摘要：葉酸在促進細胞生長、維持細胞活性、參與細胞增殖和分裂過程中起關(guān)鍵作用。彩色小麥富含花青素、鐵、鋅、硒等功能營養(yǎng)物質(zhì)，人們對彩色小麥需求越來越大，為研究彩色小麥籽粒葉酸及衍生物的含量，以42 份不同粒色的小麥品種（系）為材料，利用高效液相色譜法測定了3 個生長條件籽粒中四氫葉酸（tetrahydrofolate，THF）、5-甲基四氫葉酸（5-CH3-THF）、5-甲?；臍淙~酸（5-CHO-THF）和5，10-亞甲基四氫葉酸（5， 10-CH+THF） 4種葉酸衍生物的含量。結(jié)果表明，4種葉酸衍生物在不同粒色的小麥中均有分布，總?cè)~酸含量變異范圍較廣，變異系數(shù)為18.34%～21.10%，其中臨4179總含量為66.99 μg·100g-1，為高葉酸含量品種。5-CH3-THF和5-CHO-THF含量約為總?cè)~酸含量的70%，且與總?cè)~酸含量顯著相關(guān)；紫粒和藍粒品種的總?cè)~酸平均含量分別為62.31和62.97 μg·100 g-1，顯著高于白粒（41.90 μg·100 g-1）和紅粒品種（44.36 μg·100 g-1）；基因型效應(yīng)是影響總?cè)~酸含量的主要因素，環(huán)境因素的影響較小。研究結(jié)果為小麥葉酸生物強化品種的選育和栽培提供了有價值的信息。

關(guān)鍵詞：小麥；粒色；葉酸；衍生物

doi：10.13304/j.nykjdb.2024.0184

中圖分類號：S512 文獻標志碼：A 文章編號：10080864（2024）11005610

葉酸（維生素B9）是一種水溶性B族維生素，由四氫葉酸及其衍生物組成。作為生命體必需的微量營養(yǎng)素，葉酸能促進細胞生長、維持細胞活性、參與細胞增殖和分裂，在機體的正常代謝和生長發(fā)育中起著重要作用[1]。不同葉酸衍生物的區(qū)別主要在于吡嗪環(huán)上有不同取代物，以及與鄰位氨基苯甲?；劝彼峤Y(jié)合的谷氨酸殘基。缺乏葉酸會引發(fā)許多疾病，主要有巨幼細胞貧血、動脈粥樣硬化和結(jié)直腸癌等[23]。對于孕婦而言，葉酸攝入不足可能會使嬰兒體重低，同時增加嬰兒患唇腭裂、心臟病和神經(jīng)管畸形等疾病的風(fēng)險[4]。目前每年約有790萬嬰兒患有出生缺陷，其中神經(jīng)管畸形的發(fā)生率約占10%[56]。因此，如何合理、有效地補充葉酸，防止葉酸缺乏逐漸引起人們的重視。植物和微生物可自身合成葉酸，而動物和人類無法直接合成，必需依賴飲食攝入[7]。世界衛(wèi)生組織推薦的葉酸攝入量為成人400 μg·d-1，孕婦600 μg·d-1 [8]，葉酸缺乏現(xiàn)象多在貧窮地區(qū)和發(fā)展中國家發(fā)生[7，910]。通過服用藥片和加工食品補充葉酸以及多樣化飲食來攝入天然葉酸是解決葉酸缺乏癥的常用方法[7]。然而，藥片和加工食品的成本較高，這一方法在欠發(fā)達地區(qū)難以實施，而且攝入過多人工合成的葉酸會提高全基因組水平DNA甲基化，進而增加結(jié)腸癌、直腸癌和前列腺癌的患病風(fēng)險，還會導(dǎo)致認知障礙[11-13]。由于經(jīng)濟制約、飲食習(xí)慣或缺乏穩(wěn)定的社會政策和持續(xù)的財政支持，世界上許多人無力消費除主食外的各種飲食[14]。因此，利用育種或栽培措施富集主糧作物的葉酸是一種健康、覆蓋面廣且經(jīng)濟有效的方法，可使眾多欠發(fā)達地區(qū)人口受益。小麥是全球種植廣泛和較重要的糧食作物之一，其籽粒中的葉酸主要以四氫葉酸（tetrahydrofolate， THF）、5- 甲基- 四氫葉酸（5-methyltetrahydrofolate， 5-CH3-THF）、5-甲?；?四氫葉酸（5-formyltetrahydrofolate， 5-CHO-THF）和5， 10-亞甲基- 四氫葉酸（5， 10-methylenetetrahydrofolate，5， 10-CH+THF）等形式存在[1516]，培育富含葉酸的作物品種，通過日常飲食即可補充葉酸將有助于解決葉酸缺乏癥頻發(fā)的問題[17]。

