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        廣州地區(qū)口腔鱗狀細(xì)胞癌中EB病毒與人乳頭狀瘤病毒的感染及臨床病理特征

        2025-05-31 00:00:00梁思泓邵怡婷李海剛杜鈺紀(jì)燕英班媛媛胡雯陳健寧邵春奎
        新醫(yī)學(xué) 2025年5期

        【摘要】 目的 探討廣州地區(qū)口腔鱗狀細(xì)胞癌(OSCC)中EB病毒(EBV)、人乳頭狀瘤病毒(HPV)的感染及臨床病理特征。方法 收集廣州地區(qū)304例OSCC標(biāo)本,其中123例來自中山大學(xué)附屬第三醫(yī)院(2014年1月至2024年12月),181例來自中山大學(xué)孫逸仙紀(jì)念醫(yī)院(2017年1月至2018年12月)。采用聚合酶鏈反應(yīng)(PCR)檢測病毒DNA,原位雜交分析EBV編碼小RNA(EBER)表達(dá),免疫組織化學(xué)檢測病毒相關(guān)蛋白并明確感染類型。結(jié)果 在304例OSCC標(biāo)本中,26.3%(80/304)為EBV-PCR陽性,其中63.8%(51/80)確診于TNM分期的Ⅰ/Ⅱ期,與陰性標(biāo)本相比,腫瘤分期差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P = 0.042)。EBV-PCR陽性O(shè)SCC標(biāo)本中,EBER陽性率為33.8%(27/80),其中92.6%(25/27)定位于細(xì)胞質(zhì)。EBV核抗原1(EBNA-1)、潛伏膜蛋白1(LMP-1)及EBNA-2的檢出率分別為83.8%(67/80)、81.3%(65/80)和56.3%(45/80),EBV裂解蛋白ZEBRA未檢出,Ⅲ型潛伏感染占41.3%(33/80)。相比之下,HPV DNA檢出率僅2.6%(8/304),其中2例p16-IHC陽性,EBV-HPV共感染OSCC僅1例。結(jié)論 以中山大學(xué)附屬醫(yī)院標(biāo)本為例,廣州地區(qū)OSCC中EBV檢出率較高,以Ⅲ型潛伏感染為主,EBER主要定位于細(xì)胞質(zhì),提示EBV可能在OSCC發(fā)病機(jī)制中發(fā)揮作用。相比之下,HPV相關(guān)OSCC罕見,其致病作用有限。

        【關(guān)鍵詞】 EB病毒;人乳頭狀瘤病毒;口腔鱗狀細(xì)胞癌;潛伏感染;臨床病理特征

        Epstein-Barr virus and human papillomavirus infections and clinicopathological characteristics in oral squamous cell carcinoma in Guangzhou: a study based on specimens from affiliated hospitals of Sun Yat-sen University

        LIANG Sihong1, SHAO Yiting2, LI Haigang3, DU Yu1, JI Yanying1,BAN Yuanyuan1, HU Wen1, CHEN Jianning1, SHAO Chunkui1

        (1.Department of Pathology, the Third Affiliated Hospital of Sun Yat-sen University, Guangzhou 510630, China; 2.Department of Stomatology, the Third Affiliated Hospital of Sun Yat-sen University, Guangzhou 510630, China; 3.Department of Pathology, Sun Yat-sen Memorial Hospital of Sun Yat-sen University, Guangzhou 510120, China)

        Corresponding author: SHAO Chunkui, E-mail: shaochk@mail.sysu.edu.cn

        【Abstract】 Objective To investigate the infection status and clinicopathological characteristics of Epstein-Barr virus (EBV) and human papillomavirus (HPV) in oral squamous cell carcinoma (OSCC) in Guangzhou, China. Methods A total of 304 OSCC specimens were collected from Guangzhou, including 123 cases from the Third Affiliated Hospital of Sun Yat-sen University (January 2014 to December 2024) and 181 cases from Sun Yat-sen Memorial Hospital of Sun Yat-sen University (January 2017 to December 2018). Polymerase Chain Reaction (PCR) was used to detect viral DNA, in situ hybridization was used to assess EBV-encoded RNAs (EBER), and immunohistochemistry was performed to identify viral-related proteins and determine the type of infection. Results Among the 304 OSCC specimens, 26.3% (80/304) were EBV-PCR positive, with 63.8% (51/80) diagnosed at TNM stage I/II. Compared with EBV-negative cases, the difference in tumor staging was statistically significant (P = 0.042). Among the EBV-PCR-positive OSCC cases, the EBER-positive rate was 33.8% (27/80), with 92.6% (25/27) localized in the cytoplasm. The detection rates of EBV-encoded nuclear antigen-1 (EBNA-1), latent membrane protein-1 (LMP-1), and EBV-encoded nuclear antigen-2 (EBNA-2) were 83.8% (67/80), 81.3% (65/80), and 56.3% (45/80), respectively, while the lytic protein ZEBRA was not detected. Type III latent infection accounted for 41.3% (33/80). In contrast, HPV DNA was detected in only 2.6% (8/304) of OSCC cases, among which two were p16-IHC positive. Only one case of OSCC showed EBV-HPV coinfection. Conclusions Based on samples collected from Sun Yat-sen University affiliated hospitals, EBV infection is relatively prevalent in OSCC cases in Guangzhou, mainly characterized by type III latency and cytoplasmic localization of EBER, suggesting a potential role of EBV in the pathogenesis of OSCC. In contrast, HPV-related OSCC appears to be rare and likely plays a limited pathogenic role.

