摘要:黃瓜(Cucumis sativus L.)是一種重要的園藝蔬菜作物,具有重要的食用和經(jīng)濟(jì)價(jià)值,然而病毒病嚴(yán)重影響我國(guó)黃瓜的產(chǎn)量和品質(zhì)。近年來(lái),我國(guó)科研人員對(duì)不同地區(qū)黃瓜病毒病的流行情況開(kāi)展了廣泛深入的研究,本文梳理整合了前人的研究結(jié)果,發(fā)現(xiàn)在全國(guó)范圍內(nèi)采集的黃瓜樣品中檢出的病毒達(dá)到20種之多,涉及10個(gè)科、11個(gè)屬,其中以馬鈴薯Y病毒屬(Potyvirus)的病毒數(shù)量最多,達(dá)到了7種,并且除TYLCV為DNA病毒以外,其余均為RNA病毒,說(shuō)明RNA病毒導(dǎo)致的黃瓜病毒病在我國(guó)占據(jù)絕對(duì)主導(dǎo)地位,其中又以Potyvirus病毒對(duì)我國(guó)黃瓜的侵染最為廣泛,是威脅黃瓜生產(chǎn)的最大病毒種群。進(jìn)一步,通過(guò)分析病毒種類的地理分布,說(shuō)明在全國(guó)范圍內(nèi)須加強(qiáng)對(duì)CMV、CCYV、CGMMV以及Potyvirus中PRSV和WMV的防治工作和抗病育種研究;其中,黃淮海流域和長(zhǎng)江流域應(yīng)重點(diǎn)針對(duì)CMV以及Potyvirus中的WMV和ZYMV;此外,江蘇、甘肅、重慶、海南的黃瓜病毒病較為嚴(yán)重,各地區(qū)應(yīng)予以重視。隨著科學(xué)技術(shù)的進(jìn)步,新興的小RNA深度測(cè)序技術(shù)已被廣泛應(yīng)用于病毒的鑒定當(dāng)中,打破了傳統(tǒng)方法只能檢測(cè)已知病毒的局限性,未來(lái)將會(huì)成為一種常規(guī)高效的病毒檢測(cè)手段,具有廣闊的應(yīng)用前景。
關(guān)鍵詞:黃瓜;病毒;分布;檢測(cè)
中圖分類號(hào):S436.421.1 文獻(xiàn)標(biāo)志碼:A
文章編號(hào):1002-1302(2024)17-0020-07
收稿日期:2023-09-20
基金項(xiàng)目:北京市教育委員會(huì)科技計(jì)劃(編號(hào):KM202212448003、KM202312448004);北京農(nóng)業(yè)職業(yè)學(xué)院院級(jí)項(xiàng)目(編號(hào):XY-YF-22-02、XY-KJ-22-07);國(guó)家自然科學(xué)基金(編號(hào):32001571)。
作者簡(jiǎn)介:高 樂(lè)(1987—),男,河北石家莊人,博士,副教授,從事植物抗病毒基因工程研究。E-mail:gaole@bvca.edu.cn。
通信作者:鄭志勇,碩士,教授,主要從事園藝植物栽培研究,E-mail:zhengzhiyong@bvca.edu.cn;任俊達(dá),博士,副教授,主要從事植物病理學(xué)研究,E-mail:renjd@bua.edu.cn。
黃瓜(Cucumis sativus)別稱胡瓜、青瓜,為葫蘆科(Cucurbitaceae)一年生蔓生或攀緣草本植物,是一種重要的園藝蔬菜作物[1]。黃瓜是我國(guó)主要的保護(hù)地栽培和大面積栽培的蔬菜種類,在各地區(qū)蔬菜供baa2462cf96d0e395f0c1757f63df1b8應(yīng)中起著關(guān)鍵作用,具有重要的食用和經(jīng)濟(jì)價(jià)值[2]。