根據(jù)籽粒種皮顏色的差異，小麥可分為普通的紅粒和白粒小麥，以及藍色和紫色的彩色小麥。彩色小麥富含植物蛋白、膳食纖維、維生素、微量元素和花青素、黃酮、生物堿、植物甾醇等活性物質(zhì)，對改善糖尿病、貧血病以及心腦血管疾病有一定的功效[18]。彩色小麥營養(yǎng)豐富，常用于開發(fā)功能保健食品[19]。不同小麥品種間的葉酸含量差異較大，Davis等[20]研究發(fā)現(xiàn)，美國和加拿大的小麥中總?cè)~酸含量為16～81 μg·100 g-1；Piironen等[21]報道普通小麥總?cè)~酸含量范圍為32.3～77.4 μg·100 g-1；Arcot等[22]報道小麥總?cè)~酸含量達48～114 μg·100 g-1；Riaz 等[15]對中國北方地區(qū)315 個小麥品種的籽粒葉酸含量進行研究，發(fā)現(xiàn)不同小麥品種間總?cè)~酸含量變化范圍為10.15～91.44 μg·100 g-1；Zheng 等[16] 分析了262 份中國小麥微核心種質(zhì)的葉酸含量，總?cè)~酸含量變化范圍為22.68～111.77 μg·100 g-1。這些研究測定了小麥種質(zhì)中總?cè)~酸的含量，為葉酸的生物營養(yǎng)強化提供了一定的理論依據(jù)，但這些研究所選材料基本為普通小麥品種，暫無彩色小麥籽粒葉酸含量的研究，彩色小麥是否富含葉酸尚不明確。本研究采用高效液相色譜（high-performance liquid chromatography，HPLC）測定小麥籽粒中葉酸及其衍生物的含量，分析葉酸在不同粒色小麥中的分布規(guī)律和特點，研究結(jié)果可為小麥生物營養(yǎng)強化和主糧作物功能化提供有價值的信息。

1 材料與方法

1. 1 試驗材料

1.1.1 小麥材料 供試材料為42份小麥 （Triticumaestivum L.）品種（系），籽粒種皮顏色包括紅色、白色、藍色和紫色，由本課題組收集。所有材料分別于2018年（E1）、2019年（E2）和2021年（E3）種植于山西農(nóng)業(yè)大學(xué)小麥研究所試驗基地（臨汾市36°2′N，111°18′ E），10月上旬播種，翌年6月中旬收獲。每份材料種4行，行長2 m，每行40粒。田間管理與大田生產(chǎn)一致，小麥籽粒收獲后晾干留用。

1.1.2 試驗試劑 THF、5-CH3-THF、5-CHO-THF和5， 10-CH+THF 標準品均購自瑞士SchircksLaboratories，純度分別為98.0%、98.4%、99.7% 和95.1%。甲醇、乙腈和甲酸（色譜純）均購自上海麥克林生化有限公司。β-巰基乙醇、抗壞血酸、α-淀粉酶和小鼠血清等生物試劑購自阿拉丁試劑（上海）有限公司。磷酸二氫鉀和三水磷酸氫二鉀為分析純，購自上海生工生物工程股份有限公司。

1.1.3 試驗主要儀器 1260 Infinity 高效液相色譜儀（Agilent Technology）、JFS-13A 型實驗室旋風(fēng)式粉粹磨（杭州大成光電儀器有限公司）、SB-5200DT 超聲脫氣機（寧波新芝生物科技股份有限公司）、AllegraX-30R 高速低溫離心機（BeckmanCoulter）、MX-S 旋渦儀（SCILOGEX）。

1. 2 葉酸標準儲備液制備

準確稱取THF、5-CH3-THF、5-CHO-THF 和5， 10-CH+THF標準品各5.0 mg，分別轉(zhuǎn)移至10 mL棕色容量瓶中，用pH 7.0的20 mmol·L-1磷酸緩沖液（含質(zhì)量體積分數(shù)1% 的抗壞血酸和體積分數(shù)0.1%的β-巰基乙醇）定容，均配置成質(zhì)量濃度為0.5 mg·mL-1 的葉酸標準儲備液，于-20 ℃冷凍儲藏，制作標準曲線時分別取葉酸標準儲備液稀釋，此過程需在避光條件下進行。

