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        淫羊藿苷對(duì)骨折大鼠骨髓基質(zhì)干細(xì)胞增殖及成骨分化的影響

        2024-04-09 15:20:52吳啟弘張永祥何立民
        中國醫(yī)藥導(dǎo)報(bào) 2024年7期
        關(guān)鍵詞:劑量

        吳啟弘 張永祥 余 江 何立民 潘 杰 楊 頗

        貴州中醫(yī)藥大學(xué)第二附屬醫(yī)院創(chuàng)傷骨科,貴州貴陽 550000

        骨愈合延遲或失敗仍是困擾骨科醫(yī)生的關(guān)鍵問題,5%~10%的骨折患者術(shù)后會(huì)出現(xiàn)愈合延遲或骨不連,影響預(yù)后[1-2]。骨髓基質(zhì)干細(xì)胞(bone marrow stromal cells,BMSCs)具有分化為成骨細(xì)胞、軟骨細(xì)胞等的潛能,其成骨向分化是骨折愈合及軟骨內(nèi)成骨的關(guān)鍵[3-4]。淫羊藿苷是淫羊藿中黃酮類化合物的衍生物,其可促進(jìn)大鼠脂肪干細(xì)胞成骨分化[5-6]。但關(guān)于淫羊藿苷對(duì)BMSCs 成骨分化的影響及機(jī)制尚未明確。本研究采用不同濃度淫羊藿苷干預(yù)BMSCs,觀察其增殖及成骨情況。

        1 材料與方法

        1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物

        SPF 級(jí)SD 大鼠5 只,8 周齡,雌雄不限,體重(290±20)g,生產(chǎn)許可證號(hào)SCXK(京)2019-0008,合格證號(hào)110322211100491267,購于北京華阜康生物科技股份有限公司。本研究經(jīng)貴州中醫(yī)藥大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物倫理審查委員會(huì)審核通過(ls201912007)。

        1.2 主要材料與儀器

        淫羊藿苷標(biāo)準(zhǔn)品(純度≥98%)購于武漢純度生物科技有限公司,批號(hào):150206;CCK-8 試劑盒、堿性磷酸酶(alkaline phosphatase,ALP)活性檢測(cè)試劑盒購于上海吉至生化科技有限公司,批號(hào):140809、200118、170614;茜素紅染色液購于伊勢(shì)久(江蘇連云港)生物科技有限責(zé)任公司,批號(hào):110917;兔抗鼠FITC-CD29、PE-CD90、FITC-CD45 抗體,兔抗鼠Janus 激酶2(Janus kinase 2,JAK2)、信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)與轉(zhuǎn)錄激活因子5(signal transducers and activator of transcription 5,STAT5)、p-STAT5 一抗購于美國Abcam 公司,貨號(hào):ab254514、ab192256、ab17202、ab108596、ab32364、ab278764。

        HSG9832 型Elx800 酶標(biāo)儀購于美國Thermo 公司;CytoFLEX 流式細(xì)胞儀購于美國Beckman 公司;StepOne Puls 實(shí)時(shí)熒光定量聚合酶鏈反應(yīng)(quantitative real-time PCR,qRT-PCR)儀購于美國ABI 公司。

        1.3 研究方法

        1.3.1 BMSCs 來源、分離、培養(yǎng)及鑒定 麻醉大鼠,于右膝髕骨內(nèi)側(cè)做一切口,暴露股骨髁間凹,在髁內(nèi)鉆孔后,將克氏針插入脛骨髓腔,鋼鋸橫行截?cái)喙晒?,形成橫行骨折,縫合。骨折后2 d,麻醉后斷頸處死,剝離股骨,DMEM 培養(yǎng)基沖洗股骨髓腔并收集帶有骨髓細(xì)胞的沖洗液,過濾,加入等體積Percoll 細(xì)胞分離液離心,收集中間白色層,PBS 沖洗2 遍,重懸,以5×107個(gè)密度接種于培養(yǎng)皿,2 d 后更換培養(yǎng)液,37 ℃、5%CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng),每3 天換液1 次,傳三代后進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。取對(duì)數(shù)生長期的細(xì)胞,流式細(xì)胞儀測(cè)定CD29、CD90、CD45 陽性率。