近年來(lái),由于農(nóng)業(yè)生產(chǎn)環(huán)境的變化和耕作模式的改變,黃瓜病毒病呈現(xiàn)出多發(fā)的態(tài)勢(shì),對(duì)黃瓜的產(chǎn)量和品質(zhì)造成嚴(yán)重影響,威脅著我國(guó)黃瓜產(chǎn)業(yè)的健康發(fā)展。黃瓜感染病毒以后,初期心葉出現(xiàn)明脈現(xiàn)象,之后逐漸產(chǎn)生花葉、重花葉、皺縮、卷曲等癥狀,最終導(dǎo)致果實(shí)凹凸不平、螺旋狀扭曲、果肉僵硬、苦澀等[3]。近年來(lái),我國(guó)科研人員對(duì)不同地區(qū)黃瓜病毒病的流行情況開(kāi)展了廣泛深入的研究,取得了大量的進(jìn)展。本文梳理整合了前人的研究結(jié)果,綜合概述了侵染我國(guó)黃瓜的病毒種類、地理分布、優(yōu)勢(shì)毒源及其檢測(cè)方法,以期為我國(guó)黃瓜病毒病的防治工作和抗病育種研究提供參考。
1 侵染病毒的種類
近年來(lái)的研究表明,在全國(guó)范圍內(nèi)采集的黃瓜樣品中檢出的病毒達(dá)到20種之多(表1)[4],包括馬鈴薯X病毒(PVX)、黃瓜花葉病毒(CMV)、甜瓜黃斑病毒(MYSV)、番茄斑萎病毒(TSWV)、瓜類褪綠黃化病毒(CCYV)、南瓜花葉病毒(SqMV)、蠶豆萎蔫病毒2號(hào)(BBWV2)、葫蘆內(nèi)源RNA病毒(LsEV)、番茄黃化曲葉病毒(TYLCV)、南瓜蚜傳黃化病毒(CABYV)、甜瓜蚜傳黃化病毒(MABYV)、番木瓜環(huán)斑病毒(PRSV)、花生條紋病毒(PStV)、馬鈴薯Y病毒(PVY)、蕪菁花葉病毒(TuMV)、西瓜花葉病毒(WMV)、西葫蘆虎紋花葉病毒(ZTMV)、小西葫蘆黃花葉病毒(ZYMV)、黃瓜綠斑駁花葉病毒(CGMMV)、煙草花葉病毒(TMV)。
上述20種病毒歸屬為10個(gè)科、11個(gè)屬(表2和圖1):包括甲型線形病毒科(Alphaflexiviridae)馬鈴薯X病毒屬(Potexvirus)的PVX[5];雀麥花葉病毒科(Bromoviridae)黃瓜花葉病毒屬(Cucumovirus)的CMV[6];布尼亞病毒科(Bunyaviridae)番茄斑萎病毒屬(Tospovirus)的MYSV[7]和TSWV[8];長(zhǎng)線形病毒科(Closteroviridae)毛形病毒屬(Crinivirus)的CCYV[9];豇豆花葉病毒科(Comoviridae)豇豆花葉病毒屬(Comovirus)的SqMV[10]和蠶豆病毒屬(Fabavirus)的BBWV2[11];內(nèi)源RNA病毒科(Endornaviridae)內(nèi)源RNA病毒屬(Endornavirus)的LsEV[12];雙生病毒科(Geminiviridae)菜豆金色花葉病毒屬(Begomovirus)的TYLCV[13];黃癥病毒科(Luteoviridae)馬鈴薯卷葉病毒屬(Polerovirus)的CABYV[14]和MABYV[15];馬鈴薯Y病毒科(Potyviridae)馬鈴薯Y病毒屬(Potyvirus)的PRSV、PStV、PVY、TuMV、WMV、ZTMV、ZYMV[16-22];帚狀病毒科(Virgaviridae)煙草花葉病毒屬(Tobamovirus)的CGMMV[23]和TMV[24]。由此可見(jiàn),在檢出的20種病毒當(dāng)中,幾乎所有的科屬僅包含其中的1~2種,而Potyvirus病毒數(shù)量明顯高于其他科屬,達(dá)到了7種(表2和圖1)。此外,檢出的病毒幾乎均為RNA病毒,僅TYLCV為DNA病毒(表2)。
2 侵染病毒的地理分布
2.1 松遼流域
松遼流域地跨黑龍江、吉林、遼寧3省的全部,以及內(nèi)蒙古和河北省的一部分,該流域的遼寧省在黃瓜上檢出病毒1種[25],為CMV(表3、圖2至圖4)。