1.3 樣品制備及葉酸測定

將籽粒烘干至14%的含水量，使用旋風(fēng)式粉粹機將小麥籽粒磨粉（過100目篩），稱取0.10 g全麥粉加入1.0 mL新配置的磷酸緩沖液，使用漩渦儀充分混合。為防止葉酸衍生物相互轉(zhuǎn)化，首先沸水浴5 min，取出后迅速置于冰上冷卻，加入50 μL α-淀粉酶溶液混勻后37 ℃孵育30 min，每10 min振蕩1次。沸水浴3 min使α-淀粉酶滅活后迅速置于冰上冷卻，加入20 μL 小鼠血清后37 ℃孵育2 h，每20 min振蕩1次。經(jīng)小鼠血清孵育后，沸水浴3 min 滅活，冰上冷卻，4 ℃條件下12 000 r·min-1離心10 min，將上清液轉(zhuǎn)移至3 kD超濾離心管中離心30 min （4 ℃、12 000 r·min-1），取上清液-20 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>

1.4 色譜參數(shù)及方法學(xué)驗證

Agilent1260 高效液相色譜儀系統(tǒng)為AgilentChem Station，配備紫外檢測器，樣品環(huán)體積為20 μL，色譜柱為Akzo Nobel 100-5 C18分析柱，規(guī)格50.0 mm×2.1 mm。流動相A和B分別為水和乙腈，二者均含體積分數(shù)0.1% 的甲酸。流動相過0.22 μm有機濾膜后經(jīng)超聲脫氣機20 min。梯度洗脫10 min，流速0.2 mL·min-1，紫外檢測器檢測波長280 nm。進樣器和色譜柱柱溫箱的溫度分別保持在4和25 °C。初始洗脫條件為95.0%流動相A和5.0%流動相B；在接下來的2 min內(nèi)，流動相B的比例從5.0%增加至9.0%；8 min時，流動相B 的比例從9.0% 增加至9.6%；隨后的2 min 內(nèi)B相的比例降低到初始的比例，最后達到平衡。葉酸標準品用于確定洗脫條件和保留時間，樣品中葉酸各衍生物通過保留時間鑒定，根據(jù)色譜系統(tǒng)Agilent Chem Station 自動積分獲取峰面積，外標法定量，每個樣品測定3次取平均值。

提取臨6308和晉麥47葉酸后分別以添加標品和不加標品的處理作為對照，測定3次取平均值，檢測各葉酸衍生物的加標回收率；重復(fù)提取5次品臨6308葉酸，檢測葉酸衍生物含量，計算相對標準偏差（relative standard deviation，RSD），評價檢測方法的精密度和準確度。

1.5 數(shù)據(jù)處理

利用JMP Pro16 （2022 JMP Statistical DiscoveryLLC）求最佳線性無偏預(yù)測（best linear unbiasedprediction， BLUP）以及廣義遺傳力，使用SPSS26.0 （IBM SPSS Statistics；IBM Corp.， Armonk， NY，United States）進行相關(guān)性分析和差異顯著性比較，使用Origin 2022b繪制高效液相色譜圖及標準曲線。

2 結(jié)果與分析

2.1 方法學(xué)驗證結(jié)果

標準品THF、5-CH3-THF、5-CHO-THF和5，10-CH+THF分別用磷酸緩沖液（20 mmol·L-1，pH 7.0）溶解，經(jīng)HPLC 分析，確定THF、5-CH3-THF、5-CHO-THF 和5， 10-CH+THF 的保留時間分別為1.69、2.30、5.75和6.50 min（圖1）。從圖1可以看出，不同葉酸衍生物色譜圖基線平穩(wěn)，標品峰形較好，無明顯拖尾。不同葉酸衍生物標準溶液質(zhì)量濃度從低到高依次進樣，峰面積外標法進行定量分析。標準曲線回歸方程的線性良好，根據(jù)對應(yīng)的出峰時間和峰面積，代入相應(yīng)的標準曲線中即可求得樣品中葉酸衍生物的含量（圖2）。

檢測添加標品和不加標品的臨6308和晉麥47各葉酸衍生物含量，結(jié)果表明各葉酸衍生物的加標回收率均在95.00%以上，進一步說明檢測方法準確可靠（表1）。