        【Key words】 Epstein-Barr virus; Human papillomavirus; Oral squamous cell carcinoma; Latency infection;

        Clinicopathological characteristics

        口腔鱗狀細(xì)胞癌(oral squamous cell carcinoma,

        OSCC)是口腔最常見的惡性腫瘤[1],全球年新增約30萬例,死亡約14.5萬例[2-3]。OSCC的5年生存率長期維持在50%左右[4]。EB病毒(Epstein-Barr virus,EBV)和人乳頭狀瘤病毒(human papillomavirus,HPV)可能在OSCC的發(fā)生、發(fā)展中發(fā)揮作用,但不同研究結(jié)果存在較大差異,病毒檢出率在不同地區(qū)從0%~100%不等,其致癌機(jī)制仍不明

        確[5-8]。廣州地區(qū)為鼻咽癌高發(fā)區(qū),鼻咽癌與EBV感染密切相關(guān),但OSCC與EBV的關(guān)系如何卻鮮有報道。一項(xiàng)小樣本研究提示EBV可能參與OSCC發(fā)生,但未對感染類型進(jìn)行分析[9]。HPV在廣州地區(qū)OSCC中的作用亦缺乏研究,一項(xiàng)針對舌鱗狀細(xì)胞癌的研究顯示,15.7%(19/121)標(biāo)本存在HPV DNA擴(kuò)增,且與男性患者相關(guān)。但該研究限于舌部OSCC,其普適性及代表性仍需進(jìn)一步確認(rèn)[10]。此外,近年來未有研究報道廣州地區(qū)EBV和HPV共同感染與OSCC的關(guān)系。因此,本研究以中山大學(xué)附屬醫(yī)院標(biāo)本為例,旨在探討廣州地區(qū)OSCC中EBV、HPV的感染及臨床病理特征,以深化對OSCC病因的理解。

        1 對象與方法

        1.1 研究對象

        本研究共收集304例原發(fā)性O(shè)SCC標(biāo)本,其中123例來自中山大學(xué)附屬第三醫(yī)院(2014年1月至2024年12月),181例來自中山大學(xué)孫逸仙紀(jì)念醫(yī)院(2017年1月至2018年12月)。所有患者術(shù)前均未接受放射治療或化學(xué)治療。為降低中心效應(yīng),本研究嚴(yán)格統(tǒng)一病例納入標(biāo)準(zhǔn)、組織固定及保存方法,以確保不同中心樣本的處理一致性,從而提高數(shù)據(jù)的可比性。收集患者的臨床病理資料,包括性別、年齡、腫瘤部位、腫瘤大小、組織學(xué)類型、淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移及腫瘤分期,其中腫瘤分期依據(jù)《美國癌癥聯(lián)合委員會(AJCC)TNM分期系統(tǒng)》第8版。本研究經(jīng)醫(yī)學(xué)倫理委員會審批(批件號:中大附三醫(yī)倫II2024-075-02,中大附二醫(yī)倫SYSKY-2022-256-01),所有患者均簽署知情同意書。

        1.2 主要試劑

        本研究主要使用以下試劑:QIAamp DNA FFPE Tissue Kit(Qiagen)、2×Pro Taq PCR預(yù)混液(艾科瑞生物工程有限公司)、聚合酶鏈反應(yīng)(polymerase chain reaction,PCR)引物(生工生物工程股份有限公司)、Novolink Max聚合物(Leica)及EBV編碼小RNA(EBV-encoded RNA,EBER)檢測試劑盒(北京中杉金橋生物技術(shù)有限公司)。免疫組織化學(xué)(immunohistochemistry,IHC)檢測采用以下抗體及稀釋比例:EBNA-1(1∶2 000,Santa Cruz)、LMP-1(1∶1 500,Abcam)、EBNA-2(1∶300,Novus)、ZEBRA(1∶450,Santa Cruz)及p16(即用型,Roche)。

        1.3 實(shí)驗(yàn)方法

        采用PCR檢測OSCC標(biāo)本中的EBV和HPV DNA,并通過原位雜交(in situ hybridization,ISH)分析EBER的表達(dá)。此外,利用IHC檢測EBV核抗原1(EBV-encoded nuclear antigen-1,EBNA-1)、EBV核抗原2(EBV-encoded nuclear antigen-2,EBNA-2)、潛伏膜蛋白1(latent membrane protein-1,LMP-1)及EBV裂解蛋白ZEBRA的表達(dá),同時檢測p16INK4A(p16)蛋白,以評估EBV感染類型及HPV相關(guān)性。所有實(shí)驗(yàn)均在相同實(shí)驗(yàn)室條件下進(jìn)行,采用統(tǒng)一的檢測平臺、試劑及標(biāo)準(zhǔn)化操作流程,并嚴(yán)格執(zhí)行質(zhì)量控制措施,以確保數(shù)據(jù)的穩(wěn)定性和可比性。

        1.4 標(biāo)本處理

        所有組織標(biāo)本經(jīng)10%中性福爾馬林固定并行石蠟包埋(formalin-fixed paraffin-embedded,F(xiàn)FPE),制備3.5 μm連續(xù)切片供后續(xù)實(shí)驗(yàn)分析。