2.2 黃淮海流域
黃淮海流域地跨北京、天津、山東3省(市)的全部,河北和河南2省的大部分,以及江蘇和安徽2省的淮北地區(qū),是我國(guó)重要的蔬菜生產(chǎn)基地。該流域在黃瓜上共檢出病毒8種,包括CABYV、CCYV、CGMMV、CMV、PRSV、TMV、WMV、ZYMV[26-33](表3和圖2至圖4),其中北京市檢出病毒3種,分別為CMV、WMV、ZYMV;天津市檢出病毒3種,分別為CMV、TMV、WMV;山東省檢出病毒4種,分別為CMV、PRSV、WMV、ZYMV;江蘇省北部地區(qū)檢出病毒8種,分別為CABYV、CCYV、CGMMV、CMV、PRSV、TMV、WMV、ZYMV。進(jìn)一步可以看出,在北京、山東、江蘇北部均檢出了CMV、WMV、ZYMV(表3和圖4),由此可見(jiàn),在黃淮海流域侵染黃瓜的優(yōu)勢(shì)毒源為CMV、WMV、ZYMV。
2.3 長(zhǎng)江流域
長(zhǎng)江流域地跨川、甘、鄂、青、藏、滇、渝、湘、贛、皖、蘇、滬等地,同時(shí)涵蓋部分云貴高原,包括渝東西、渝東北、鄂西、湘西、云南、貴州等地區(qū),是我國(guó)重要的蔬菜種植區(qū)[29]。該流域在黃瓜上共檢出病毒9種,包括CABYV、CCYV、CGMMV、CMV、PRSV、SqMV、TuMV、WMV、ZYMV(表3和圖2至圖4),其中甘肅省檢出病毒5種[30],分別為CMV、PRSV、SqMV、WMV、ZYMV;重慶市檢出病毒5種[31],分別為CMV、SqMV、TuMV、WMV、ZYMV; 湖北省檢出病毒1種[32],為CMV;江蘇省南部地區(qū)檢出病毒7種[28],分別為CABYV、CCYV、CGMMV、CMV、PRSV、WMV、ZYMV。進(jìn)一步可以看出,在甘肅、重慶、江蘇南部均檢出了CMV、WMV、ZYMV(表3和圖4),由此可見(jiàn),在長(zhǎng)江流域侵染黃瓜的優(yōu)勢(shì)毒源同黃淮海流域一致,為CMV、WMV、ZYMV。
2.4 珠江流域
珠江流域地跨滇、黔、桂、粵、湘、贛等地區(qū),該流域的廣東省在黃瓜上檢出病毒3種[26],分別為CMV、PRSV、WMV(表3和圖2至圖4)。
2.5 其他
黃瓜是海南省冬季種植的重要蔬菜作物,主要生產(chǎn)區(qū)域包括三亞、澄邁、萬(wàn)寧等市(縣),共檢出病毒5種[33],分別為CCYV、CGMMV、CMV、MYSV、TMV(表3和圖2至圖4)。
3 侵染病毒的檢測(cè)方法
3.1 酶聯(lián)免疫吸附分析
酶聯(lián)免疫吸附分析(ELISA)又稱為免疫學(xué)測(cè)定或血清學(xué)測(cè)定,具有簡(jiǎn)便、快速、靈敏度高、特異性強(qiáng)等優(yōu)點(diǎn),廣泛應(yīng)用于植物病毒的檢測(cè)當(dāng)中[34]。該項(xiàng)技術(shù)的原理是借助化學(xué)方法使酶與抗體結(jié)合形成酶標(biāo)抗體,進(jìn)而與相應(yīng)的抗原底物特異性結(jié)合發(fā)生化學(xué)反應(yīng),在酶的催化作用下顯色,生成的有色化合物的量與病原物的含量成正比,反應(yīng)液在 405 nm 波長(zhǎng)下有吸收峰值(D405 nm),可通過(guò)酶標(biāo)儀測(cè)定D405 nm,從而對(duì)病毒進(jìn)行定性和定量分析[35]。隨著科學(xué)技術(shù)的不斷進(jìn)步,ELISA也在不斷地向更快捷、更方便、更高效的方向優(yōu)化,但仍存在一些局限性[36]:(1)ELISA主要利用病毒外殼蛋白的抗原性來(lái)進(jìn)行檢測(cè)分析,因此無(wú)法檢測(cè)缺乏外殼蛋白的病毒;(2)陽(yáng)性與陰性樣品的區(qū)分受到季節(jié)性不確定問(wèn)題的影響;(3)檢測(cè)周期受到病毒在植株體內(nèi)分布不均勻以及病毒分離物多樣性的限制;(4)病毒的檢出率受到病毒間血清學(xué)關(guān)系遠(yuǎn)近的影響。
