階段的有所增加,且較接種污泥樣本 A0 的序列數(shù)少。
不同污泥樣品基于操作分類單元(OTU)的韋恩(Venn)圖如圖6所示。由圖可以看出,5個(gè)樣品共有的OUT數(shù)為359,說明樣品之間存在一定的相似性。樣本 A1 ! A2 共有的OUT數(shù)為443,樣本 A1 獨(dú)有的OUT數(shù)為502,樣本 A2 獨(dú)有的OUT數(shù)為259,樣本 A3 ! A4 共有的OUT數(shù)為826,樣本 A3 獨(dú)有的OUT數(shù)為219,樣本 A4 獨(dú)有的OUT數(shù)為327,可見磁性顆粒的加入對(duì)OUT數(shù)影響較大。樣本 A1,A3 共有的OUT數(shù)為681,樣本 A1 獨(dú)有的OUT數(shù)為419,樣本 A3 獨(dú)有的OUT數(shù)為350,說明在不同運(yùn)行條件下有一定的差異性。接種污泥樣本 A0 中大量的微生物在培養(yǎng)的過程中被淘汰,能夠適應(yīng)環(huán)境的變形菌門和浮霉菌門等生存下來。
不同污泥樣品門水平柱狀圖如圖7所示。由圖可以看出,變形菌門是樣本中的優(yōu)勢(shì)菌門,在生物群落中具有極強(qiáng)的優(yōu)勢(shì),樣本 A0 、 A1 、 A2 、 A3 、 A4 中變形菌門的相對(duì)豐度分別為 52.40% ! 29.52% !32.03% 、 61.68% 、 67.36% ,加人磁性顆粒之后的樣本 A2 中變形菌門的相對(duì)豐度較樣本 A1 中的增加到 32.03% ,加入磁粉之后的樣本 A4 中變形菌門的相對(duì)豐度較樣本 A3 中的增加到 67.36% ,說明磁場(chǎng)作用能夠提高變形菌門的豐度和穩(wěn)定性。厭氧氨氧化菌屬于浮霉菌門,是微生物群落的重要組成部分。Rikmann等[18]發(fā)現(xiàn)疣微菌門Verrucomicrobia參與了硫酸鹽型厭氧氨氧化脫氮過程。4個(gè)反應(yīng)器中均發(fā)現(xiàn)了疣微菌門,在樣本 A0 7 A1 1 A2 ! A3 、 A4 中的相對(duì)豐度分別為 0.57% 、 0.29% 、 0.15% 、 0.02% !0.18% ,在反應(yīng)器運(yùn)行第1階段,該菌的相對(duì)豐度較高,但在第2階段該菌的相對(duì)豐度較小,原因可能是溶解氧的存在影響了疣微菌門的活性。
選取不同污泥樣品在屬水平相對(duì)豐度排名前35的屬繪制成的聚類熱圖如圖8所示。由圖可以看出:反應(yīng)器第1階段污泥樣品中發(fā)現(xiàn)了厭氧氨氧化菌Candidatus_Brocadia 和厭氧氨氧化菌Candidatus_Kuenenia 的存在[19],與樣本 A0 相比,樣本 A1 ! A2 中的厭氧氨氧化菌的相對(duì)豐度顯著提高,投加磁性顆粒的反應(yīng)器 R2 中厭氧氨氧化菌Candidatus_Kuenenia相對(duì)豐度提升較明顯,較好地解釋了反應(yīng)第1階段主要反應(yīng)為厭氧氨氧化反應(yīng)。在反應(yīng)器第2階段污泥樣品中均檢測(cè)出了厭氧氨氧化菌Candi-datus_Brocadia、厭氧氨氧化菌Candidatus_Kuenenia、亞硝酸菌Nitrosomonas、未命名的硝化螺旋菌Uni-dentified_Nitrospi-raceae、未命名的硝化螺旋菌Uni-dentified_Nitrosomonadaceae、維氏紅細(xì)菌Rhodobacter、陶厄式菌Thauera、紅環(huán)菌Denitratisoma、砂單胞菌Arenimonas、湖沉積桿菌Limnobacter和熱單胞菌Thermomonas、根際假河桿菌Rivibacter,說明在第2階段形成了以短程硝化反硝化和厭氧氨氧化為主的復(fù)合生物脫氮體系。亞硝酸菌Nitrosomonas是一種重要的AOB,能夠?yàn)閰捬醢毖趸饔锰峁┧璧膩喯跛猁}底物。