        1.5 基因組DNA提取及PCR檢測

        使用QIAamp DNA FFPE Tissue Kit提取OSCC組織DNA,按照制造商說明操作。提取的DNA通過超微量分光光度計測定濃度和純度,并儲存于-20 ℃以備PCR分析。經(jīng)β-珠蛋白基因PCR擴(kuò)增評估DNA提取質(zhì)量,見表1。采用MY09/MY11通用引物擴(kuò)增L1片段,以檢測多種HPV亞型[11]。使用特異性引物擴(kuò)增EBNA-1、EBNA-3C、BamHI-F和BamHI-W片段,其中EBNA-3C片段擴(kuò)增產(chǎn)物可區(qū)分EBV A型(153 bp)與B型(246 bp)[12]。PCR反應(yīng)條件為:94 ℃預(yù)變性30 s,98℃變性10 s,55 ℃退火30 s,72 ℃延伸1 min,共35個循環(huán),最終延伸1 min。每次PCR檢測均設(shè)相應(yīng)對照,以確保實(shí)驗(yàn)可靠性。陽性對照為HPV陽性宮頸高級別鱗狀上皮內(nèi)病變及EBV陽性鼻咽癌FFPE組織DNA,陰性對照為DEPC處理的無核酸去離子水。

        1.6 免疫組織化學(xué)檢測

        根據(jù)試劑盒說明,采用Novolink Max聚合物檢測系統(tǒng)進(jìn)行IHC檢測,以分析EBV相關(guān)蛋白及p16的表達(dá)。顯微鏡下評估染色結(jié)果,判定標(biāo)準(zhǔn)如下:≥1%的腫瘤細(xì)胞呈現(xiàn)明確陽性染色,則判斷為EBNA-1、LMP-1、EBNA-2或裂解蛋白ZEBRA陽性。p16陽性標(biāo)準(zhǔn)為≥70%的腫瘤細(xì)胞胞質(zhì)及細(xì)胞核呈現(xiàn)強(qiáng)烈、彌漫的陽性染色。為確保實(shí)驗(yàn)結(jié)果的可靠性,設(shè)置相應(yīng)對照。陽性對照包括宮頸高級別鱗狀上皮內(nèi)病變FFPE組織(p16陽性對照)、EBV陽性鼻咽癌FFPE組織(EBNA-1和LMP-1陽性對照)、B95-8細(xì)胞蠟塊(EBNA-2陽性對照)及EBV相關(guān)淋巴增生性疾病FFPE組織(ZEBRA陽性對照)。陰性對照使用磷酸鹽緩沖液(1×)替代一抗孵育。

        1.7 原位雜交檢測

        按照制造商說明,采用EBER檢測試劑盒進(jìn)行ISH檢測。顯微鏡下觀察染色情況,若腫瘤細(xì)胞的細(xì)胞核或胞質(zhì)呈現(xiàn)陽性染色,則判定為EBER陽性[13]。EBER陽性鼻咽癌FFPE組織切片作為陽性對照,陰性對照則以磷酸鹽緩沖液(1×)替代探針處理。

        1.8 統(tǒng)計學(xué)方法

        采用SPSS 26.0分析數(shù)據(jù)。計數(shù)資料以n(%)表示,組間比較采用χ 2檢驗(yàn)或Fisher確切概率法。所有檢驗(yàn)均為雙側(cè)檢驗(yàn),P lt; 0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

        2 結(jié) 果

        2.1 OSCC中EBV DNA的擴(kuò)增及臨床病理特征

        在OSCC標(biāo)本中,成功擴(kuò)增EBV基因組片段,包括BamHI-W(3.6%,11/304)、BamHI-F(11.2%,34/304)、EBNA-1(13.5%,41/304)和EBNA-3C(23.4%,71/304),見圖1。在80例(26.3%)EBV-PCR陽性O(shè)SCC標(biāo)本中,51例(63.8%)至少擴(kuò)增2種EBV片段,其中3例擴(kuò)增4種、20例擴(kuò)增3種、28例擴(kuò)增2種。所有EBNA-3C PCR擴(kuò)增產(chǎn)物均為153 bp,提示所有EBNA-3C陽性O(shè)SCC(100%,71/71)均感染A型EBV。

        對EBV-PCR陽性O(shè)SCC患者的臨床病理特征進(jìn)行分析,見表2。結(jié)果顯示,I期為最常見TNM分期(37.5%,30/80),腫瘤原發(fā)部位以舌部為主(62.5%,50/80),其次為牙齦和頰黏膜(各13.8%,11/80),大部分唇部OSCC標(biāo)本為EBV-PCR陽性(3/4)。EBV-PCR陽性與陰性O(shè)SCC患者在腫瘤分期(P = 0.042)和腫瘤部位(P = 0.029)方面比較差異有統(tǒng)計學(xué)意義,陽性組中I/II期患者比例更高,部位以牙齦、頰黏膜及唇部構(gòu)為主。EBV-PCR陽性O(shè)SCC患者中,男性占65%(52/80),96.2%(77/80)為中-高分化OSCC,76.3%(61/80)無淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移。EBV-PCR陽性與陰性O(shè)SCC患者在性別、年齡、腫瘤大小、組織學(xué)分化及淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移方面比較差異均無統(tǒng)計學(xué)意義(均P gt; 0.05)。

        2.2 OSCC中EBER表達(dá)情況及臨床病理特征

        在EBV-PCR陽性O(shè)SCC標(biāo)本中,33.8%(27/80)EBER表達(dá)陽性。EBER陽性標(biāo)本中,腫瘤細(xì)胞核及胞質(zhì)均可見不同程度的染色,見圖1。其中92.6%(25/27)主要定位于胞質(zhì),僅7.4%(2/27)局限于細(xì)胞核。