3.2 聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)
聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(PCR)是通過(guò)檢測(cè)病毒的特異性核苷酸序列來(lái)確定病毒的種類,由于該項(xiàng)技術(shù)是在DNA/RNA水平上對(duì)病毒進(jìn)行鑒定,因此靈敏度極高,病毒滴度可以低至pg級(jí)甚至fg級(jí),也是純化病毒基因片段的必備手段[36]。該項(xiàng)技術(shù)的原理是根據(jù)病毒的核苷酸序列信息設(shè)計(jì)特異性引物,提取病毒基因組之后進(jìn)行PCR擴(kuò)增反應(yīng),通過(guò)瓊脂糖凝膠電泳對(duì)目標(biāo)基因條帶進(jìn)行純化回收,將純化的基因片段連接至克隆載體并轉(zhuǎn)化至大腸桿菌感受態(tài)DH5α進(jìn)行擴(kuò)繁培養(yǎng),最后通過(guò)測(cè)序及序列比對(duì)分析鑒定病毒的種類。對(duì)于DNA病毒而言,可以直接通過(guò)PCR技術(shù)進(jìn)行快速體外擴(kuò)增;對(duì)于RNA病毒而言,可以通過(guò)反轉(zhuǎn)錄PCR(RT-PCR)的方法進(jìn)行病毒檢測(cè),即先將病毒的RNA反轉(zhuǎn)錄成cDNA,再進(jìn)行PCR擴(kuò)增反應(yīng)[36]。PCR技術(shù)兼具成本低廉、重復(fù)性好、精確度高等優(yōu)點(diǎn),但試驗(yàn)結(jié)果容易被近緣病毒干擾。
3.3 小RNA深度測(cè)序
小RNA深度測(cè)序61aafa59f47244a23c665e500232e979(SRDS)是一種新興的病毒檢測(cè)技術(shù),可以不依賴于病毒的核苷酸序列信息,具有靈敏度高、效率高、數(shù)據(jù)處理簡(jiǎn)便、能夠探索未知病毒等優(yōu)點(diǎn)[37-39]。該項(xiàng)技術(shù)基于寄主對(duì)病毒的RNA干擾原理,即病毒在植物體內(nèi)復(fù)制的過(guò)程中,會(huì)產(chǎn)生小的雙鏈RNA(dsRNA),寄主通過(guò)Dicer-like酶識(shí)別dsRNA并加工生成許多小的干擾RNA(siRNA),siRNA能夠識(shí)別、結(jié)合與其序列互補(bǔ)的病毒并對(duì)其進(jìn)行切割,從而導(dǎo)致病毒的降解[38]。因此,提取發(fā)病植株樣本的總RNA并構(gòu)建RNA文庫(kù),利用SRDS技術(shù)進(jìn)行測(cè)序,對(duì)測(cè)序數(shù)據(jù)進(jìn)行質(zhì)控分析,能夠檢出與侵染病毒序列高度一致的小RNA片段,并完成病毒RNA序列的組裝、比對(duì)、分析等,從而最終確定侵染的病毒種類[37-38]。
4 展望
