摘" " 要：【目的】探究果實成熟期可溶性糖含量差異大的原因，以挖掘毛花獼猴桃果實蔗糖代謝關鍵酶和關鍵基因。【方法】以高糖型贛綠1號和低糖型贛綠6號毛花獼猴桃品種為研究材料，測定果實生理成熟期外觀指標；測定軟熟期可溶性固形物含量、干物質含量、可溶性糖含量、糖組分含量、甜度值、蔗糖代謝酶活性和代謝酶基因相對表達量等指標；分析不同指標間的相關性。【結果】果實成熟期可溶性糖含量與蔗糖含量呈顯著正相關；蔗糖含量與蔗糖磷酸合酶活性及其編碼基因AeSPS表達量呈顯著正相關?！窘Y論】蔗糖是引起毛花獼猴桃果實可溶性糖含量差異大的主要原因，蔗糖磷酸合酶是影響果實成熟期蔗糖代謝的關鍵酶，推測其編碼基因AeSPS是調(diào)控果實成熟期蔗糖合成的關鍵基因。

關鍵詞：毛花獼猴桃；可溶性糖；蔗糖；糖代謝；蔗糖磷酸合酶；果實品質

中圖分類號：S663.4 文獻標志碼：A 文章編號：1009-9980（2024）11-2261-11

Analysis of the fruit quality and the metabolic characteristics of sucrose in fruit of Actinidia eriantha at ripening stage

JIA Dongfeng1， 2， QIAN Jiquan1， 2， GAO Huan1， 2， LIAO Guanglian1， 2， ZHONG Min2， HUANG Chunhui1， 2， XU Xiaobiao1， 2*

（1College of Agronomy， Jiangxi Agricultural University， Nanchang 330045， Jiangxi， China; 2Institute of Kiwifruit， Jiangxi Agricultural University， Nanchang 330045， Jiangxi， China）