        EBER-ISH陽性O(shè)SCC標(biāo)本的臨床病理特征整體上與EBV-PCR陽性標(biāo)本相似。EBER-ISH陽性O(shè)SCC主要發(fā)生于舌部(59.3%,16/27),其次為牙齦(14.8%,4/27)和頰黏膜(11.1%,3/27)。此外,EBER-ISH陽性O(shè)SCC以男性為主(74.1%,20/27),所有標(biāo)本均為中-高分化型,且多數(shù)(74.1%,20/27)無淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移。EBER-ISH陽性與陰性O(shè)SCC患者在性別、年齡、部位、腫瘤大小、組織學(xué)類型、淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移及TNM分期方面比較差異均無統(tǒng)計學(xué)意義(均P gt; 0.05)。

        2.3 OSCC中EBV潛伏與EBV裂解蛋白ZEBRA的表達(dá)

        在EBV-PCR陽性O(shè)SCC標(biāo)本中,EBNA-1、LMP-1和EBNA-2的陽性率分別為83.8%(67/80)、81.3%(65/80)和56.3%(45/80),見圖1。所有標(biāo)本均未檢測到EBV裂解蛋白ZEBRA(0/80)。結(jié)合EBV潛伏蛋白的表達(dá)模式[14-15],可推測其潛伏感染類型,見表3。在71例EBV-PCR陽性O(shè)SCC標(biāo)本中,Ⅲ型潛伏感染占41.3%(33/80),特征為EBNA-1、EBNA-2和LMP-1均表達(dá)。Ⅱ型潛伏感染占36.3%(29/80),進(jìn)一步分為Ⅱa型(EBNA-1和LMP-1表達(dá),28.8%,23/80)及Ⅱb型(EBNA-1和EBNA-2表達(dá),7.5%,6/80)。此外,Ⅰ型潛伏感染占6.3%(5/80),僅表達(dá)EBNA-1。另有5.0%(4/80)標(biāo)本未檢測到EBV潛伏蛋白,可能為0型潛伏感染或EBV-PCR假陽性。其余11.3%(9/80)標(biāo)本的EBV潛伏感染類型尚不明確。

        2.4 OSCC中HPV的感染情況

        在304例OSCC標(biāo)本中,HPV DNA的檢出率為2.6%(8/304),見圖2。HPV-PCR陽性O(shè)SCC患者8例,包括6例男性和2例女性,年齡37~78歲,腫瘤原發(fā)部位涵蓋牙齦、舌部和頰黏膜。值得注意的是,僅2例患者(病例3和病例7)發(fā)生淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移,所有病例病理類型均為高分化OSCC,見表4。由于樣本量有限,無法進(jìn)一步行統(tǒng)計分析。

        在HPV-PCR陽性O(shè)SCC標(biāo)本中,僅2例(2/8)同時為p16-IHC陽性,歸類為HPV相關(guān)OSCC,見圖2。其中1例同時為EBV-PCR、HPV-PCR和p16-IHC陽性,提示EBV與HPV共同感染。該病例(病例2)為37歲女性,腫瘤原發(fā)于舌部,無淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移,TNM分期為I期,病理類型為高分化OSCC,見表4。此外,該標(biāo)本EBER-ISH檢測陽性,并表達(dá)EBNA-2、LMP-1及EBNA-2,提示為EBV的Ⅲ型潛伏感染。

        3 討 論

        OSCC是最常見的口腔惡性腫瘤,其發(fā)生發(fā)展與病毒感染,尤其是EBV和HPV的作用尚不明確。本研究中廣州2家醫(yī)院26.3%(80/304)的OSCC標(biāo)本存在EBV DNA擴(kuò)增,并顯示EBV-PCR陽性與陰性患者在腫瘤分期方面差異具有統(tǒng)計學(xué)意義。與傳統(tǒng)認(rèn)知不同,本研究顯示EBER主要定位于OSCC腫瘤細(xì)胞的胞質(zhì),而非細(xì)胞核。進(jìn)一步分析表明,EBV-PCR陽性O(shè)SCC主要為EBVⅢ型潛伏感染。此外,HPV相關(guān)OSCC僅占0.7%(2/304),而EBV-HPV共同感染病例僅0.3%(1/304)。這可在一定程度上反映廣州地區(qū)OSCC患者中EBV、HPV及其共同感染的情況和臨床病理特征。

        本研究檢測到26.3%(80/304)的OSCC標(biāo)本存在EBV DNA擴(kuò)增,結(jié)果與既往研究相似[16-17]。然而,OSCC中EBV DNA檢出率在不同研究中差異較大。例如,Al-Thawadi等[18]報道在78.1%的OSCC標(biāo)本中檢測到EBV DNA,而Dayyani等[5]的研究則未檢出EBV DNA。這種差異可能與地理區(qū)域、樣本類型、標(biāo)本采集方式及檢測方法的不同有關(guān)[7]。為降低EBV-PCR在OSCC檢測中的假陰性率,本研究采用多EBV基因片段PCR擴(kuò)增策略,以提高檢測靈敏度。

