摘要: 本研究旨在設(shè)計(jì)針對(duì)牛鏈球菌和牛球蟲的聯(lián)合多表位疫苗. 通過生物信息學(xué)篩選兩種病原體的T/B 細(xì)胞優(yōu)勢(shì)表位基因序列,串聯(lián)拼接后引入霍亂毒素B 亞單位(CTB)作為分子內(nèi)佐劑,設(shè)計(jì)得到多表位重組抗原CARR(CTB-AMA1-RodA-RodA). 經(jīng)密碼子優(yōu)化后,將CARR 基因克隆至pET28a(+)質(zhì)粒,轉(zhuǎn)化至大腸桿菌BL21(DE3),成功構(gòu)建了穩(wěn)定的表達(dá)工程菌. SDS-PAGE 顯示工程菌可高效表達(dá)約90 kDa 目標(biāo)蛋白,Western blot 驗(yàn)證表達(dá)蛋白能與抗CTB 及抗牛鏈球菌抗體特異性結(jié)合,且20代內(nèi)工程菌質(zhì)粒保有率超80%. 純化后的CARR蛋白免疫蛋雞,7 wk 后ELISA 檢測(cè)顯示特異性IgY 抗體效價(jià)達(dá)1∶12800. 體外中和實(shí)驗(yàn)證實(shí),該抗體顯著抑制牛鏈球菌生長,說明其具備功能性中和活性. 結(jié)果表明,CARR 重組蛋白可有效快速激發(fā)宿主體液免疫應(yīng)答,是牛鏈球菌和牛球蟲聯(lián)合疫苗的有效候選抗原靶點(diǎn).
關(guān)鍵詞: 牛鏈球菌; 牛艾美爾球蟲; 重組多表位抗原; 表達(dá)特性; 中和抗體
中圖分類號(hào): R392. 1 文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A DOI: 10. 19907/j. 0490-6756. 240260
1引言
牛鏈球菌(Streptococcus bovis)和牛球蟲分屬細(xì)菌和原蟲,其中S. bovis 是一種兼性厭氧的革蘭染色陽性細(xì)菌,屬于D群鏈球菌,該細(xì)菌能使牛發(fā)生酸中毒,并能導(dǎo)致奶牛乳腺炎、犢牛肺炎,嚴(yán)重降低肉牛質(zhì)量以及奶牛產(chǎn)奶量,同時(shí)該細(xì)菌還能感染人類,導(dǎo)致感染性心內(nèi)膜炎、菌血癥等疾?。?,2]. 近年來S. bovis 感染的發(fā)病率呈上升趨勢(shì),抗生素的使用也導(dǎo)致耐藥菌株不斷產(chǎn)生,尤其是對(duì)克拉霉素以及其他大環(huán)內(nèi)酯類抗生素產(chǎn)生耐受[3],其危害不容忽視,開發(fā)設(shè)計(jì)S. bovis 疫苗具有較大的臨床價(jià)值. 牛球蟲是一種胞內(nèi)寄生蟲,其中牛艾美耳球蟲(Eimeria bovis)是最具致病性的球蟲之一. 受感染的牛可通過糞便排除大量未孢子化的球蟲卵囊,導(dǎo)致卵囊在環(huán)境中大量存在,傳播給未感染個(gè)體,尤其是犢牛和幼牛幾乎不能避免.感染E. bovis 的犢??赡軙?huì)出現(xiàn)嚴(yán)重的腹瀉甚至死亡[4,5],研究E. bovis 疫苗可保護(hù)犢牛免受E. bo?vis 感染帶來的損害,增加犢牛的存活率. 有研究表明,母牛體內(nèi)的E. bovis 抗體可以通過初乳傳遞給犢牛[6,7],這表明給成年雌性個(gè)體接種E. bovis 疫苗仍具有較大的現(xiàn)實(shí)意義. 上述兩種病原體均可寄生于牛的消化道中,且均能在受感染動(dòng)物的糞便中檢出病原體,其在易感動(dòng)物間的流行不僅對(duì)畜牧業(yè)造成損失,還對(duì)牧區(qū)居民及工作人員的健康造成了嚴(yán)重威脅,因此對(duì)于S. bovis 和牛球蟲的防治是至關(guān)重要的.