Abstract： 【Objective】 Actinidia eriantha is a unique kiwifruit species of Actinidia spp. The fruit of A. eriantha is rich in nutrients and ascorbic acid （vitamin C）. However， the flavor quality of most wild A. eriantha resources is lower than that of the cultivars from A. chinensis or A. deliciosa mainly due to the low accumulations of soluble sugars. Fortunately， a high sugar type kiwifruit cultivar， A. eriantha ‘Ganlü No. 1’， has been developed by our research group recently. In order to explore the formational mechanism of the high accumulation of soluble sugars， and to identify the related key metabolic enzyme and key gene in the fruit of A. eriantha ‘Ganlü No. 1’ at the ripening stage， A. eriantha ‘Ganlü No. 1’ and another low sugar type kiwifruit cultivar， A. eriantha ‘Ganlü No. 6’， were selected as the research materials in this study. These two cultivars possess similar genetic background and they both originated from the wild A. eriantha resources of Magu Mountain in Nancheng County， Jiangxi Province. 【Methods】 The grafted vines of A. eriantha ‘Ganlü No. 1’ and A. eriantha ‘Ganlü No. 6’ were planted in an orchard of the Fengxin County Bureau of Agriculture and Rural Affairs， which was located in Fengxin County， Jiangxi Province. In 2021， at physiological maturity stage when the soluble solids content of fruits of each cultivar reached over 7.0%， fruits without pests， diseases and mechanical damage were collected randomly from selected vines. After collection， the fruits were placed in an ice box and transported to the laboratory for further treatment. For each cultivar， three uniform vines were used as three biological replicates. Twenty fruits were collected from each vine. For fresh fruits， the fruit weight was measured using an electronic balance; the fruit longitudinal diameter and fruit transverse diameter were measured respectively with a vernier caliper. The fruit shape index was obtained using the ratio of the longitudinal diameter to the transverse diameter. Then those fruits were stored at room temperature until soft-ripe stage. For those fresh fruits， soluble solids content （SSC） was measured with a portable refractometer， and dry matter content （DM） was measured using fruit slices. For the remaining fruits， after removing the peel， seeds and core， the flesh was separated， sliced， frozen with liquid nitrogen， and stored in a refrigerator at -80 ℃. For the frozen flesh samples， the soluble sugar content （SS） was determined using anthrone sulfuric acid colorimetry; the titratable acidity （TA） was determined by titration with NaOH; and the ascorbic acid （AsA） content was determined by the 2， 6-dichlorphenolindophenol titration method. The sugar-acid ratio was calculated by the ratio of the SS to the TA. The glucose （Glu）， fructose （Fru）， and sucrose （Suc） were also extracted from the frozen samples in 80% ethanol， and their contents were determined by high-performance liquid chromatography. The total soluble sugar content （TS） was obtained by calculating the sum of Glu， Fru， and Suc. The sweetness value （SV） was calculated based on the contents of Glu， Fru， Suc， as well as their corresponding coefficients. Besides， for the frozen samples， the activity assays of the main enzymes involved in Suc metabolism， including sucrose phosphate synthase （SPS）， sucrose synthase （SUSY）， acid invertase （AINV）， and neutral invertase （NINV）， were carried out using their corresponding kits. Furthermore， the relative expression levels of the related genes encoding those enzymes， including AeSPS， AeSUSY， AeAINV， and AeNINV， were analyzed by qRT-PCR method for A. eriantha ‘Ganlü No. 1’ and A. eriantha ‘Ganlü No. 6’. In addition， the correlation relationships among different indicators were analyzed using bivariable analysis following the Pearson method. Those indicators included SS， SSC， SV， TS， Glu， Fru， Suc， the activities of SPS， SUSY， AINV， NINV， and the relative expression levels of AeSPS， AeSUSY， AeAINV， and AeNINV. 【Results】 The fruit size， fruit shape index， and fruit weight were significantly higher in A. eriantha ‘Ganlü No. 1’ than those in A. eriantha ‘Ganlü No. 6’. Most of the indicators related to internal fruit quality were also significantly higher in A. eriantha ‘Ganlü No. 1’ than those in A. eriantha ‘Ganlü No. 6’. Those indicators included SSC， SS， sugar-acid ratio， and AsA content. Besides， higher contents of Fru， Suc， TS， and higher SV were detected in the fruits of A. eriantha ‘Ganlü No. 1’ at the ripening stage. Additionally， in the fruits of Ganlü No. 1， the activities of SPS and SUSY were both significantly higher than those of Ganlü No. 6; however， the activities of AINV and NINV were significantly lower in the fruits of Ganlü No. 1. Meanwhile， the relative expression levels of the AeSPS and AeNINV were significantly higher in the fruits of Ganlü No. 1 than those of Ganlü No. 6. Moreover， the soluble sugar content was positively correlated to SSC， SV， the contents of TS， Fru， Suc， and the activities of SPS and SUSY; while it was negatively correlated to the Glu content， and the activities of AINV and NINV. Furthermore， the relative expression level of the AeSPS was found to be positively correlated to both the Suc content and SPS activity. 【Conclusion】 The difference in sucrose accumulation level was the dominant factor that results in the great difference in soluble sugar content between the cultivars of A. eriantha ‘Ganlü No. 1’ and A. eriantha ‘Ganlü No. 6’. And the sucrose phosphate synthase was the key metabolic enzyme that could positively regulate sucrose accumulation in the ripe fruit of A. eriantha culitvars at the ripening stage. Besides， we speculated that the AeSPS would be the key gene which could contribute to the biosynthesis of sucrose by increasing SPS activity in the fruits of A. eriantha ‘Ganlü No. 1’ at the ripening stage.

Key words： Actinidia eriantha; Soluble sugar; Sucrose; Sugar metabolism; Sucrose phosphate synthase; Fruit quality

可溶性糖是水果營養(yǎng)物質的重要組成部分，也是調(diào)控植物生長發(fā)育的重要信號分子[1]。在新鮮水果中，蔗糖（Suc）、果糖（Fru）和葡萄糖（Glu）是果實品質的主要決定因子，它們的含量和比例會對果實甜味產(chǎn)生重要影響[2]。在大多數(shù)植物中，蔗糖是源器官（葉）進行光合作用的主要產(chǎn)物，蔗糖合成后會通過韌皮部長距離運輸轉運至果實、根、莖尖等不同的庫器官中維持其生長發(fā)育[3-4]。在庫器官中，包括蔗糖在內(nèi)的可溶性糖首先會被代謝以滿足庫器官對能量和碳源的需求，過量的可溶性糖可被轉化為淀粉貯藏在質體中，或者經(jīng)由液泡糖轉運蛋白介導被轉運至液泡中貯藏[3，5]。