        EBV-PCR陽性O(shè)SCC患者的臨床病理特征分析顯示EBV-PCR陽性和陰性患者在腫瘤分期方面差異有統(tǒng)計學(xué)意義。大多數(shù)EBV-PCR陽性O(shè)SCC病例確診于早期階段,且未發(fā)生淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移。這些數(shù)據(jù)提示,EBV相關(guān)OSCC患者可能具有更好的預(yù)后。這一結(jié)果與EBV相關(guān)胃癌的研究相似,即EBV陽性胃癌患者的淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移率低于陰性患者,且預(yù)后更佳[19-20]。然而,考慮到不同癌癥類型的異質(zhì)性、潛在混雜因素的影響以及當(dāng)前研究數(shù)據(jù)的局限性,相關(guān)結(jié)論仍需謹(jǐn)慎解讀。未來研究需在更嚴(yán)格的控制下進(jìn)一步闡明EBV在OSCC發(fā)生和發(fā)展中的作用。

        一般而言,EBER在EBV感染的所有潛伏期均可檢測到,因此EBER-ISH通常被視為EBV感染的金標(biāo)準(zhǔn)[21]。然而,在本研究中,僅33.8%的EBV-PCR陽性O(shè)SCC顯示EBER-ISH陽性。這一現(xiàn)象在先前研究中亦有報道,即部分EBV-PCR陽性O(shè)SCC標(biāo)本表現(xiàn)為EBER-ISH陰性[22]。這一現(xiàn)象可由“hit and run”假說解釋,即病毒感染的腫瘤細(xì)胞在獲得遺傳穩(wěn)定性后,可能會逐漸丟失病毒基因組[23]。類似地,一些EBER-ISH陰性的胃癌標(biāo)本仍可通過數(shù)字PCR檢測到EBV DNA,或通過RNA scope檢測到EBNA-1 mRNA,并可能伴隨病毒介導(dǎo)的表觀遺傳學(xué)改變[24]。本研究結(jié)果提示,OSCC組織中的EBER表達(dá)可能隨時間逐漸降低,最終導(dǎo)致EBER-ISH陰性,而PCR仍可檢測到殘存的EBV基因片段,并可能繼續(xù)發(fā)揮生物學(xué)作用。此外,IHC結(jié)果顯示,即使EBER-ISH陰性,部分OSCC標(biāo)本仍表達(dá)EBV編碼蛋白。因此,盡管EBER-ISH被廣泛認(rèn)為是EBV感染的檢測標(biāo)準(zhǔn),其在EBV相關(guān)OSCC檢測中的可靠性仍需進(jìn)一步確認(rèn)。對于EBER-ISH陰性的OSCC標(biāo)本,可能需結(jié)合如本研究所用的多靶點(diǎn)PCR方法,以提高EBV檢測的敏感性和準(zhǔn)確性。

        值得注意的是,在EBER-ISH陽性標(biāo)本中,92.6%的標(biāo)本主要表現(xiàn)為腫瘤細(xì)胞的胞質(zhì)陽性染色,而僅7.4%(2/27)的標(biāo)本呈現(xiàn)細(xì)胞核陽性染色。這一發(fā)現(xiàn)提示EBER可能在細(xì)胞質(zhì)中發(fā)揮作用。Ahmed等[25]結(jié)合分子生物技術(shù)和電子顯微技術(shù),觀察到EBER在EBV感染的B細(xì)胞系中同時定位于細(xì)胞核和細(xì)胞質(zhì)。此外,Cheng等[26]的研究表明,EBER可存在于細(xì)胞囊泡內(nèi),并通過外泌體途徑發(fā)揮作用。另外,EBER在細(xì)胞質(zhì)中的分布與雙鏈RNA依賴性蛋白激酶密切相關(guān),可能通過與其相互作用參與蛋白調(diào)控[27]。本研究顯示,大多數(shù)EBER-ISH陽性O(shè)SCC標(biāo)本以細(xì)胞質(zhì)定位為主,提示EBER在細(xì)胞質(zhì)中的分布可能在OSCC的發(fā)生發(fā)展中發(fā)揮關(guān)鍵作用。

        EBV編碼蛋白在EBV相關(guān)腫瘤的發(fā)生和進(jìn)展過程中起關(guān)鍵作用。EBNA-1是EBV復(fù)制和致病過程中必不可少的蛋白,參與維持病毒基因組穩(wěn)定性,并介導(dǎo)宿主細(xì)胞轉(zhuǎn)化[28]。LMP-1促進(jìn)細(xì)胞增殖、遷移和侵襲,在上皮細(xì)胞惡性轉(zhuǎn)化過程中發(fā)揮關(guān)鍵作用[29]。在本研究中,EBNA-1和LMP-1分別在83.8%和81.3%的EBV-PCR陽性O(shè)SCC標(biāo)本中表達(dá),提示其可能在OSCC的發(fā)生和進(jìn)展中發(fā)揮重要作用。

        不同類型腫瘤中EBV感染模式的差異,凸顯了EBV與宿主細(xì)胞間的復(fù)雜相互作用。在EBV-PCR陽性O(shè)SCC標(biāo)本中,以Ⅲ型潛伏感染為主,該類型通常見于免疫抑制相關(guān)疾病,如移植后淋巴增生性疾病和HIV相關(guān)淋巴瘤[30]。本研究納入的OSCC患者均為未接受治療的初診病例,提示觀察到的EBV Ⅲ型潛伏感染可能與腫瘤微環(huán)境中的局部免疫抑制密切相關(guān)。相比之下,Heawchaiyaphum等[31]在OSCC細(xì)胞系中主要檢測到Ⅰ型或Ⅱ型潛伏感染,反映出臨床標(biāo)本與體外培養(yǎng)細(xì)胞模型在EBV感染類型上的差異,提示宿主-腫瘤相互作用可能影響EBV的潛伏機(jī)制。此外,部分EBV-PCR陽性O(shè)SCC標(biāo)本表現(xiàn)出Ⅱ型、0型及其他尚未明確的潛伏感染類型。需要注意的是,檢測方法靈敏度可能影響EBV潛伏蛋白的實(shí)際表達(dá)水平,進(jìn)而影響EBV感染類型分布的準(zhǔn)確評估。