目前,有效控制牛球蟲病和S. bovis 感染嚴(yán)重依賴于管理措施以及抗球蟲和抗菌藥物,而妥善的管理需要耗費(fèi)較大的人力物力,且藥物的長期使用也使耐藥性成為球蟲病和S. bovis 感染治療的潛在威脅[2,3],所以新的防治方法仍需探索. 表位疫苗由于其具有精準(zhǔn)免疫、安全性高、效果理想,且能降低免疫逃逸的風(fēng)險(xiǎn)等諸多優(yōu)勢(shì),所以無論在人類醫(yī)學(xué)和畜牧醫(yī)學(xué)中都是新型疫苗研究熱點(diǎn)[8,9]. 例如口蹄疫表位疫苗因具有安全性好、易操作、可控等優(yōu)勢(shì),已經(jīng)成為畜牧業(yè)中預(yù)防口蹄疫病毒的關(guān)鍵手段之一[9]. 因此設(shè)計(jì)S. bovis-牛球蟲融合多表位疫苗有利于從細(xì)菌和原蟲兩個(gè)方面減少易感動(dòng)物所受到的威脅,減少疫苗所帶來的不良反應(yīng),在促進(jìn)畜牧業(yè)發(fā)展的同時(shí)也保障了人類的健康. 本研究通過比對(duì)蛋白關(guān)鍵性、抗原性、可獲得性、理論有效性,最終篩選出了S. bovis 的桿狀決定蛋白(rod shape-determining" "protein, RodA)和牛球蟲的頂膜抗原(apical membrane antigen-1,AMA-1)、免疫定位蛋白1(immune" mapped protein1, IMP-1)作為多表位疫苗的靶蛋白,RodA 參與細(xì)菌肽聚糖的合成,影響細(xì)菌形態(tài),結(jié)構(gòu)分析顯示RodA 具有抗原性的可能性較高[10,11];AMA-1、IMP-1 參與寄生蟲對(duì)機(jī)體的免疫刺激[12,13],已有研究顯示AMA-1 刺激機(jī)體產(chǎn)生的抗體對(duì)包括瘧原蟲在內(nèi)的頂復(fù)門寄生蟲均有保護(hù)作用,是作為疫苗開發(fā)和診斷應(yīng)用的一個(gè)有前景的靶標(biāo)[14,15].
本研究將從S. bovis 的RodA 基因和牛球蟲的IMP-1、AMA-1 基因中篩選得到的優(yōu)勢(shì)表位基因序列以不同順序串聯(lián),再與霍亂毒素B 亞單位(Cholera toxin subunit B, CTB)相連,篩選構(gòu)建并表達(dá)了重組S. bovis-牛球蟲多表位疫苗CARR,并對(duì)CARR 的免疫反應(yīng)性、免疫原性進(jìn)行了初步研究,以及對(duì)融合蛋白刺激產(chǎn)生的抗體的抑菌效果做了初步檢測(cè).
2材料和方法
2.1主要材料
E. coli BL21(DE3)購自TansGen; pET28a(+)購自Novagen; His 標(biāo)簽蛋白純化試劑盒、鼠抗Histag 多抗、HRP 標(biāo)記的羊抗鼠IgG 購自碧云天公司;鼠抗CTB 單抗、鼠抗S. bovis 多抗由課題組自制,羊抗雞IgG、TMB 雙組分顯色試劑盒購自索萊寶有限公司;產(chǎn)蛋雞由四川農(nóng)業(yè)大學(xué)提供.