        1.3.2 細(xì)胞分組 取第三代BMSCs,重懸并接種于24孔板。將細(xì)胞分為對(duì)照組,低、中、高劑量組。對(duì)照組不做特殊處理;低、中、高劑量組加入含終濃度1、10、100 μmol/L 淫羊藿苷溶液的DMEM 培養(yǎng)液[7]。繼續(xù)培養(yǎng)24 h 后,更換成骨誘導(dǎo)培養(yǎng)基(含10-8mol/L 地塞米松+50 μmol/L 左旋抗壞血酸+10 mmol/L β 甘油磷酸鹽)繼續(xù)培養(yǎng)。

        1.3.3 CCK-8 法檢測(cè)BMSCs 增殖情況 取“1.3.2”項(xiàng)下培養(yǎng)24 h 的各組BMSCs,接種至24 孔板(2.5×105個(gè)/孔)繼續(xù)培養(yǎng)24 h,按照CCK-8 試劑盒說明書加入CCK-8 試劑,培養(yǎng)2 h,檢測(cè)490 nm 處各孔細(xì)胞光密度(optical optical density,OD)值。每組設(shè)置6 個(gè)復(fù)孔,實(shí)驗(yàn)重復(fù)3 次。

        1.3.4 ALP 活性檢測(cè)“1.3.2”項(xiàng)下各組細(xì)胞誘導(dǎo)分化第15 天時(shí),棄培養(yǎng)液,PBS 清洗,離心取上清,參照試劑盒說明書檢測(cè)ALP 活性,以全自動(dòng)酶標(biāo)儀測(cè)定各孔520 nm 處OD 值,在ALP 標(biāo)準(zhǔn)曲線上讀取活性值。

        1.3.5 茜素紅染色觀察成骨向誘導(dǎo)分化“1.3.2”項(xiàng)下各組細(xì)胞誘導(dǎo)分化第21 天時(shí),棄去培養(yǎng)液,4%多聚甲醛固定30 min,PBS 清洗3 次,茜素紅染色,顯微鏡下觀察成骨分化效果。

        1.3.6 免疫印跡法檢測(cè)JAK2/STAT5 通路蛋白表達(dá)情況 取“1.3.2”項(xiàng)下各組培養(yǎng)24 h 的BMSCs,裂解、提取總蛋白,電泳、轉(zhuǎn)膜、脫脂奶粉(5%)室溫封閉2 h,加入兔抗鼠JAK2、STAT5、p-STAT5 一抗(1∶1 000),次日加入山羊抗兔二抗(1∶2 000),室溫孵育2 h,顯色、顯影定影,分析蛋白表達(dá)量。

        1.4 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法

        采用SPSS 20.0 統(tǒng)計(jì)學(xué)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析。計(jì)量資料用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差()表示,多組間比較采用單因素方差分析,兩兩比較采用SNK-q 檢驗(yàn);兩組間比較采用t 檢驗(yàn)。以P<0.05 為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

        2 結(jié)果

        2.1 BMSCs 細(xì)胞鑒定

        原代細(xì)胞呈大小不規(guī)則形態(tài),傳代至第三代時(shí),細(xì)胞呈紡錘形或多角形,大小均一,見圖1;流式細(xì)胞儀鑒定結(jié)果顯示,CD29 和CD90 陽性率分別為99.2%及99.8%,CD45 陽性率為1.4%,細(xì)胞符合間骨髓基質(zhì)干細(xì)胞來源特征,表明分離的細(xì)胞為BMSCs,見圖2。

        圖1 細(xì)胞形態(tài)(200×)

        圖2 流式細(xì)胞儀鑒定結(jié)果

        2.2 各組BMSCs 增殖情況及ALP 活性比較

        與對(duì)照組比較,低、中、高劑量組OD 值、ALP 活性均升高(P<0.05);與低劑量組比較,中、高劑量組OD 值、ALP 活性均升高(P<0.05);與中劑量組比較,高劑量組OD 值、ALP 活性升高(P<0.05)。見表1。

        表1 各組BMSCs 增殖情況及ALP 活性比較(,n=3)

        表1 各組BMSCs 增殖情況及ALP 活性比較(,n=3)