        本研究同時分析了OSCC標(biāo)本中HPV的感染狀態(tài)。盡管E6/E7 mRNA檢測被公認(rèn)為HPV診斷的金標(biāo)準(zhǔn),但因其依賴于新鮮凍存組織且操作復(fù)雜,限制了其在臨床中的應(yīng)用[32]。有研究表明,HPV-PCR聯(lián)合p16-IHC在檢測mRNA陽性的口咽鱗狀細(xì)胞癌樣本時,具有93%的靈敏度和96%的特異度[33]。因此,本研究采取了HPV L1-PCR結(jié)合p16-IHC聯(lián)合檢測,以識別HPV相關(guān)的OSCC標(biāo)本。結(jié)果顯示,僅0.7%的標(biāo)本同時呈現(xiàn)2項(xiàng)檢測陽性,提示HPV在OSCC中的致病作用可能較為有限。該結(jié)果可能受到多種因素的影響,包括HPV L1區(qū)域在病毒整合過程中的丟失[34]、FFPE組織中病毒DNA降解的可能[35],以及口腔上皮組織中p16表達(dá)的變異性[36]。

        本研究存在一定的局限性。首先,本研究采用多EBV基因片段PCR擴(kuò)增策略以提高檢測靈敏度,但可能帶來假陽性風(fēng)險。通過IHC及ISH證實(shí),在EBV-PCR陽性O(shè)SCC標(biāo)本中,95.0%(76/80)的腫瘤細(xì)胞至少表達(dá)一種EBV編碼蛋白或EBER,驗(yàn)證了本研究EBV-PCR檢測的可靠性。其次,本研究主要采用HPV-PCR和p16-IHC檢測高危型HPV,因其與惡性腫瘤的發(fā)生密切相關(guān)。然而,有研究表明,低危型HPV的E6和E7蛋白與EBV的LMP-1蛋白共同作用,誘發(fā)DNA損傷,并與口腔癌前病變相關(guān)[37]。低危型HPV相關(guān)腫瘤通常不表現(xiàn)出顯著的p16過表達(dá)[38],因此本研究有可能低估了低危型HPV在EBV共同感染OSCC發(fā)展中的潛在作用。未來研究需進(jìn)一步探討OSCC中低危型HPV與EBV的共同感染情況,以更全面地闡明不同類型HPV在OSCC發(fā)病機(jī)制中的作用。最后,本研究僅收集廣州地區(qū)兩家三甲醫(yī)院的標(biāo)本,仍需擴(kuò)大多中心樣本量以進(jìn)一步提升結(jié)果的代表性與可靠性。

        綜上所述,以中山大學(xué)附屬醫(yī)院的標(biāo)本為例,廣州地區(qū)OSCC中EBV檢出率為26.3%,EBER主要定位于腫瘤細(xì)胞胞質(zhì),且以Ⅲ型潛伏感染為主,提示EBV可能在部分OSCC的發(fā)生發(fā)展中發(fā)揮作用。相比之下,HPV相關(guān)OSCC少見,表明HPV感染在OSCC發(fā)病機(jī)制中的作用可能較為有限。

        利益沖突聲明:本研究未受到企業(yè)、公司等第三方資助,不存在潛在利益沖突。

        參 考 文 獻(xiàn)

        [1] RICH B J, SAMUELS S E, AZZAM G A, et al. Oral cavity squamous cell carcinoma: review of pathology, diagnosis, and management[J]. Crit Rev Oncog, 2024, 29(3): 5-24. DOI: 10.1615/critrevoncog.2023050055.

        [2] GUPTA I, BADRZADEH F, TSENTALOVICH Y, et al. Connecting the dots: investigating the link between environmental, genetic, and epigenetic influences in metabolomic alterations in oral squamous cell carcinoma[J]. J Exp Clin Cancer Res, 2024, 43(1): 239. DOI: 10.1186/s13046-024-03141-5.

        [3] 林寒瀟, 鄧穎勛, 洪磊, et al. 口腔癌根治術(shù)后早期營養(yǎng)支持達(dá)標(biāo)狀況及其影響因素研究[J]. 新醫(yī)學(xué), 2025, 56(1): 27-33. DOI: 10.12464/j.issn.0253-9802.2024-0296.

        LIN H X, DENG Y X, HONG L, et al. Incidence and influencing factors of nutritional deficit in oral cancer patients during the immediate postoperative period after radical resection surgery[J]. J New Med, 2025, 56(1): 27-33. DOI: 10.12464/j.issn.0253-9802.2024-0296.

        [4] MENDITTI D, SANTAGATA M, GUIDA D, et al. State of the art in the diagnosis and assessment of oral malignant and potentially malignant disorders: present insights and future outlook-an overview[J]. Bioengineering (Basel), 2024, 11(3): 228. DOI: 10.3390/bioengineering11030228.