2. 2方法
2. 2. 1 S. bovis-牛球蟲雙基因融合抗原的設(shè)計(jì)及特性分析 通過對(duì)比篩選蛋白關(guān)鍵性、抗原性、可獲得性、理論有效性,最終選擇了牛球蟲的AMA-1、IMP-1 和S. bovis 的RodA 作為重組蛋白抗原的備選靶蛋白,在NCBI 上獲取艾美耳球蟲AMA-1 和IMP-1 以及牛球蟲的RodA 的氨基酸序列和對(duì)應(yīng)的基因序列. 運(yùn)用BepiPred 2. 0、IEDB網(wǎng)站(http://www. iedb. org/)進(jìn)行對(duì)應(yīng)備選蛋白的T、B 細(xì)胞表位預(yù)測(cè)并篩選優(yōu)勢(shì)表位,將篩選得到的細(xì)胞表位以不同順序連接,加入或不加入CTB 序列,得到不同的融合蛋白序列,對(duì)各融合蛋白三維穩(wěn)定性、分子量、等電點(diǎn)、表位個(gè)數(shù)、親水性、特異性等多參數(shù)綜合分析后選出最佳序列,并通過vectorbuilder 網(wǎng)站優(yōu)化密碼子,最終由生工生物技術(shù)公司合成目的序列.
2. 2. 2 CARR表達(dá)菌的構(gòu)建 通過雙酶切將合成的目的序列插入到pET28a(+)可表達(dá)區(qū)域,轉(zhuǎn)化至E. coli BL21(DE3),以抗性LB 平板(卡那霉素,50 μg/mL)篩選,并對(duì)陽性克隆的質(zhì)粒進(jìn)行酶切及測(cè)序鑒定.
2. 2. 3重組質(zhì)粒 pET28a(+)-CARR 穩(wěn)定性研究 方法參照王保寧等[16]質(zhì)粒保有率實(shí)驗(yàn)方法.
2. 2. 4 CARR誘導(dǎo)表達(dá)與表達(dá)形式分析 鑒定正確的工程菌種接種至抗性LB 液體培養(yǎng)基(卡那霉素,50 μg/mL)中,適當(dāng)培養(yǎng),然后以1∶50 的比例進(jìn)行傳代. 在培養(yǎng)到對(duì)數(shù)生長階段時(shí),添加IPTG,使其濃度達(dá)到1 mmol/L,在34 ℃和200 r/min下誘導(dǎo)8 h,收集細(xì)菌沉淀物并進(jìn)行超聲波破碎,破碎后的沉淀物被用含有尿素的Binding 緩沖液溶解. SDS-PAGE /Western blot 分析上清和沉淀(由于重組蛋白含有6× 組氨酸標(biāo)簽,因此Westernblot 選擇His tag 多抗進(jìn)行初步鑒定).
2. 2. 5鎳柱純化CARR 按照試劑盒操作說明書進(jìn)行純化.
2. 2. 6Western blot 分析CARR 的免疫反應(yīng)性分別用鼠抗CTB 單抗和自制鼠抗S. bovis(ATCC33317)多抗作為一抗,HRP 標(biāo)記的羊抗鼠IgG 作為二抗,同時(shí)設(shè)置空載質(zhì)粒重組菌為對(duì)照,分析CARR 的免疫反應(yīng)性.
2. 2. 7 CARR 的免疫原性檢測(cè) 純化后的CARR融合蛋白與超聲破碎后的S. bovis(ATCC33317)抗原分別制備成蛋白終濃度為1 mg/mL 的抗原液備用,分別免疫1 只產(chǎn)蛋雞,抗原于雞大腿兩側(cè)、翅根、背部肌肉多點(diǎn)注射,首次注射600 μg 抗原(與弗氏不完全佐劑等體積混合),在第一次免疫后每隔14 d 進(jìn)行1 次600 μg 單獨(dú)抗原免疫,在第一次免疫后每隔6~8 d 從每個(gè)組中收集雞蛋備用,持續(xù)8wk,采用鹽析法提取抗體,間接ELISA 法檢測(cè)IgY的效價(jià).