選擇臨6308重復(fù)測定各葉酸衍生物含量以驗證方法精密度，發(fā)現(xiàn)葉酸衍生物含量RSD均小于4.00%（表2），說明提取和檢測方法具有較好精密度和重復(fù)性。

2.2 小麥籽粒葉酸含量分析

對3個環(huán)境下收獲的材料提取葉酸，4種葉酸衍生物在不同粒色的小麥中均有分布（表3）。不同小麥品種的總?cè)~酸含量變異范圍較大，變異系數(shù)為18.34%～21.10%；3個環(huán)境下含量范圍分別為35.49～71.02、37.29～69.50和33.60～66.67 μg·100 g-1，平均值分別為52.01、53.84和49.41 μg·100 g-1。E1環(huán)境下總?cè)~酸含量最高的3個品種分別為太紫372、臨4179、運紫827；E2環(huán)境下為紫優(yōu)11、臨1547和臨4179；E3環(huán)境下為臨4179、紫優(yōu)11和運紫827。其中臨4179 在3 個環(huán)境下總?cè)~酸含量均超過65 μg·100 g-1，是高葉酸含量的品種；臨6080 的5-CH3-THF含量在所有品種中最高。

2.3 粒色對小麥葉酸含量的影響

根據(jù)種皮顏色將小麥分為白粒、紅粒、藍粒和紫粒，對不同顏色籽粒中葉酸及衍生物含量進行比較，結(jié)果（表4）表明，紫粒和藍粒小麥的總?cè)~酸含量分別為62.31和61.97 μg·100 g-1，白粒和紅粒小麥總?cè)~酸含量分別41.90和44.36 μg·100 g-1，紫粒和藍粒小麥的總?cè)~酸含量顯著高于白粒和紅粒小麥。紫粒和藍粒小麥的5-CH3-THF 和5-CHOTHF平均含量顯著高于白粒和紅粒小麥，而THF和5-CHO+THF含量差異不顯著。白粒和紅粒小麥以及紫粒和藍粒小麥相比，THF、5-CH3-THF、5-CHO-THF和5，10-CH+THF以及總?cè)~酸含量均無明顯差異。紫粒和藍粒品種的5-CH3-THF、5-CHO-THF 和總?cè)~酸含量顯著高于白粒和紅粒品種。

2.4 各成分和種皮顏色與總量的相關(guān)性

對不同葉酸衍生物與總?cè)~酸含量進行相關(guān)性分析，結(jié)果（表5）表明，5-CH3-THF和5-CHO-THF與總?cè)~酸的含量間存在顯著相關(guān)性，同時5-CH3-THF 和5-CHO-THF 之間也存在顯著相關(guān)性。種皮顏色與5-CH3-THF、5-CHO-THF 以及總?cè)~酸含量間存在顯著相關(guān)性，而THF和5，10-CH+THF與總?cè)~酸含量以及種皮顏色間相關(guān)性都不顯著。

2.5 基因型、環(huán)境及其互作對葉酸含量的影響

以3個環(huán)境下籽粒中各葉酸衍生物含量以及總?cè)~酸含量研究基因型（genotype，G）、環(huán)境（environment，E）及其互作（G×E）對葉酸含量的影響，結(jié)果（表6）表明，基因型效應(yīng)（G）和基因型與環(huán)境互作效應(yīng)（G×E） 對籽?？?cè)~酸含量的影響均達到極顯著水平?；蛐蛯?種葉酸衍生物的含量均有顯著影響；而環(huán)境條件僅對5-CH3-THF和5，10-CH+THF 有顯著影響。對THF、5-CHOTHF和總?cè)~酸含量的影響排序為Ggt;G×Egt;E，對5-CH3-THF變化的影響排序為Ggt;Egt;G×E，而對5，10-CH+THF 變化的影響排序為G×Egt;Ggt;E。上述結(jié)果表明，基因型是影響葉酸含量的主要因素，環(huán)境因素對葉酸含量的影響較小。