        [5] DAYYANI F, TAVAKOLIAN S, GOUDARZI H, et al. Prevalence of HSV, varicella-zoster, CMV, EBV and HPV in the oral cavity and the larynx carcinoma in Iran[J]. Future Virol, 2021, 16(2): 141-151. DOI: 10.2217/fvl-2020-0049.

        [6] RAHMAN R, GOPINATH D, BUAJEEB W, et al. Potential role of Epstein-Barr virus in oral potentially malignant disorders and oral squamous cell carcinoma: a scoping review[J]. Viruses, 2022, 14(4): 801. DOI: 10.3390/v14040801.

        [7] KATIRACHI S K, GR?NLUND M P, JAKOBSEN K K, et al. The prevalence of HPV in oral cavity squamous cell carcinoma[J]. Viruses, 2023, 15(2): 451. DOI: 10.3390/v15020451.

        [8] PéREZ-ISLAS E, GARCíA-CARRANCá A, ACOSTA-GIO E, et al. Prognostic importance of DNA from human papillomavirus in patients with oral squamous cell carcinoma[J]. Med Oral Patol Oral Cir Bucal, 2022, 27(2): e150-e158. DOI: 10.4317/medoral.25092.

        [9] 丁學(xué)強(qiáng), 朱振宇, 王安訓(xùn), 等. EB病毒感染與口腔鱗狀細(xì)胞癌的關(guān)系[J]. 中山大學(xué)學(xué)報(醫(yī)學(xué)科學(xué)版), 1997,

        18(2): 64-65. DOI: 10.13471/j.cnki.j.sun.yat-sen.univ(med.sci).1997.0046.

        DING X Q, ZHU Z Y, WANG A X, et al. Relationship of Epstein-Barr virus infection with squamous cell carcinoma of the oral cavity[J]. J Sun Yat-sen Univ (Med Sci), 1997,

        18(2): 64-65. DOI: 10.13471/j.cnki.j.sun.yat-sen.univ(med.sci).1997.0046.

        [10] HUANG K, NI G, MA B, et al. Importance of human papillomavirus infection in squamous cell carcinomas of the tongue in Guangdong Province, China[J]. J Int Med Res, 2020, 48(1): 300060519897187. DOI: 10.1177/

        0300060519897187.

        [11] GIULIANI E, ROLLO F, DONà M G, et al. Human papillomavirus oral infection: review of methodological aspects and epidemiology[J]. Pathogens, 2021, 10(11): 1411. DOI: 10.3390/pathogens10111411.

        [12] LUPO J, TRUFFOT A, ANDREANI J, et al. Virological markers in Epstein-Barr virus-associated diseases[J]. Viruses, 2023, 15(3): 656. DOI: 10.3390/v15030656.

        [13] TURUNEN A, RAUTAVA J, GRéNMAN R, et al. Epstein-Barr virus (EBV)-encoded small RNAs (EBERs) associated with poor prognosis of head and neck carcinomas[J]. Oncotarget, 2017, 8(16): 27328-27338. DOI: 10.18632/oncotarget.16033.

        [14] ZHANG L, WANG R, XIE Z. The roles of DNA methylation on the promotor of the Epstein-Barr virus (EBV) gene and the genome in patients with EBV-associated diseases[J]. Appl Microbiol Biotechnol, 2022, 106(12): 4413-4426. DOI: 10.1007/s00253-022-12029-3.

        [15] KLEIN E, NAGY N, RASUL A E. EBV genome carrying B lymphocytes that express the nuclear protein EBNA-2 but not LMP-1: Type IIb latency[J]. Oncoimmunology, 2013, 2(2): e23035. DOI: 10.4161/onci.23035.

        [16] NAQVI S U, KHAN S, AHMED A, et al. Prevalence of EBV, CMV, and HPV in oral squamous cell carcinoma patients in the Pakistani population[J]. J Med Virol, 2020, 92(12): 3880-3883. DOI: 10.1002/jmv.25791.

        [17] VANSHIKA S, PREETI A, SUMAIRA Q, et al. Incidence OF HPV and EBV in oral cancer and their clinico-pathological correlation-a pilot study of 108 cases[J]. J Oral Biol Craniofacial Res, 2021, 11(2): 180-184. DOI: 10.1016/j.jobcr.2021.

        01.007.

        [18] AL-THAWADI H, GUPTA I, JABEEN A, et al. Co-presence of human papillomaviruses and Epstein-Barr virus is linked with advanced tumor stage: a tissue microarray study in head and neck cancer patients[J]. Cancer Cell Int, 2020, 20: 361. DOI: 10.1186/s12935-020-01348-y.

        [19] AWERKIEW S, ZUR HAUSEN A, BALDUS S E, et al. Presence of Epstein-Barr virus in esophageal cancer is restricted to tumor infiltrating lymphocytes[J]. Med Microbiol Immunol, 2005, 194(4): 187-191. DOI: 10.1007/s00430-004-0233-2.

        [20] XIE R Z, HUANG Z N, ZHANG X Q, et al. Long-term survival analysis after radical gastrectomy for Epstein-Barr virus-associated gastric cancer: a multicenter study[J]. Eur J Surg Oncol, 2025, 51(6): 109737. DOI: 10.1016/j.ejso.

        2025.109737.

        [21] ZEBARDAST A, YAHYAPOUR Y, MAJIDI M S, et al. Detection of Epstein-Barr virus encoded small RNA genes in oral squamous cell carcinoma and non-cancerous oral cavity

        samples[J]. BMC Oral Health, 2021, 21(1): 502. DOI: 10.1186/s12903-021-01867-8.