2. 2. 8特異性IgY 對(duì)S. bovis 的生長抑制活性經(jīng)傳代后的S. bovi(s ATCC33317)用LB液體培養(yǎng)基稀釋至OD600=0. 08,設(shè)置9 個(gè)組別(IgY-ATCC處理組:加入使培養(yǎng)體系里的IgY 濃度分別為2mg/mL、5mg/mL、10mg/mL;IgY-CARR 處理組:加入使培養(yǎng)體系里的IgY 濃度分別為2 mg/mL、5 mg/mL、10 mg/mL;阿莫西林(0. 1 μg/mL)處理組;非特異性IgY 處理組;空白對(duì)照組),于37 ℃、200 r/min 培養(yǎng)30 h,其間每隔3 h 進(jìn)行取樣測(cè)量光密度值(OD600).
3結(jié)果
3. 1 S. bovis- 牛球蟲雙基因融合抗原的設(shè)計(jì)及篩選
從AMA-1 和IMP-1、RodA 篩選得到的細(xì)胞表位以不同順序連接,加入或不加入CTB 序列,得到6 種融合蛋白序列,如下:
融合蛋白1:IMP-1-RodA-RodA(IRR)
融合蛋白2:AMA-1-RodA-RodA(ARR)
融合蛋白3: CTB-IMP-1-RodA-RodA(CIRR)
融合蛋白4: CTB-AMA-1-RodA-RodA(CARR)
融合蛋白5:IMP-1-RodA-RodA-CTB(IRRC)
融合蛋白6: AMA-1-RodA-RodA-CTB(ARRC)
各融合蛋白多參數(shù)分析篩選結(jié)果如表1,可見CARR (CTB-AMA-1-RodA-RodA) 和ARRC(AMA-1-RodA-RodA-CTB)更適合作為目標(biāo)融合蛋白基因序列,由于CARR 前端含有CTB 的信號(hào)肽,分泌表達(dá)的可能性高,因此優(yōu)先選擇CARR作為目標(biāo)蛋白. 重組CARR 基因序列全長為2355 bp,蛋白理論分子量約90×103 Da. 利用工具vectorbuilder 進(jìn)行密碼子優(yōu)化后其適應(yīng)指數(shù)由0. 62 增加至0. 91.
三維穩(wěn)定性:蛋白中ɑ 螺旋越多,則其三維穩(wěn)定性越高,使用過程越不容易異常降解,因此根據(jù)其三維結(jié)構(gòu)中的ɑ 螺旋和β 折疊的比例綜合Expasy 分析中的不穩(wěn)定指數(shù)(Instability index)分別計(jì)0~10 分;分子量:當(dāng)?shù)鞍椎姆肿恿窟^小時(shí),其免疫原性較差,因此合適的抗原蛋白應(yīng)有較大的分子量. 當(dāng)融合蛋白分子量lt;35 kDa 時(shí)計(jì)0分,當(dāng)融合蛋白分子量gt;35 kDa時(shí)計(jì)1~10 分;等電點(diǎn):常用裂解液的pH 為7. 4-8. 0,因此融合蛋白的等電點(diǎn)(PI)應(yīng)遠(yuǎn)離此區(qū)間. 當(dāng)融合蛋白PIlt;6. 0 或gt;10. 0 時(shí)計(jì)10 分,當(dāng)6. 0lt;融合蛋白PIlt;7. 0 或10. 0gt;融合蛋白PIgt;9. 0 時(shí)計(jì)5 分,當(dāng)7. 0lt;融合蛋白PIlt;9. 0 時(shí)計(jì)0 分;B 細(xì)胞表位個(gè)數(shù):理論上融合蛋白中的B 表位個(gè)數(shù)越多,其免疫原性越好,因此融合蛋白中每含有一個(gè)B 細(xì)胞表位則計(jì)1 分,上不封頂;T 細(xì)胞表位個(gè)數(shù):理論上融合蛋白中的T 表位個(gè)數(shù)越多越好,因此融合蛋白中每含有一個(gè)T 細(xì)胞表位則計(jì)1 分;親水性:融合蛋白的親水性越好,則其越容易發(fā)揮作用. 因此根據(jù)其親水性不同分別計(jì)0~10 分;特異性:融合蛋白的特異性越好,則發(fā)生不良反應(yīng)的概率越低. 因此根據(jù)其特異性分別計(jì)0~10 分;結(jié)構(gòu)圖:Phyre2 軟件對(duì)融合蛋白的三級(jí)結(jié)構(gòu)預(yù)測(cè)圖.