3 討論

當前葉酸測定方法主要有微生物法、紫外-可見分光光度法、熒光分析法、高效液相色譜法等[23-27]。微生物法是經(jīng)典的葉酸測定方法，根據(jù)微生物對樣品中葉酸的吸收程度從而對葉酸進行定量，能測定基質(zhì)中總?cè)~酸的含量。微生物法檢測結(jié)果較為準確且成本低，但只能檢測待測樣品中總?cè)~酸的含量，不同的葉酸衍生物無法區(qū)分，且實驗周期長、批次間檢測結(jié)果重復(fù)性較差。紫外-分光光度法操作簡便，對提取條件要求低，但只能測定葉酸總量，無法檢測不同組分含量，且溶劑種類易造成較大誤差。熒光分析法雖較紫外分光光度法靈敏度較高，但是葉酸本身發(fā)射出的熒光強度較弱，因此常需加入敏化劑，如高錳酸鉀、芬頓試劑或過硫酸鉀等，而敏化劑的加入常使測定結(jié)果誤差變大。高效液相色譜法對不同的葉酸衍生物分離效果好、選擇靈敏性強，可與多種技術(shù)聯(lián)用，是目前使用最廣泛的葉酸檢測方法，已應(yīng)用于果蔬和作物中不同葉酸衍生物含量的測定[28-30]。因此，本研究采用了高效液相色譜法來測定小麥籽粒中的葉酸含量。已有研究表明，THF、5-CH3-THF、5-CHO-THF 和5， 10-CH+THF 這4種葉酸衍生物占小麥籽粒總?cè)~酸含量的90%以上，是小麥籽粒中葉酸的主要存在形式[1516，3132]。由于種質(zhì)來源和測定方法的不同，前人對小麥籽粒中葉酸含量的測定結(jié)果略有差異。Piironen等[21]采用微生物法測定了種植在同一地點的150份小麥品種的總?cè)~酸含量，含量范圍為32.3～77.4 μg·100 g-1，同時他們選用高效液相色譜法分析了9 份小麥品種中不同葉酸衍生物的含量，5-CHO-THF 是小麥葉酸的主要存在形式。Riaz等[15]采用高效液相色譜法測定了360份小麥品種中葉酸的含量，范圍為（10.15±2.86）～（91.44±5.64） μg·100 g-1，5-CH3-THF 和5-CHO-THF 是小麥籽粒中葉酸的主要存在形式，這與本文的研究結(jié)果一致。但Riaz等[15]的研究結(jié)果中不同環(huán)境下的共有品種數(shù)較少，本文篩選到多個環(huán)境中葉酸總含量均高于65 μg·100 g-1的品種有臨4179，同時臨6080的5-CH3-THF含量顯著高于其余品種，這些材料可為生物強化品種選育提供種質(zhì)資源。

彩色小麥籽粒的顏色越深，其花青苷的含量越高，可達常規(guī)小麥的2～6倍，同時藍粒和紫粒小麥品種的品質(zhì)性狀普遍優(yōu)于白粒品種[33]。但葉酸含量是否與種皮顏色有關(guān)，目前暫無相關(guān)研究報道。本文通過比較42份不同粒色小麥的葉酸含量，發(fā)現(xiàn)藍粒和紫粒小麥總?cè)~酸含量顯著高于紅粒和白粒種質(zhì)，但紅粒和白粒種質(zhì)間及藍粒與紫粒小麥種質(zhì)間總?cè)~酸含量無明顯差異，可能是因為相較于紅粒和白粒種質(zhì)，藍粒和紫粒小麥的種皮和糊粉層含有較多的次生代謝產(chǎn)物，在代謝產(chǎn)物積累的同時也積累了葉酸不同衍生物。但需要注意的是，造成不同粒色間葉酸含量差異的原因也可能與本實驗選擇的品種數(shù)偏少有關(guān)。Shewry等[34]將相同小麥品種種植到不同國家，收獲后測定籽粒中葉酸的含量，發(fā)現(xiàn)環(huán)境對總?cè)~酸含量影響顯著，基因型的影響較小。Riaz等[15]發(fā)現(xiàn)，小麥葉酸含量除受環(huán)境影響之外，基因和基因×環(huán)境互作效應(yīng)對葉酸含量的影響也達到極顯著水平。這與本文得出基因型是影響葉酸含量的關(guān)鍵因素的結(jié)論不一致，可能是由于Shewry 等[34]和Riaz等[15]的研究采用的材料份數(shù)較少或不同環(huán)境下的共有品種數(shù)較少，不能準確分析基因型和環(huán)境對小麥葉酸含量的影響。Zheng等[16]以中國小麥微核心種質(zhì)為材料，測定不同環(huán)境下收獲的籽粒葉酸含量，發(fā)現(xiàn)影響葉酸含量的主要因素是基因型，本文測定了42份不同粒色的小麥在不同環(huán)境下收獲后籽粒的葉酸含量，得出了一致的結(jié)論。這些結(jié)果為今后小麥葉酸及衍生物營養(yǎng)強化品種的選育和推廣提供了有價值的信息。

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