研究發(fā)現(xiàn),樣本 A1 、 A2 、 A3 、 A4 中亞硝酸菌Nitrosomonas相對(duì)豐度分別為 1.10% 、1.05%.0.56%.0.55% ,說明在磁場(chǎng)的作用下,亞硝化菌屬有一定優(yōu)勢(shì)。未命名的硝化螺旋菌Uni-dentified_Nitrospiraceae、未命名的硝化螺旋菌Uni-dentified_Nitrosomonadaceae屬于NOB,2種菌屬的作用是將亞硝態(tài)氮氧化為硝態(tài)氮,造成硝態(tài)氮濃度升高,未命名的硝化螺旋菌Unidentified_Nitrospiraceae在樣本 A3?A4 中的相對(duì)豐度分別為 0.49%.0.23% 未命名的硝化螺旋菌Unidentified_Nitrospiraceae在樣本 A1,A2,A3, A4 相對(duì)豐度分別為 2.10% ! 0.77% !0.88% 、 0.86% ,說明磁性顆粒對(duì)NOB有一定的抑制作用,說明反應(yīng)器第2階段發(fā)生了短程硝化反應(yīng)。有反硝化功能的菌屬有維氏紅細(xì)菌、陶厄式菌、紅環(huán)菌、砂單胞菌、湖沉積桿菌和熱單胞菌,根際假河桿菌[20],陶厄氏菌是短程反硝化的重要功能菌,能夠?qū)⑾鯌B(tài)氮轉(zhuǎn)化為亞硝態(tài)氮[21-22],添加磁性顆粒的樣品 A4 中陶厄式菌的豐度較樣品 A3 的顯著提高,相對(duì)豐度由 3.60% 提高到 10.87% ,陶厄式菌為優(yōu)勢(shì)菌屬并占據(jù)有利生態(tài)位。添加磁性顆粒后熱單胞菌的相對(duì)豐度由樣本 A3 中的 0.67% 提高至樣本A4 中的 1.67% ,說明磁性顆粒對(duì)復(fù)合生物脫氮體系中這2種菌生長有促進(jìn)作用,較好地解釋了第2階段主要反應(yīng)為短程硝化反硝化反應(yīng)。另外,磁性顆粒對(duì)湖沉積桿菌和根際假河桿菌有抑制作用,在樣本 A4 中相對(duì)豐度分別降低至 0.44% 和 0.99% ,表明磁場(chǎng)深刻影響了反應(yīng)器的生物群落結(jié)構(gòu)。
3結(jié)論
本文中通過對(duì)比實(shí)驗(yàn)探究了磁性顆粒對(duì)復(fù)合生物脫氮體系啟動(dòng)過程的影響,得出如下結(jié)論:
1)在反應(yīng)器第1階段,厭氧狀態(tài)下以氨氮與亞硝態(tài)氮為底物,反應(yīng)器均能成功啟動(dòng),反應(yīng)器 R1 、R2 均能發(fā)生以厭氧氨氧化為主的反應(yīng),并且添加磁性顆粒的反應(yīng)器 R2 中厭氧氨氧化反應(yīng)占比更大。2)在反應(yīng)器第2階段,在低溶解氧條件下,繼續(xù)接種硝化污泥,能形成較穩(wěn)定的復(fù)合生物脫氮體系,啟動(dòng)過程中氨氮去除率分別為 60% 、 74% ,穩(wěn)定運(yùn)行過程中,總氮的去除率分別為 50% 1 65% 。3)與接種污泥樣本 A0 比較,在反應(yīng)器第1階段2個(gè)反應(yīng)器厭氧氨氧化菌相對(duì)豐度均增大,投加磁性顆粒的反應(yīng)器 R2 中厭氧氨氧化菌Candidatus_Kuenenia豐度提升較明顯,在反應(yīng)器第2階段,投加磁性顆粒的反應(yīng)器 R2 對(duì)NOB和亞硝酸菌具有抑制作用,陶厄式菌和熱單胞菌的豐度提升明顯。
參考文獻(xiàn):
[1]DUR,PENGYZ,CAOSB,etal.Mechanismsand microbial structure of partial denitrificationwith high nitrite accumulation[J]. Applied Microbiologyand Biotechnology,2016,100(4):2011.
[2] TAOY,GAODW,F(xiàn)UY,etal.Impactofreactorconfiguration on anammox process start-up:MBR versus SBR[J].Bioresource Technology,2012,104:73.