        注 與對(duì)照組比較,aP<0.05;與低劑量組比較,bP<0.05;與中劑量組比較,cP<0.05。BMSCs:骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞;OD:光密度;ALP:堿性磷酸酶。

        2.3 各組茜素紅染色結(jié)果比較

        茜素紅染色結(jié)果顯示,BMSCs 可誘導(dǎo)成骨分化,形成鈣結(jié)節(jié)。對(duì)照組有較少深紅色鈣化結(jié)節(jié)形成,低、中、高劑量組有較多深紅色鈣化結(jié)節(jié)形成。見圖3。

        圖3 各組BMSCs 成骨向分化結(jié)果(茜素紅染色,200×)

        對(duì)照組,低、中、高劑量組礦化結(jié)節(jié)面積占比分別為(10.25±3.37)%、(29.57±3.42)%、(62.25±8.12)%、(75.76±9.17)%。與對(duì)照組比較,低、中、高劑量組礦化結(jié)節(jié)面積占比均升高(t=9.856、14.488、16.425,P<0.001);與低劑量組比較,中、高劑量組礦化結(jié)節(jié)面積占比均升高(t=9.085、11.560,P<0.001);與中劑量組比較,高劑量組礦化結(jié)節(jié)面積占比升高(t=2.702,P=0.022)。

        2.4 各組JAK2/STAT5 通路蛋白表達(dá)比較

        與對(duì)照組比較,低、中、高劑量組JAK2、p-STAT5/STAT5 均降低(P<0.05);與低劑量組比較,中、高劑量組JAK2、p-STAT5/STAT5 均降低(P<0.05);與中劑量組比較,高劑量組JAK2、p-STAT5/STAT5 均降低(P<0.05)。見圖4、表2。

        表2 各組JAK2/STAT5 通路蛋白表達(dá)比較(,n=3)

        表2 各組JAK2/STAT5 通路蛋白表達(dá)比較(,n=3)

        注 與對(duì)照組比較,aP<0.05;與低劑量組比較,bP<0.05;與中劑量組比較,cP<0.05。JAK2:Janus 激酶2;STAT5:信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)與轉(zhuǎn)錄激活因子5。

        圖4 各組JAK2/STAT5 通路蛋白表達(dá)變化

        3 討論

        目前臨床常通過使用骨愈注射液促進(jìn)骨痂形成,但效果不理想,且有副作用[8-10]。天然藥物具有高效、低毒的特點(diǎn),相對(duì)安全的中藥單體成分已應(yīng)用于骨折治療中[11-13]。

        BMSCs 增殖及成骨分化在骨折愈合中發(fā)揮關(guān)鍵作用[14-15]。本研究結(jié)果顯示,淫羊藿苷各劑量組OD 值、ALP 活性均高于對(duì)照組。提示淫羊藿苷可促進(jìn)BMSCs增殖及成骨分化。淫羊藿可補(bǔ)腎陽、強(qiáng)筋骨,益腎壯陽,淫羊藿苷是其主要有效成分之一。明磊國等[16]研究顯示,淫羊藿苷對(duì)人BMSCs 成骨分化具有促進(jìn)作用,對(duì)骨質(zhì)疏松有治療效果。另有研究認(rèn)為,淫羊藿苷可激活雌激素受體,上調(diào)成骨相關(guān)基因和蛋白的表達(dá);淫羊藿苷可增強(qiáng)BMSCs 的遷移能力,促進(jìn)其歸巢到受損部位[17-19]。

        JAK2/STAT5 通路是重要的細(xì)胞信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路,在成骨細(xì)胞發(fā)生、分化及成熟過程中發(fā)揮重要作用,抑制JAK2/STAT5 通路活化可促進(jìn)脂多糖誘導(dǎo)成骨細(xì)胞成骨分化[20-25]。本研究結(jié)果顯示,與對(duì)照組比較,淫羊藿苷各劑量組JAK2、p-STAT5/STAT5 均降低。提示淫羊藿苷可能通過抑制JAK2/STAT5 通路促進(jìn)BMSCs 增殖及成骨向分化。

        綜上所述,淫羊藿苷可能通過抑制JAK2/STAT5通路促進(jìn)創(chuàng)傷性骨折大鼠BMSCs 增殖及成骨向分化。

        利益沖突聲明:本文所有作者均聲明不存在利益沖突。

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