3. 2
CARR 原核表達(dá)工程菌的構(gòu)建與鑒定
pET28a(+)-CARR 經(jīng)過雙酶切后,電泳結(jié)果出現(xiàn)一條2300 bp 左右的亮帶(圖1),聯(lián)合測(cè)序結(jié)果表明所構(gòu)建的重組表達(dá)載體構(gòu)建正確.
3. 3 CARR 工程菌質(zhì)粒傳代穩(wěn)定性CARR 工程菌質(zhì)粒保有率結(jié)果如圖2 所示.
3. 4 CARR表達(dá)形式分析
經(jīng)誘導(dǎo)表達(dá)后,電泳結(jié)果顯示在約90×103 Da處出現(xiàn)相比于對(duì)照組更為明顯的蛋白條帶(圖3a泳道2 相比于泳道4),隨即以抗His tag 抗體進(jìn)行Western blot 鑒定. 結(jié)果僅顯示工程菌沉淀包涵體裂解組在相對(duì)分子質(zhì)量約90×103 Da 出現(xiàn)明顯含組氨酸標(biāo)簽的蛋白條帶(圖3b),因此CARR 的表達(dá)形式為包涵體表達(dá),Image j 軟件分析顯示CARR 占菌體總蛋白20. 3%.
3. 5 CARR的免疫反應(yīng)性分析
SDS-PAGE 顯示鎳柱純化效果良好,純化的CARR 分別以鼠抗S. bovis(ATCC33317)多克隆抗體(圖4a)、鼠抗CTB 單抗(圖4b)為一抗,進(jìn)行Western blot,結(jié)果顯示在約90×103 Da出現(xiàn)條帶,對(duì)照組無明顯條帶,說明所表達(dá)的CARR 抗原免疫反應(yīng)性良好.
3. 6 CARR 的免疫原性分析
檢測(cè)首次免疫后8 wk 內(nèi)收集雞蛋中的特異性IgY 效價(jià),如圖5 所示,可見經(jīng)過四次免疫,抗CARR-IgY 的效價(jià)逐漸升高,且相對(duì)于破碎抗原免疫的產(chǎn)蛋雞,CARR 刺激產(chǎn)生的特異性IgY 產(chǎn)生更快,且更早達(dá)到峰值,最終穩(wěn)定在1∶12 800.
純化后的IgY SDS-PAGE 電泳結(jié)果如圖6 所示,可見分子量為66×103 Da 左右的IgY 重鏈和25×103 Da 左右的IgY 輕鏈.
3. 7特異性IgY 對(duì)S. bovis 的生長抑制活性
如圖7 所示,特異性IgY 對(duì)于S. bovis 的生長具有明顯的抑制作用,且存在一定的劑量效應(yīng)關(guān)系,其中特異性抗CARR IgY 抗體的抑制作用略低于抗全菌破碎抗原IgY 抗體,且均小于阿莫西林的抑制作用,而非特異性的IgY 對(duì)于S. bovis 的生長沒有抑制作用.