庫器官中蔗糖的積累水平主要取決于蔗糖合成和降解的速率。一方面，果實中的蔗糖可被轉化酶（INV）水解成葡萄糖和果糖，也可在蔗糖合酶（SUSY）催化下分解為UDP-葡萄糖（UDPG）和果糖；另一方面，在成熟果實中，蔗糖磷酸合酶（SPS）可將果糖-6-磷酸（F6P）和UDPG轉化為蔗糖6-磷酸，蔗糖-6-磷酸進一步在蔗糖-6-磷酸磷酸酶（SPP）的催化下轉化為蔗糖而積累[1]。在蔗糖代謝過程中，SPS、SUSY和INV被認為是負責蔗糖合成或降解的主要酶[1，6]，其中，SPS被認為是負責蔗糖合成的限速酶[7]。在玉米和水稻中的研究表明，SPS基因對農(nóng)作物生長速度和產(chǎn)量具有重要的促進作用[8-10]。對一些園藝作物，如香蕉[11]、柑橘[12]、甜瓜[13]等的研究發(fā)現(xiàn)，果實中蔗糖快速積累的階段，SPS基因的表達也同步顯著上調(diào)，暗示SPS基因對果實中蔗糖合成和積累發(fā)揮重要作用。目前，獼猴桃果實中SPS酶對蔗糖代謝功能的研究還處于起步階段，調(diào)控蔗糖合成和積累的關鍵基因需要進一步挖掘。

毛花獼猴桃（Actinidia eriantha）是獼猴桃屬中一個獨特的種類，其果實風味濃郁，抗壞血酸（AsA）含量非常高[14-16]，且具有較強的抗逆性，是獼猴桃育種和生產(chǎn)中極具應用潛力的重要種質資源。但是野生毛花獼猴桃果實普遍存在可溶性糖含量偏低、風味偏酸等缺點[16]，限制了其在獼猴桃育種和生產(chǎn)中的有效利用。筆者課題組前期從野生毛花獼猴桃種質資源中選育出了一個可溶性糖含量高且綜合性狀優(yōu)異的毛花獼猴桃新品種贛綠1號[16]，可作為果實糖代謝特征和高糖積累機制研究的理想材料。筆者在本研究中以高糖型的贛綠1號為研究材料，以低糖型毛花獼猴桃品種贛綠6號（前期編號：D6）作為對照，系統(tǒng)分析了成熟期果實品質指標、糖組分含量，發(fā)現(xiàn)蔗糖是導致不同毛花獼猴桃品種果實可溶性糖含量差異的主要糖類；進一步分析了蔗糖代謝相關酶活性和相關基因表達特征，發(fā)現(xiàn)SPS是影響果實蔗糖積累的關鍵代謝酶，推測其編碼基因AeSPS是影響SPS活性和果實蔗糖含量的關鍵調(diào)控基因。本研究為毛花獼猴桃果實甜味品質形成和調(diào)控機制提供了理論依據(jù)，亦為進一步解析獼猴桃蔗糖磷酸合酶基因的分子功能奠定了重要研究基礎。

1 材料和方法

1.1 材料及處理

選擇可溶性糖含量差異較大的高糖型毛花獼猴桃品種贛綠1號和低糖型毛花獼猴桃贛綠6號（對照）為試驗材料，這兩個品種均系從江西省南城縣麻姑山野生毛花獼猴桃資源中選育而來，其中，贛綠1號為綜合性狀優(yōu)異的毛花獼猴桃新品種，已獲得農(nóng)業(yè)農(nóng)村部植物新品種權[16]。供試材料的嫁接苗種植于江西省奉新縣農(nóng)業(yè)農(nóng)村局獼猴桃果園內(nèi)。每個品種選擇3株長勢一致的植株作為3個生物學重復。2021年，在果實可溶性固形物含量（SSC，w，后同）達到7.0%的生理成熟期，選擇無病蟲害和無機械損傷的果實采樣，每株隨機采集20個果實。果實采集后置于冰盒中帶回實驗室。首先測定鮮果的單果質量、果實縱徑、果實橫徑，計算果形指數(shù)。之后將果實置于室溫條件，在軟熟期時，測定其果實SSC、干物質含量（DM）；將剩余果實去除果皮、種子和果心部分，將果肉立即切碎并置于液氮中冷凍，冷凍樣品置于?80 ℃冰箱中保存?zhèn)溆谩?/p>