        [22] RUNGRAUNGRAYABKUL D, LAPTHANASUPKUL P, KITKUMTHORN N, et al. Epstein-Barr virus detection and LMP-1 expression in Thai patients with oral squamous cell carcinoma[J]. Head Neck Pathol, 2023, 17(1): 210-217. DOI: 10.1007/s12105-022-01501-1.

        [23] TODOROVI? N, AMBROSIO M R, AMEDEI A. Immune modulation by Epstein-Barr virus lytic cycle: relevance and implication in oncogenesis[J]. Pathogens, 2024, 13(10): 876. DOI: 10.3390/pathogens13100876.

        [24] SICILIANO M C, TORNAMBè S, CEVENINI G, et al. EBV persistence in gastric cancer cases conventionally classified as EBER-ISH negative[J]. Infect Agents Cancer, 2022, 17(1): 57. DOI: 10.1186/s13027-022-00469-5.

        [25] AHMED W, TARIQ S, KHAN G. Tracking EBV-encoded RNAs (EBERs) from the nucleus to the excreted exosomes of B-lymphocytes[J]. Sci Rep, 2018, 8(1): 15438. DOI: 10.1038/s41598-018-33758-4.

        [26] CHENG S, LI Z, HE J, et al. Epstein-Barr virus noncoding RNAs from the extracellular vesicles of nasopharyngeal carcinoma (NPC) cells promote angiogenesis via TLR3/RIG-I-mediated VCAM-1 expression[J]. Biochim Biophys Acta BBA Mol Basis Dis, 2019, 1865(6): 1201-1213. DOI: 10.1016/j.bbadis.2019.01.015.

        [27] SCHWEMMLE M, CLEMENS M J, HILSE K, et al. Localization of Epstein-Barr virus-encoded RNAs EBER-1 and EBER-2 in interphase and mitotic Burkitt lymphoma cells[J]. Proc Natl Acad Sci USA, 1992, 89(21): 10292-10296. DOI: 10.1073/pnas.89.21.10292.

        [28] LI J S Z, ABBASI A, KIM D H, et al. Chromosomal fragile site breakage by EBV-encoded EBNA1 at clustered repeats[J]. Nature, 2023, 616(7957): 504-509. DOI: 10.1038/s41586-023-05923-x.

        [29] LIAO C, LI M, CHEN X, et al. Anoikis resistance and immune escape mediated by Epstein-Barr virus-encoded latent membrane protein 1-induced stabilization of PGC-1α promotes invasion and metastasis of nasopharyngeal carcinoma[J]. J Exp Clin Cancer Res, 2023, 42(1): 261. DOI: 10.1186/s13046-023-02835-6.

        [30] VOLARIC A K, SALEEM A, YOUNES S F, et al. Epstein-Barr virus latency patterns in polymorphic lymphoproliferative disorders and lymphomas in immunodeficiency settings: Diagnostic implications[J]. Ann Diagn Pathol, 2024, 70: 152286. DOI: 10.1016/j.anndiagpath.2024.152286.

        [31] HEAWCHAIYAPHUM C, IIZASA H, EKALAKSANANAN T, et al. Epstein-Barr virus infection of oral squamous

        cells[J]. Microorganisms, 2020, 8(3): E419. DOI: 10.3390/microorganisms8030419.

        [32] CHANNIR H I, BENDTSEN S K, MELCHIOR L C, et al. Validation of the VisionArray? chip assay for HPV DNA testing in histology specimens of oropharyngeal squamous cell carcinoma[J].

        Head Neck Pathol, 2024, 18(1): 27. DOI: 10.1007/s12105-024-01628-3.

        [33] DICKINSON A, SARASWAT M, SYRJ?NEN S, et al. Comparing serum protein levels can aid in differentiating HPV-negative and-positive oropharyngeal squamous cell carcinoma patients[J]. PLoS One, 2020, 15(6): e0233974. DOI: 10.1371/journal.pone.0233974.

        [34] QIN L, LI D, WANG Z, et al. Comparison of multiplex PCR capillary electrophoresis assay and PCR-reverse dot blot assay for human papillomavirus DNA genotyping detection in cervical cancer tissue specimens[J]. Front Public Health, 2024, 12: 1421774. DOI: 10.3389/fpubh.2024.1421774.

        [35] GERASIMOVA Y, ALI H, NADEEM U. Challenges for pathologists in implementing clinical microbiome diagnostic testing[J]. J Pathol Clin Res, 2024, 10(5): e70002. DOI: 10.1002/2056-4538.70002.

        [36] HENDAWI N, NIKLANDER S, ALLSOBROOK O, et al. Human papillomavirus (HPV) can establish productive infection in dysplastic oral mucosa, but HPV status is poorly predicted by histological features and p16 expression[J]. Histopathology, 2020, 76(4): 592-602. DOI: 10.1111/his.14019.

        [37] UEHARA K, TANABE Y, HIROTA S, et al. Co-expression of low-risk HPV E6/E7 and EBV LMP-1 leads to precancerous lesions by DNA damage[J]. BMC Cancer, 2021, 21(1): 688. DOI: 10.1186/s12885-021-08397-0.

        [38] SAINI K S, SOMARA S, KO H C, et al. Biomarkers in head and neck squamous cell carcinoma: unraveling the path to precision immunotherapy[J]. Front Oncol, 2024, 14: 1473706. DOI: 10.3389/fonc.2024.1473706.

        (責(zé)任編輯:洪悅民)

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