黃瓜是我國(guó)廣泛栽培種植的重要園藝蔬菜作物,病毒病給黃瓜的產(chǎn)量和品質(zhì)帶來(lái)嚴(yán)重危害,明確黃瓜病毒病的流行情況,鑒定侵染的病毒種類、地理分布以及優(yōu)勢(shì)毒源,對(duì)我國(guó)黃瓜病毒病的防治工作和抗病育種研究具有重要意義。前人的研究表明,在全國(guó)范圍內(nèi)采集的黃瓜樣品中檢出的病毒達(dá)到20種之多(表1),涉及10個(gè)科、11個(gè)屬(表2和圖1),包括Begomovirus(TYLCV)、Comovirus(SqMV)、Crinivirus(CCYV)、Cucumovirus(CMV)、Endornavirus(LsEV)、Fabavirus(BBWV2)、Polerovirus(CABYV和MABYV)、Potexvirus(PVX)、Potyvirus(PRSV、PStV、PVY、TuMV、WMV、ZTMV、ZYMV)、Tobamovirus(CGMMV和TMV)、Tospovirus(MYSV和TSWV)。進(jìn)一步可以看出,在檢出的所有病毒當(dāng)中,除TYLCV為DNA病毒以外,其余均為RNA病毒,并且以Potyvirus病毒數(shù)量最多,達(dá)到了7種,明顯高于其他科屬(表2和圖1),說(shuō)明RNA病毒引致的黃瓜病毒病在我國(guó)占據(jù)絕對(duì)主導(dǎo)地位,其中又以Potyvirus病毒對(duì)我國(guó)黃瓜的侵染最為廣泛,是威脅黃瓜生產(chǎn)的最大病毒種群。因此,我國(guó)黃瓜病毒病的防治工作和抗病育種研究應(yīng)重點(diǎn)面向RNA病毒類型,尤其要針對(duì)其中的Potyvirus病毒。
就病毒分布而言,CMV分布最為廣泛,存在于所有5個(gè)流域,其次為CCYV、CGMMV、PRSV、WMV,均分布于3個(gè)流域(表3和圖3),可見(jiàn)危害我國(guó)黃瓜生產(chǎn)的優(yōu)勢(shì)毒源為CMV、CCYV、CGMMV、PRSV、WMV;就流域而言,黃淮海流域和長(zhǎng)江流域檢出的病毒種類最多、多樣性最高,分別達(dá)到了8種和9種(表3和圖2),并且在這2個(gè)流域中的絕大部分地區(qū)均檢出了CMV、WMV、ZYMV(表3和圖4),說(shuō)明該2個(gè)流域的優(yōu)勢(shì)毒源均為CMV、WMV、ZYMV;就具體地區(qū)而言,江蘇檢出的病毒種類最多,達(dá)到了8種,其次為甘肅、重慶、海南,均為5種(表3和圖4)。綜上所述,通過(guò)分析侵染我國(guó)黃瓜病毒種類的地理分布可知,在我國(guó)范圍內(nèi)須加強(qiáng)對(duì)CMV、CCYV、CGMMV以及Potyvirus中PRSV和WMV的防治工作和抗病育種研究;其中,黃淮海流域和長(zhǎng)江流域應(yīng)重點(diǎn)針對(duì)CMV以及Potyvirus中的WMV和ZYMV加強(qiáng)病毒病的防控;此外,我國(guó)江蘇、甘肅、重慶、海南的黃瓜病毒病較為嚴(yán)重,各地區(qū)應(yīng)予以重視。需要注意的是,我國(guó)大部分地區(qū)的黃瓜都存在2種或2種以上病毒復(fù)合侵染的現(xiàn)象,甚至存在7種病毒同時(shí)侵染的現(xiàn)象[40]。病毒復(fù)合侵染不僅能加重對(duì)寄主的危害,還可能發(fā)生病毒重組導(dǎo)致新病毒株系的出現(xiàn),從而給黃瓜生產(chǎn)帶來(lái)更大的威脅[41]。此外,種植區(qū)域內(nèi)的雜草也可能成為病毒的中間寄主,促進(jìn)病毒的擴(kuò)散傳播[31]。因此,在黃瓜病毒病的防治工作和抗病育種研究中,要兼顧多種重要的病毒種類,并且及時(shí)清理潛在的中間寄主。
隨著科學(xué)技術(shù)的進(jìn)步,病毒的檢測(cè)方法日益豐富,包括ELISA、PCR、SRDS等,其中新興的SRDS技術(shù)已被廣泛應(yīng)用于病毒的鑒定當(dāng)中[42]。相較于ELISA和PCR等傳統(tǒng)的病毒檢測(cè)手段,SRDS不需要富集病毒,不依賴于已知病毒的基因組序列信息,具有更高的靈敏度,數(shù)據(jù)處理更加便捷,能夠在發(fā)病植株的混合樣品中對(duì)已知和未知病毒的RNA序列進(jìn)行全面掃描,尤其是適合于發(fā)現(xiàn)新病毒,打破了傳統(tǒng)方法只能檢測(cè)已知病毒的局限性。然而,該項(xiàng)技術(shù)在一定程度上會(huì)受到病毒含量以及小RNA長(zhǎng)度的影響,從而導(dǎo)致誤判,因此運(yùn)用ELISA和PCR進(jìn)行相互驗(yàn)證,將此3種檢測(cè)技術(shù)進(jìn)行有機(jī)結(jié)合,可以彌補(bǔ)各自的不足,從而最大限度地保證試驗(yàn)的準(zhǔn)確性和全面性。隨著測(cè)序技術(shù)的不斷發(fā)展、成本不斷降低,SRDS將會(huì)成為一種常規(guī)高效的病毒檢測(cè)手段,具有廣闊的應(yīng)用前景。
參考文獻(xiàn):
[1]Che G,Zhang X L. Molecular basis of cucumber fruit domestication[J]. Current Opinion in Plant Biology,2019,47:38-46.
[2]李懷智. 我國(guó)黃瓜栽培的現(xiàn)狀及其發(fā)展趨勢(shì)[J]. 蔬菜,2003(8):3-4.
[3]鄭棚峻,張 宇,張松柏,等. 葫蘆科作物重要種傳病毒研究進(jìn)展[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué),2017,45(3):5-9.
[4]劉 勇,李 凡,李月月,等. 侵染我國(guó)主要蔬菜作物的病毒種類、分布與發(fā)生趨勢(shì)[J]. 中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué),2019,52(2):239-261.
[5]He M,He C Q,Ding N Z.Evolution of potato virus X[J]. Molecular Phylogenetics and Evolution,2022,167:107336.
[6]Vitti A,La Monaca E,Sofo A,et al. Beneficial effects of Trichoderma harzianum T-22 in tomato seedlings infected by cucumber mosaic virus (CMV)[J]. BioControl,2015,60(1):135-147.
[7]Sugiyama M,Okuda M,Sakata Y. Evaluation of resistance to melon yellow spot virus in a cucumber germplasm collection[J]. Plant Breeding,2009,128(6):696-700.
[8]Olaya C,F(xiàn)letcher S J,Zhai Y,et al. The tomato spotted wilt virus (TSWV) genome is differentially targeted in TSWV-Infected tomato (Solanum lycopersicum) with or without Sw-5 gene[J]. Viruses,2020,12(4):363.