[3] LIY,CUI N,XUANK,et al. Start-up performance and process kinetics of a UASB-anammox reactor at low substrate concentration[J]. Journal of Environmental Chemical Engineering,2021,9(6) :106726.
[4] CHENJJ,ZHANG XN,ZHOUL,et al.Metagenomics insights intohigh-ratenitrogenremoval frommunicipalwastewaterbyintegrated nitrification,partial denitrification and Anammoxat an extremely shorthydraulic retention time[J].Bioresource Technology,2023, 387:129606.
[5] CHI W L,YANG H,ZHANG S D,et al. Nitrogen removal performance and bacterial flora analysis of a partial nitrification-anaerobic ammonium oxidation-denitrification system treating rare earth element tailingswastewater[J].Journalof Environmental Chemical Engineering,2022,10(3):107961.
[6] CUIB,YANGQ,LIU XH,et al.The effect of dissolved oxygen concentration on long-term stability of partial nitrification process [J].Journal of Environmental Sciences,2020,90:343.
[7] DUAN HR,YEL,WANGQL,et al.Nitrite oxidizing bacteria by sidestream inactivation[J].Water Research,2019,162: 331.
[8]HU B,WANG Y L, QUAN JN, et al. Effects of static magnetic field on the performances of anoxic/oxic sequencing batch reactor [J].Bioresource Technology,2020,309:123299.
[9]XUD,JI H M,REN H Q,et al. Inhibition effect of magnetic field on nitrous oxide emission from sequencing batch reactor treating domestic wastewater at low temperature[J]. Journal of Environmental Sciences,2020,87:205.
[10]孫紹鈞,沈軍,王曉宇,等.磁性濾料對(duì)生物脫氮濾池微生物群 落的影響[J].學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),2023,37(2):172.
[11]WANG W,ZHOU S X,LI R,et al.Preparation of magnetic powdered carbon/nano .Fe304 composite for efficient adsorption and degradation of trichloropropyl phosphate from water[J]. Journal of Hazardous Materials,2021,416:125765.
[12]LI W Y,LI XY,ZHANG Q,et al. Recent advances of partial anammox by controling nitrite supply in mainstream wastewater treatment through step-feed mode[J]. Science of the Total Environment,2023,912:168965.
[13]HOU L G,LIU Y,F(xiàn)AN S,et al. Magnetic field enhanced denitrification efficiency of immobilized bacterial particles[J].Water Science and Technology,2020,81(3): 622.
[14]封威,羅波,熊亞.污水處理廠出水氨氮超標(biāo)的原因及解決 措施[J].工程技術(shù)研究,2016(7):22.
[15]LIU X W,XU J,HUANG JL,et al.Bacteria-supported iron scraps for the removal of nitrate from low carbon-to-nitrogen ratio wastewater[J]. RSC Advances,2019,9(6) : 3285.
[16]RIOS-DEL TORO E E,CERVANTES F J. Coupling between anammox and autotrophic denitrification for simultaneous removal of ammonium and sulfide by enriched marine sediments[J]. Biodegradation,2016,27:107.
[17]LI Y G,CHEN ZG,ZhOU S W,et al. Improving stability and nitrogen removal performance of pilot-scale autotrophic process for mature landfill leachate treatment utilizing in-situ organics[J]. Bioresource Technology,2023,381:129118.
[18]RIKMANN E, ZEKKER I, TOMINGAS M,et al. Comparison of sulfate-reducing and conventional Anammox upflow anaerobic sludge blanket reactors[J]. Journal of Bioscience and Bioengineering,2014,118(4): 426.
[19]LIU B B,MAO Y J,BERGAUST L,et al. Strains in the genus Thauera exhibit remarkably different denitrification regulatory phenotypes[J]. Environmental Microbiology,2013,15(10) : 2816.
[20]曹濤濤,徐棟,白國梁,等.以RAS固體廢棄物為碳源的改 進(jìn)型人工濕地對(duì)養(yǎng)殖尾水的脫氮效果[J].水生生物學(xué)報(bào), 2022,46(10): 1475.
[21]DUR,PENG Y Z,CAO S B,et al. Mechanisms and microbial structure of partial denitrification with high nitrite accumulation[J]. Applied Microbiology and Biotechnology,2020,104(7):3207.
[22]SI Z,PENG Y Z,YANG A M,et al. Rapid nitrite production via partial denitrification:pilot-scale operation and microbial community analysis[J]. Environmental Science:Water Research amp; Technology,2018,4:80.
(責(zé)任編輯:于海琴)