1.2 外觀和內(nèi)在品質指標測定

對生理成熟期的鮮果樣品，使用電子天平測定單果質量；使用游標卡尺分別測定果實縱徑、橫徑，以果實縱徑與橫徑的比值作為果形指數(shù)。對軟熟期鮮果樣品，使用便攜式糖度計（PLA-1；ATAGO）測定果實SSC；參考Jia等[14]的方法，使用厚度約為2 mm的果實薄片測定果實DM。對軟熟期果實冷凍樣品，使用蒽酮比色法測定可溶性糖含量（SS）[17]；使用氫氧化鈉滴定法測定可滴定酸含量（TA）[17]；使用2，6-二氯靛酚法測定抗壞血酸（AsA）含量[17]；以可溶性糖含量與可滴定酸含量的比值作為樣品糖酸比。果實甜度值計算參考姚改芳等[18]的方法，略有改動，計算公式為：甜度值=果糖含量×1.75+葡萄糖含量×0.70+蔗糖含量×1。

1.3 可溶性糖組分含量測定

采用高效液相色譜法（HPLC，LC-10A，Shimadzu）測定果實凍樣葡萄糖、果糖和蔗糖等主要可溶性糖組分含量。為獲得糖組分提取液，稱取4 g冷凍果實樣品在液氮中冷凍研磨后轉移至10 mL離心管，加入5.0 mL 80%乙醇，置于35 ℃水浴20 min，室溫下10 000 r·min-1離心15 min，將上清液轉至15 mL容量瓶中，重復提取3次，將上清液合并，定容至15 mL。吸取1 mL提取液將其旋轉蒸干，加入1 mL超純水溶解干粉，使用過濾器（孔徑0.45 μm）過濾溶液，獲得的純化提取液用于HPLC含量測定。測定糖組分含量時，使用Waters Spherisorb NH2柱（4.6 mm×250 mm，5.0 μm）進行樣品分離，柱溫為35 ℃，流動相為8.5：1.5的乙腈：超純水，進樣量為20 μL，流速設置為1.0 mL·min-1，使用RID-10A檢測器測量。

1.4 蔗糖代謝相關酶活性檢測

使用索萊寶試劑盒分別檢測冷凍果實樣品的蔗糖磷酸合酶、蔗糖合酶、酸性轉化酶（AINV）和中性轉化酶（NINV）的活性，測定方法參照相應試劑盒的說明書。

1.5 基因表達分析

從毛花獼猴桃華特基因組數(shù)據(jù)庫網(wǎng)站（https：//kiwifruitgenome.org/organism/1）分別下載蔗糖磷酸合酶基因AeSPS（DTZ79_13g06220）、蔗糖合酶基因AeSUSY（DTZ79_12g00380）、酸性轉化酶基因AeNINV（DTZ79_14g05920）和中性轉化酶基因AeAINV（DTZ79_29g07640）的編碼序列，以相關序列為模板設計基因定量引物（表1），使用實時熒光定量（qRT-PCR）法分析各基因相對表達量。

使用聚合美試劑盒提取冷凍果實樣品總RNA；使用Hifair Ⅲ1st Strand cDNA Synthesis SuperMix for qPCR（gDNA digester plus）試劑盒，去除樣品中基因組DNA后對其進行反轉錄合成第一鏈cDNA；使用Hieff UNICON Universal Blue qPCR SYBR Green Master Mix試劑盒對cDNA樣品開展qRT-PCR分析。以獼猴桃AeActin基因（EF063572.1）作為qRT-PCR反應的內(nèi)參基因，以贛綠6號果實樣品為對照，參照Livak等[19]的方法計算各基因的相對表達量，每個反應設置3次生物學重復。

1.6 相關性分析

使用皮爾遜法（SPSS軟件，20.0版，下同）分析果實品質指標[SS、SSC、甜度值（SV）、可溶性總糖含量（TS）、Glu含量、Fru含量、Suc含量]與蔗糖代謝相關酶（SPS、SUSY、AINV、NINV）活性相互之間的相關性，其中Glu含量、Fru含量、Suc含量以鮮質量計；使用相同方法分析AeSPS、AeSUSY、AeAINV和AeNINV等基因相對表達量與蔗糖含量及其相應酶（SPS、SUSY、AINV和NINV）活性之間的相關性。

1.7 數(shù)據(jù)處理

利用SPSS軟件對不同品種之間相關數(shù)據(jù)分別在p＜0.05和p＜0.01水平進行獨立樣本T檢驗分析，大多數(shù)結果以平均值±標準差的形式表示。

2 結果與分析

2.1 贛綠1號和贛綠6號獼猴桃果實生理成熟期外觀品質指標

如圖1-A、B所示，在果實生理成熟期，贛綠1號獼猴桃的果個明顯大于贛綠6號；兩個品種果實基部的形狀存在明顯差異，贛綠6號果實基部接近于圓錐形，而贛綠1號果實基部接近于橢球形。對兩個品種果實生理成熟期外觀品質指標進行了測定，結果發(fā)現(xiàn)，贛綠1號獼猴桃的果實縱徑、果實橫徑、果形指數(shù)和單果質量均極顯著高于贛綠6號獼猴桃。贛綠1號獼猴桃果實縱徑為62.04 mm，贛綠6號果實縱徑為40.55 mm（圖1-C）；贛綠1號果實橫徑為30.66 mm，贛綠6號果實橫徑為24.24 mm（圖1-D）；贛綠1號的果形指數(shù)為2.05，贛綠6號的果形指數(shù)為1.68（圖1-E）。此外，相比于贛綠6號果實13.52 g的平均單果質量，贛綠1號平均單果質量為36.69 g，是前者的2.71倍（圖1-F）。

2.2 贛綠1號和贛綠6號獼猴桃果實軟熟期內(nèi)在品質指標

在果實軟熟期，贛綠1號和贛綠6號果實干物質含量均為17%左右，兩者之間并無顯著差異（圖2-A）。然而，贛綠1號果實的可溶性固形物含量和可溶性糖含量均極顯著高于贛綠6號，贛綠1號果實的SSC為20.73%，贛綠6號的為16.27%（圖2-B）；贛綠1號果實的SS為17.56%，贛綠6號的為11.46%，前者為后者的1.53倍（圖2-C）。相反，贛綠1號果實TA含量為0.80%，極顯著低于贛綠6號的1.09%（圖2-D）。與SS和TA數(shù)據(jù)相一致，贛綠1號果實糖酸比為22.04，極顯著高于贛綠6號果實（圖2-E），說明贛綠1號果實風味品質明顯優(yōu)于贛綠6號。此外，贛綠1號果實抗壞血酸含量也略微高于贛綠6號果實（圖2-F）。

2.3 贛綠1號和贛綠6號獼猴桃果實可溶性糖組分含量

對贛綠1號和贛綠6號獼猴桃果實軟熟期葡萄糖、果糖和蔗糖含量進行了測定，結果發(fā)現(xiàn)，贛綠1號果實中葡萄糖含量為26.35 mg·g-1，略低于贛綠6號果實的27.67 mg·g-1，但兩者之間無顯著差異（圖3-A）。贛綠1號果實果糖含量為28.99 mg·g-1，極顯著高于贛綠6號的20.66 mg·g-1（圖3-B）。此外，贛綠1號果實蔗糖含量達28.83 mg·g-1，極顯著高于贛綠6號果實的7.84 mg·g-1，其蔗糖含量是贛綠6號的3.29倍（圖3-C）。贛綠1號果實中，3種可溶性總糖含量為81.17 mg·g-1，顯著高于贛綠6號的56.18 mg·g-1（圖3-D）?？梢?，蔗糖是兩個毛花獼猴桃品種糖組分中含量差異最大的可溶性糖。此外，贛綠1號果實的甜度值為95.00，極顯著高于贛綠6號果實的甜度值（63.38）（圖3-E）。

2.4 蔗糖代謝相關酶活性

對贛綠1號和贛綠6號果實蔗糖代謝主要酶活性進行了測定，結果發(fā)現(xiàn)，負責蔗糖合成和降解的4個酶（SPS、SUSY、AINV、NINV）的活性在兩個品種之間均存在顯著差異。其中，贛綠1號果實SPS活性為631.34 U·g-1，極顯著高于贛綠6號果實的437.50 U·g-1（圖4-A）。贛綠1號果實SUSY活性為807.56 U·g-1，極顯著高于贛綠6號的575.60 U·g-1（圖4-B）。相反，在贛綠1號果實中，負責催化蔗糖不可逆降解的兩個酶的活性均顯著低于贛綠6號果實。其中，贛綠1號果實AINV的活性為7.82 U·g-1，極顯著低于贛綠6號的19.06 U·g-1（圖4-C）；而贛綠1號果實NINV活性為6.65 U·g-1，同樣顯著低于贛綠6號果實的9.57 U·g-1（圖4-D）。在兩個品種中，負責蔗糖可逆或不可逆合成的兩個酶（SPS和SUSY）的活性大幅度高于負責蔗糖不可逆降解的兩個酶（AINV和NINV）的活性，表明軟熟期的果實中蔗糖的合成速率可能遠大于其降解速率，蔗糖可能仍處于積累過程中。

2.5 蔗糖代謝酶基因相對表達量

使用qRT-PCR法對贛綠1號和贛綠6號果實SPS、SUSY、AINV和NINV等蔗糖代謝相關酶相應的編碼基因AeSPS、AeSUSY、AeAINV和AeNINV相對表達量進行分析，結果發(fā)現(xiàn)，AeSPS在贛綠1號中的相對表達量是贛綠6號的4.81倍（圖5-A），這與預期結果相一致。然而，贛綠1號果實中AeSUSY和AeAINV的相對表達量均低于贛綠6號（圖5-B，C），但兩個品種間并無顯著差異。與預期結果相反，贛綠1號果實中AeNINV基因的相對表達量顯著高于贛綠6號，這與兩者的NINV活性趨勢相反（圖4-D，圖5-D）。通過比較可以發(fā)現(xiàn)，獼猴桃AeSPS基因的表達趨勢與其編碼的SPS活性趨勢相一致（圖4-A，圖5-A）。

2.6 果實品質指標、糖組分含量、蔗糖代謝酶活性之間的相關性

對果實成熟期不同品質指標之間的相關性進行分析。結果（圖6）表明，SS與SSC呈極顯著正相關，它們之間的相關系數(shù)高達0.980，且SS和SSC與其他指標的相關系數(shù)也非常接近；SS與SV、TS、Fru含量、Suc含量均呈極顯著正相關，而SS與Glu含量呈負相關但并無顯著差異；SS與SPS活性、SUSY活性均呈顯著正相關，而與AINV活性、NINV活性均呈顯著負相關。

果實成熟期糖組分和總糖含量方面，Glu含量與TS、Fru含量、Suc含量均呈負相關，但均無顯著差異；TS、Fru含量、Suc含量三者相互之間均呈極顯著正相關（圖6）。糖代謝酶活性方面，SPS活性與SUSY活性呈極顯著正相關；AINV活性與NINV活性呈顯著正相關；SPS活性與AINV活性呈極顯著負相關，與NINV活性呈負相關但無顯著差異；SUSY與AINV活性、NINV活性分別呈極顯著負相關和顯著負相關（圖6）。

2.7 蔗糖代謝酶基因表達量與蔗糖含量和蔗糖代謝酶活性的相關性

對果實成熟期4個蔗糖代謝酶基因（AeSPS、AeSUSY、AeAINV、AeNINV）的相對表達量與果實蔗糖含量、主要蔗糖代謝酶（SPS、SUSY、AINV、NINV）活性之間的相關性進行了分析。結果表明，蔗糖磷酸合酶基因AeSPS相對表達量與果實Suc含量呈極顯著正相關；AeSPS相對表達量與SPS活性、SUSY活性同樣呈極顯著正相關，但是與AINV活性、NINV活性之間分別呈極顯著負相關、顯著負相關（表2）。蔗糖合酶基因AeSUSY相對表達量與Suc含量呈無顯著差異的負相關；與SPS活性、SUSY活性、AINV活性之間均呈負相關，但均無顯著差異；與NINV活性呈正相關但無顯著差異（表2）。

酸性轉化酶基因AeAINV相對表達量與Suc含量呈負相關；與其編碼酶AINV的活性呈正相關；與SPS活性、SUSY活性之間均呈負相關；與NINV活性呈正相關。然而，上述各指標之間的相關性均無顯著差異（表2）。與預期結果相反，蔗糖中性轉化酶基因AeNINV相對表達量與Suc含量呈顯著正相關，而其與其編碼酶NINV的活性之間卻呈無顯著差異的負相關。此外，AeNINV相對表達量與SPS活性、SUSY活性之間均呈極顯著正相關；與AINV活性呈顯著負相關（表2）?？梢?，獼猴桃果實中蔗糖代謝調(diào)控是一個非常復雜的過程，蔗糖的代謝過程可能受到多個基因和多個代謝酶共同影響。

3 討 論

3.1 高可溶性糖含量顯著提高了贛綠1號成熟期毛花獼猴桃果實品質

可溶性糖是調(diào)控水果風味尤其是甜味的重要物質，其含量會顯著影響消費者對水果的偏好[14，20]。筆者在本研究中發(fā)現(xiàn)，贛綠1號獼猴桃果實成熟期可溶性糖含量是贛綠6號的1.53倍，而其果實中可滴定酸含量僅為贛綠6號的72.96%。相比于贛綠6號，贛綠1號可被視為高糖型獼猴桃果實。在成熟期，兩者果實可溶性固形物含量趨勢與可溶性糖含量趨勢一致，而干物質含量并無顯著差異。因此，贛綠1號果實中高可溶性糖含量很大程度上引起可溶性固形物含量的增加，這也解釋了兩個品種的SS和SSC之間存在極高的相關系數(shù)（0.980）；而且，贛綠1號果實具備的高可溶性糖含量也顯著提高了果實甜度值以及糖酸比，改善了果實風味品質，使其成為一個具有獨特優(yōu)勢的毛花獼猴桃品種。

3.2 蔗糖含量對毛花獼猴桃果實成熟期可溶性糖含量具有重要影響

筆者在本研究中發(fā)現(xiàn)，在果實成熟期，贛綠1號果實中3種主要可溶性糖（葡萄糖、果糖、蔗糖）的總含量是贛綠6號果實的1.44倍，這種含量差異主要由兩者蔗糖和果糖含量的差異引起，其中蔗糖含量差異尤為明顯。蔗糖是引起毛花獼猴桃贛綠1號和贛綠6號果實成熟期可溶性糖含量存在顯著差異的主要糖類。任金立[21]對兩個薄皮甜瓜品種進行研究發(fā)現(xiàn)，在果實發(fā)育的不同時期，兩個品種果實糖含量均表現(xiàn)出顯著差異，而蔗糖含量的差異引起兩個甜瓜品種間甜度產(chǎn)生顯著差異，這一結果與本研究結果一致。姚改芳等[18]對不同栽培種梨果實的研究發(fā)現(xiàn)，成熟期梨果實糖分主要由果糖、葡萄糖、蔗糖和山梨醇組成，其中果糖含量最高且含量穩(wěn)定，其余糖分含量存在較大差異。劉涵[22]對3個不同品種（系）獼猴桃果實可溶性糖進行了研究，結果發(fā)現(xiàn)，在果實成熟階段，兩個中華獼猴桃品種皖金和紅陽的葡萄糖含量在可溶性糖中占比最高，兩者均為葡萄糖優(yōu)勢型果實；而對萼獼猴桃果實中果糖含量占比最高，為果糖優(yōu)勢型果實。本研究中，贛綠1號獼猴桃果實成熟期3種可溶性糖含量差異較小，它們占可溶性總糖含量的比例分別為32.47%（葡萄糖）、35.71%（果糖）和31.82%（蔗糖）；而贛綠6號獼猴桃果實中葡萄糖占可溶性總糖含量的比例最高（49.26%），其次為果糖（36.78%）、蔗糖（13.96%）；類似于上述皖金和紅陽獼猴桃，贛綠6號同樣可被視為葡萄糖優(yōu)勢型果實。相似地，劉春宏等[23]對一個野生毛花獼猴桃的研究發(fā)現(xiàn)，在成熟階段，野生毛花獼猴桃果實中葡萄糖積累最多，其次為果糖，蔗糖積累最少。對不同品種軟棗獼猴桃進行的研究發(fā)現(xiàn)，蔗糖通常是果實中積累量最多的可溶性糖種類[24-25]。此外，蔗糖也是糯米糍荔枝[26]和10個不同品種杏[27]果實成熟階段積累量最多的可溶性糖。而成熟階段的蘋果果實中，果糖占可溶性糖的比例超過55%[28]?？梢姡煌N類果樹中，果實可溶性糖的積累可能存在較大差異；同一種類不同品種的果樹，果實中不同可溶性糖的含量也可能存在明顯差異。

3.3 蔗糖磷酸合酶及蔗糖磷酸合酶基因對獼猴桃果實成熟期蔗糖代謝具有顯著調(diào)控作用

蔗糖是植物光合作用的主要產(chǎn)物，其對植物生長發(fā)育、逆境防御和果實品質提升等發(fā)揮重要作用。蔗糖及其代謝產(chǎn)物也是植物生長發(fā)育的能量來源；同時又能作為信號分子參與細胞代謝調(diào)控[1]。SPS對蔗糖積累起重要作用，多數(shù)果樹果實成熟過程中蔗糖積累水平與SPS活性呈正相關。本研究發(fā)現(xiàn)，在果實成熟期，贛綠1號果實SPS活性極顯著高于贛綠6號果實，且兩個品種果實蔗糖含量與SPS活性呈極顯著正相關。由此可推測，蔗糖磷酸合酶是調(diào)控毛花獼猴桃果實成熟期蔗糖代謝的關鍵酶。在甜瓜中，反義表達蔗糖磷酸合酶基因CmSPS1后，轉基因植株成熟果實中蔗糖濃度和SPS活性均降低，果實變得更小，說明SPS在調(diào)控甜瓜果實發(fā)育和果實品質形成中起重要作用[29]。筆者在本研究中發(fā)現(xiàn)，贛綠1號獼猴桃成熟果實中SPS編碼基因AeSPS的相對表達量達是贛綠6號的4.81倍，AeSPS基因表達量與果實SPS活性和蔗糖含量均呈極顯著正相關，推測AeSPS基因是調(diào)控毛花獼猴桃果實成熟期SPS活性的關鍵基因。

本研究發(fā)現(xiàn)，贛綠1號成熟果實中SUSY活性也顯著高于贛綠6號，但其編碼基因AeSUSY在兩個品種中的相對表達量并無顯著差異，且AeSUSY基因相對表達量與果實蔗糖含量呈負相關，說明SUSY的活性調(diào)節(jié)機制可能比較復雜，AeSUSY基因并不是毛花獼猴桃果實蔗糖積累的關鍵調(diào)控基因。SUSY能夠可逆催化蔗糖分解與合成，但通常認為在庫器官中SUSY主要起分解蔗糖的作用[30-31]。將一個番茄SUSY編碼基因反義表達后，轉基因番茄果實SUSY活性被顯著抑制，蔗糖含量與對照相比并無顯著差異，而番茄植株坐果率下降，推測SUSY主要參與番茄幼果中蔗糖輸入調(diào)控[32]。筆者在本研究中還發(fā)現(xiàn)，贛綠1號果實中，負責調(diào)控蔗糖降解的AINV和NINV的活性均顯著低于贛綠6號果實，但它們的活性均大幅度低于兩個品種中SPS和SUSY的活性，表明它們介導的蔗糖分解代謝對毛花獼猴桃果實成熟期蔗糖代謝的影響可能相對有限。此外，AINV和NINV的活性與各自的編碼基因AeAINV和AeNINV的表達水平并不完全一致，暗示蔗糖轉化酶活性不僅與其編碼基因的表達量有關，亦受蛋白水調(diào)控[33]，而相關作用機制需要進一步研究。

4 結 論

筆者在本研究中以高糖型（贛綠1號）和低糖型（贛綠6號）兩個毛花獼猴桃品種為研究對象，對成熟期果實品質指標進行了系統(tǒng)分析，首次發(fā)現(xiàn)蔗糖是引起毛花獼猴桃果實可溶性糖含量存在較大差異的主要糖類，推測蔗糖磷酸合酶及其編碼基因AeSPS是負責毛花獼猴桃果實成熟期蔗糖積累的關鍵代謝酶和關鍵調(diào)控基因。本研究結果為深入理解毛花獼猴桃果實蔗糖調(diào)控機制和果實風味品質的遺傳改良提供了重要的理論依據(jù)。

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