[9]Jailani A K,Iriarte F,Hochmuth R,et al. First report of cucurbit chlorotic yellows virus affecting watermelon in USA[J]. Plant Disease,2021, 106: 774.
[10]Liu L M,Xie K L,Tsekpuia A R,et al. Construction and biological characterization of an Agrobacterium-mediated infectious cDNA of squash mosaic virus[J]. Virus Research,2019,274:197766.
[11]Seo J K,Kwak H R,Choi B,et al. Movement protein of broad bean wilt virus 2 serves as a determinant of symptom severity in pepper[J]. Virus Research,2017,242:141-145.
[12]Kwon S J,Tan S H,Vidalakis G.Complete nucleotide sequence and genome organization of an endornavirus from bottle gourd (Lagenaria siceraria) in California,U.S.A.[J]. Virus Genes,2014,49(1):163-168.
[13]Shteinberg M,Mishra R,Anfoka G,et al. Tomato yellow leaf curl virus (TYLCV) promotes plant tolerance to drought[J]. Cells,2021,10(11):2875.
[14]Vidal A H,Lacorte C,Sanches M M,et al. Characterization of cucurbit aphid-borne yellows virus (CABYV) from passion fruit in Brazil:evidence of a complex of species within CABYV isolates[J]. Viruses,2023,15(2):410.
[15]Zhang S K,Zhao T Y,Shi X,et al. Development of polyclonal antisera against movement proteins from three poleroviruses infecting cucurbits[J]. Phytopathology Research,2020,2(1):22.
[16]Le N T,Tran H T,Bui T P,et al. Simultaneously induced mutations in eIF4E genes by CRISPR/Cas9 enhance PVY resistance in tobacco[J]. Scientific Reports,2022,12(1):14627.
[17]Peng B,Liu L M,Wu H J,et al. Interspecific recombination between zucchini Tigre mosaic virus and papaya ringspot virus infecting cucurbits in China[J]. Frontiers in Microbiology,2021,12:773992.
[18]Parmar N,Thakur A K,Kumar P,et al. Molecular characterization of turnip mosaic potyvirus (TuMV)-infecting radish (Raphanus sativus L.) crop in India[J]. 3 Biotech,2017,7(6):382.
[19]Dewir S,Sipahioglu M H. The Effect of arbuscular mycorrhizal fungus (AMF) on zucchini yellow mosaic virus (ZYMV) in summer squash cultivars[J]. The Journal of Turkish Phytopathology,2016(1/2/3):11-21.
[20]Elbeshehy E K F,Metwali E M R,Almaghrabi O A.Antiviral activity of Thuja orientalis extracts against watermelon mosaic virus (WMV) on Citrullus lanatus[J]. Saudi Journal of Biological Sciences,2015,22(2):211-219.
[21]Vargas-Mejía P,Vega-Arreguín J,Chávez-Calvillo G,et al. Differential accumulation of innate- and adaptive-immune-response-derived transcripts during antagonism between papaya ringspot virus and papaya mosaic virus[J]. Viruses,2020,12(2):230.
[22]Gunasinghe U B,F(xiàn)lasinski S,Nelson R S,et al. Nucleotide sequence and genome organization of peanut stripe potyvirus[J]. The Journal of General Virology,1994,75 (9):2519-2525.
[23]Crespo O,Robles C,Ruiz L,et al. Antagonism of cucumber green mottle mosaic virus against tomato leaf curl New Delhi virus in zucchini and cucumber[J]. Annals of Applied Biology,2020,176(2):147-157.
[24]Samavat S,Ghelichi Zokhano V. The anti-viral studies of plant extracts of Bunium persicum and Zataria multiflora on Nicotiana glutinosa and N. tabacum against tobacco mosaic virus(TMV;Tobamovirus,Virgaviridae) in Iran[J]. Archives of Phytopathology and Plant Protection,2021,54(19/20):1914-1925.
[25]徐千惠. 遼寧省蔬菜病毒病調(diào)查與鑒定[D]. 沈陽(yáng):沈陽(yáng)農(nóng)業(yè)大學(xué),2016.
[26]史利雪,張圣平,苗 晗,等. 北京、山東和廣東黃瓜病毒檢測(cè)[J]. 中國(guó)蔬菜,2018(4):48-52.
[27]李淑菊,王惠哲,霍振榮,等. 利用RT-PCR對(duì)黃瓜病毒病毒原種類進(jìn)行檢測(cè)[J]. 華北農(nóng)學(xué)報(bào),2004,19(3):100-102.
[28]楊 柳,況佳穎,任春梅,等. 江蘇省主要葫蘆科作物病毒種類及分布[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),2022,38(1):65-72.
[29]別之龍. 長(zhǎng)江流域設(shè)施蔬菜產(chǎn)業(yè)發(fā)展現(xiàn)狀與思考[J]. 長(zhǎng)江蔬菜,2018(8):24-29.
[30]文朝慧,南志標(biāo). 甘肅省河西地區(qū)瓜類作物病毒病的病原鑒定[J]. 西北農(nóng)林科技大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),2013,41(12):131-137.
[31]熊 艷,孫 淼,王鶴冰,等. 重慶黃瓜病毒病病原分子鑒定及序列分析[J]. 農(nóng)業(yè)生物技術(shù)學(xué)報(bào),2017,25(4):650-658.
[32]張艷超,侯明生,蔡 麗. 湖北省蔬菜病毒病主要毒原種類檢測(cè)[J]. 華中農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2017,36(6):31-38.
[33]車海彥,曹學(xué)仁,賀延恒,等. 海南島黃瓜病毒病種類鑒定及其發(fā)生分布研究[J]. 熱帶作物學(xué)報(bào),2020,41(11):2280-2284.
[34]Webster C G,Wylie S J,Jones M G K. Diagnosis of plant viral pathogens[J]. Current Science,2004,86(12):1604-1607.
[35]周雪平,濮祖芹. 應(yīng)用斑點(diǎn)法檢測(cè)植物病毒的研究[J]. 病毒學(xué)雜志,1990,5(3):317-321.
[36]袁小環(huán),李 青. 血清學(xué)方法和分子生物學(xué)方法檢測(cè)植物病毒研究進(jìn)展[J]. 熱帶農(nóng)業(yè)科學(xué),2001,21(6):63-68.
[37]李 洋,王 昊,張 晨,等. 基于小RNA(sRNA)深度測(cè)序技術(shù)進(jìn)行病毒鑒定和發(fā)現(xiàn)的研究進(jìn)展[J]. 病毒學(xué)報(bào),2015,31(4):457-462.
[38]張 麗,于沛?zhèn)b,齊永紅,等. 小RNA深度測(cè)序技術(shù)分析西瓜花葉病毒蜀葵分離物[J]. 中國(guó)生物化學(xué)與分子生物學(xué)報(bào),2019,35(3):324-332.
[39]趙小慧,劉 沖,郁 凱,等. 利用小RNA深度測(cè)序技術(shù)鑒定江蘇鹽城辣椒病毒種類[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),2023,39(1):37-43.
[40]青 玲,包凌云,周常勇,等. 重慶南瓜病毒病病原ELISA檢測(cè)及CMV變異分析[J]. 園藝學(xué)報(bào),2010,37(3):405-412.
[41]Murphy J F,Bowen K L. Synergistic disease in pepper caused by the mixed infection of cucumber mosaic virus and pepper mottle virus[J]. Phytopathology,2006,96(3):240-247.
[42]范旭東,董雅鳳,張尊平,等. 陽(yáng)光玫瑰葡萄病毒小RNA測(cè)序鑒定及RT-PCR檢測(cè)[J]. 植物病理學(xué)報(bào),2019,49(6):749-755.