4討論
S. bovis 和牛球蟲都是影響牛群健康的常見病原體,給牛群的養(yǎng)殖和生產(chǎn)帶來了嚴(yán)重的危害,糞便播散病原的方式以及病原在環(huán)境中的持續(xù)存在更是讓牧區(qū)對(duì)于兩種病原的防控難上加難. 而目前針對(duì)兩種病原體的防治缺乏高效且方便的方法,隨著新型疫苗的不斷發(fā)展,多表位疫苗的開發(fā)無疑是一個(gè)行之有效的方法. S. bovis 的RodA 在細(xì)菌的生長發(fā)育中至關(guān)重要,屬于SEDS 蛋白家族一員,其在革蘭陽性菌和革蘭陰性菌內(nèi)均廣泛存在,但在不同的屬中相對(duì)保守[10,11]. 2008 年,Uehara等人研究表明RodA 的主要作用除了影響細(xì)菌的形態(tài),還與細(xì)菌延伸等生命過程中的肽聚糖合成、降解密切相關(guān)[10]. 2018 年,Sjodt 等人報(bào)告了RodA的晶體結(jié)構(gòu),其含有三個(gè)巨大的外環(huán),且外環(huán)中包含了許多功能必需的殘基,而細(xì)菌膜蛋白的外環(huán)則往往構(gòu)成了很好的B 細(xì)胞表位. 此外,還有報(bào)告稱RodA 中存在極為保守的肽段,對(duì)這些保守肽段的誘導(dǎo)突變將導(dǎo)致菌體形態(tài)的改變并可能導(dǎo)致細(xì)菌裂解[11]. 因此,以RodA 作為S. bovis 疫苗靶點(diǎn)可能產(chǎn)生較好效果. 2011 年,Blake 等人鑒定出了艾美耳球蟲中能誘導(dǎo)保護(hù)性免疫反應(yīng)的區(qū)域,并從中篩選出了兩個(gè)重要抗原基因——AMA-1 基因和IMP-1 基因[12]. AMA-1 是頂復(fù)門寄生蟲侵入宿主細(xì)胞時(shí)必不可少的一種蛋白質(zhì),也是頂復(fù)門寄生蟲的重要抗原,其誘導(dǎo)機(jī)體產(chǎn)生的抗體對(duì)包括瘧原蟲在內(nèi)的頂復(fù)門寄生蟲均有保護(hù)作用[14,15],敲除AMA-1 基因的蟲株不能形成穩(wěn)定的克隆系[15]. 同時(shí),已有研究表明,IMP-1 在球蟲屬內(nèi)相對(duì)保守,與刺激機(jī)體免疫反應(yīng)有關(guān)[12,13],且該蛋白及其表位肽所激發(fā)機(jī)體產(chǎn)生的抗體具有良好的作用[13],因此AMA-1 和IMP-1 是很有潛力的頂復(fù)門寄生蟲疫苗新靶點(diǎn).
以往的研究顯示,CTB 具有顯著的免疫增強(qiáng)作用,可用作黏膜免疫增強(qiáng)劑,應(yīng)用于疫苗開發(fā)[17],本研究結(jié)果證明含分子內(nèi)佐劑CTB 的CARR 確實(shí)有助于免疫反應(yīng)的發(fā)生,加快特異性抗體的產(chǎn)生. 為了避免其他無效抗原對(duì)免疫應(yīng)答的影響,選擇S. bovis 和牛球蟲關(guān)鍵蛋白的優(yōu)勢(shì)表位進(jìn)行融合抗原設(shè)計(jì),并接入免疫佐劑分子,來誘發(fā)強(qiáng)烈和特異的免疫應(yīng)答,達(dá)到預(yù)防或治療S. bo?vis 和牛球蟲感染的目的. 本研究篩選了S. bovis 和牛球蟲關(guān)鍵優(yōu)勢(shì)表位,創(chuàng)新性地將細(xì)菌和寄生蟲兩大危害機(jī)體的微生物的優(yōu)勢(shì)抗原融合表達(dá),并進(jìn)行了相應(yīng)表達(dá)系統(tǒng)的密碼子優(yōu)化,構(gòu)建了CARR 蛋白原核表達(dá)工程菌,Western blot 證實(shí)了CARR 具有良好的免疫反應(yīng)性,對(duì)產(chǎn)蛋雞的免疫以及間接ELISA 證明CARR 具有良好的免疫原性,且該融合蛋白刺激產(chǎn)生的抗體對(duì)S. bovis 的生長具有一定的抑制作用,后續(xù)應(yīng)用推廣研究擬對(duì)CARR 作為疫苗的可能性進(jìn)一步的探索,提升所構(gòu)建的CARR 表達(dá)工程菌株CARR 蛋白表達(dá)量,探索中和抗體對(duì)球蟲的作用. 總而言之,本研究成功表達(dá)了S. bovis-牛球蟲多表位抗原CARR,為探討CARR 在牛體內(nèi)預(yù)防、治療S. bovis 和牛球蟲感染的作用奠定了實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ).