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        黃河麥春季制曲過程微生物多樣性的分析研究

        2024-04-02 01:46:16董喬娟姜明慧白秀彬趙紀(jì)文
        釀酒科技 2024年2期
        關(guān)鍵詞:優(yōu)勢

        許 玲,董喬娟,姜明慧,王 洋,白秀彬,趙紀(jì)文*

        (1.山東扳倒井股份有限公司,山東高青 256300;2.山東好客酒業(yè)有限公司,山東成武 274200)

        優(yōu)越的生態(tài)環(huán)境是中國白酒形成復(fù)合性、豐富性風(fēng)格的自然條件。山東扳倒井股份有限公司地處北緯37°黃金名酒帶和黃河“安瀾灣”濕地交匯處。北緯37°是北半球暖溫帶的中位線,這里四季分明,溫度適宜,世界上許多著名的釀酒產(chǎn)區(qū)都分布在該自然帶上。黃河是中華民族的母親河,萬里黃河在高青“安瀾”形成了獨(dú)特的濕地環(huán)境,使扳倒井所在地具有溫暖濕潤、雨熱同期的地域環(huán)境。

        大曲,是釀酒風(fēng)格形成的關(guān)鍵。國井扳倒井白酒采用黃河流域的冬小麥制曲。這里的小麥歷經(jīng)寒暑,經(jīng)黃河水的灌溉,顆粒飽滿,富含淀粉、蛋白質(zhì)等營養(yǎng)成分,制備的大曲品質(zhì)優(yōu)良,釀酒一酒多味,完善發(fā)展了非物質(zhì)文化遺產(chǎn)“宋代扳倒井白酒釀造技藝”。為進(jìn)一步解析黃河麥曲的優(yōu)良性能,本研究對春季制曲過程進(jìn)行全面跟蹤,運(yùn)用高通量測序技術(shù)解析微生物多樣性,明確了大曲在不同發(fā)酵階段微生物群落結(jié)構(gòu)和關(guān)鍵微生物種類,為優(yōu)化操作、提升大曲質(zhì)量提供了參考依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1 材料、儀器

        曲樣:黃河麥曲(春季生產(chǎn)過程),取自國井扳倒井制曲車間2#—19#曲房。

        儀器設(shè)備:Illumina Miseq 2×300 bp 高通量測序平臺(生工生物工程上海股份有限公司);大曲酶系測定相關(guān)儀器設(shè)備均由山東扳倒井股份有限公司提供。

        1.2 試驗(yàn)方法

        1.2.1 大曲發(fā)酵過程取樣

        根據(jù)生產(chǎn)工藝,在入房、不同翻曲時(shí)間節(jié)點(diǎn)、出房時(shí)進(jìn)行大曲樣品采集。采集時(shí),按照四分法采樣,從曲房的四角和中間5 個(gè)位置各取3 塊長勢良好的大曲曲塊,全部粉碎后混合均勻,-20 ℃冰箱保存?zhèn)溆谩?/p>

        1.2.2 大曲理化指標(biāo)及酶活力測定

        測定大曲的水分、酸度、淀粉含量,糖化酶、液化酶、蛋白酶、酯化酶活力以及發(fā)酵力。按照《大曲檢測方法》(BDJ/JW-WSW-06)進(jìn)行。

        1.2.3 大曲微生物類群的多樣性分析

        采用高通量測序技術(shù)分別對大曲中細(xì)菌類群和真菌類群的多樣性進(jìn)行分析。

        細(xì)菌的16S rRNA 定制V4 區(qū)擴(kuò)增引物為:515F(5'-GTGCCAGCMGCCGCGGTAA-3')和806R(5'-GGACTACHVGGGTWTCTAAT-3'),真菌擴(kuò)增引物為ITS1(5'-CTTGGTCATTTAGAGGAAGTAA-3')和ITS2(5'-GCTGCGTTCTTCATCGATGC-3')。

        PCR 反應(yīng)體系:12.5 μL 2×Taq PCRMasterMix,3 μL BSA(2 ng/μL),2Primer(5 μM),2 μL 模板DNA,5 μL ddH2O。反應(yīng)參數(shù):95 ℃預(yù)變性5 min;95 ℃變性30 s,55 ℃退火1 min,72 ℃延伸30 s,35 個(gè)循環(huán);72 ℃延伸10 min 終止。擴(kuò)增序列通過Illumina Miseq 2×300 bp 高通量測序平臺進(jìn)行測序,下機(jī)數(shù)據(jù)經(jīng)過cutadapt(去除接頭)、PEAR(序列對拼)、Prinseq(質(zhì)量剪切),去除得分低于20 分、堿基模糊、引物錯(cuò)配或測序長度小于150 bp 的序列。

        經(jīng)過上述步驟后,將標(biāo)簽分組具有97 %序列相似性的高質(zhì)量的OTU 序列[14-16],細(xì)菌得到的每個(gè)OTU 代表序列比對RDP 數(shù)據(jù)庫、silva 數(shù)據(jù)庫和NCBI 16S 數(shù)據(jù)庫,真菌得到的OTU 代表序列比對RDP 數(shù)據(jù)庫和UNITE 數(shù)據(jù)庫。最后再通過人工進(jìn)行檢查以獲得物種信息。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 大曲發(fā)酵過程品溫變化

        由圖1 可知,扳倒井春季制曲時(shí)曲房內(nèi)培養(yǎng)時(shí)間在24 d 左右。培養(yǎng)過程經(jīng)過三次翻曲、一次合房。中挺時(shí)間7 d左右,中挺溫度60 ℃左右。

        圖1 中高溫大曲發(fā)酵過程品溫變化

        2.2 大曲理化指標(biāo)變化

        由表1可知,一翻前曲塊主要產(chǎn)酸,酸度由0.11上升至1.21,之后隨發(fā)酵有所降低;三翻時(shí)液化酶活力達(dá)到最大,二翻和三翻之間是液化酶大量生成階段,之后有所降低;小麥自身的糖化力較高,入房后糖化力降低,隨著發(fā)酵進(jìn)行,由于微生物的作用,糖化力有所起伏,但最終出房糖化力比較高;小麥自身帶有發(fā)酵力,并且在整個(gè)發(fā)酵過程處于動態(tài)平衡;酯化力在合房到出房時(shí)是大量生成階段;酸性蛋白酶是大曲發(fā)酵過程產(chǎn)生的酶類,一翻前就大量生成,隨著發(fā)酵進(jìn)行有所起伏。

        2.3 微生物多樣性

        2.3.1 16S高通量分析

        由表2 可知,入房時(shí)曲塊的細(xì)菌菌群多樣性最?。╯hannon 值最?。?,二翻前多樣性越來越大,二翻后有所起伏;三翻前細(xì)菌菌群的豐富度越來越高,但三翻后逐漸降低。總體來看,二翻前的培養(yǎng)階段是大曲微生物菌系生長比較活躍的時(shí)期。

        表2 Alpha多樣性指數(shù)統(tǒng)計(jì)表

        由表3和圖2可知:

        表3 屬水平下不同制曲階段的細(xì)菌相對豐度比例(%)

        圖2 屬水平下不同制曲階段的細(xì)菌相對豐度柱狀圖

        ①制曲入房時(shí),物料的微生物來源主要是原料和水中的微生物。因此鏈型植物占據(jù)絕對優(yōu)勢(49.12%),其次是泛菌屬;

        ②之后的培養(yǎng)過程,泛菌屬(Pantoea)、魏斯氏菌屬(Weissella)、乳桿菌屬(Lactobacillus)、不動桿菌屬(Acinetobacter)、片球菌屬(Pediococcus)、芽孢桿菌屬(Bacillus)是主要的優(yōu)勢菌屬,乳桿菌屬相對豐度占到42.5%;

        ③一翻后至二翻,泛菌屬(Pantoea)、魏斯氏菌屬(Weissella)和芽孢桿菌屬(Bacillus)占據(jù)優(yōu)勢;

        ④三翻操作時(shí),泛菌屬(Pantoea)再次占據(jù)絕對優(yōu)勢,相對豐度比例高達(dá)49.82 %。分析可能與采集樣品有關(guān);

        ⑤合房階段,不動桿菌屬(Acinetobacter)和泛菌屬(Pantoea)占據(jù)優(yōu)勢,相對豐度分別是41.07 %和24.65%;

        ⑥出房時(shí),未分類的腸桿菌科(unclassified_Enterobacteriaceae)占據(jù)絕對優(yōu)勢,魏斯氏菌屬(Weissella)、泛菌屬(Pantoea)也屬優(yōu)勢菌屬。

        2.3.2 ITS高通量分析

        由表4 可知,入房時(shí)真菌的多樣性最?。╯hannon 值最?。?,隨著培養(yǎng)過程出現(xiàn)波動,但變化不大;真菌豐富度的變化與多樣性相似,出房時(shí)真菌豐富度最小。

        表4 Alpha多樣性指數(shù)統(tǒng)計(jì)表

        由表5和圖3可知:

        表5 屬水平下不同制曲階段的真菌相對豐度比例(%)

        圖3 屬水平下不同制曲階段的真菌相對豐度柱狀圖

        ①入房時(shí),物料和水?dāng)y帶的優(yōu)勢真菌為鏈格孢霉屬(Alternaria)和雙足囊菌屬(Dipodascus);

        ②一翻時(shí),優(yōu)勢真菌屬發(fā)生較大變化,生絲畢赤酵母屬(Hyphopichia)、威克漢姆酵母屬(Wickerhamomyces)、根霉屬(Rhizopus)、伊薩酵母屬(Issatchenkia)占據(jù)優(yōu)勢,尤其生絲畢赤酵母屬相對豐度高達(dá)39.97%;

        ③二翻時(shí),威克漢姆酵母屬(Wickerhamomyces)、根霉屬(Rhizopus)、根毛霉屬(Rhizomucor)為優(yōu)勢菌屬;

        ④三翻時(shí),根毛霉屬(Rhizomucor)、根霉屬(Rhizopus)、伊薩酵母屬(Issatchenkia)成為優(yōu)勢菌屬;

        ⑤合房時(shí),根毛霉屬(Rhizomucor)、生絲畢赤酵母屬(Hyphopichia)、根霉屬(Rhizopus)、威克漢姆酵母屬(Wickerhamomyces)為優(yōu)勢菌屬;

        ⑥出房時(shí),伊薩酵母屬(Issatchenkia)、威克漢姆酵母屬(Wickerhamomyces)、根毛霉屬(Rhizomucor)為優(yōu)勢菌屬。

        2.4 綜合分析

        2.4.1 溫度和水分對微生物多樣性的影響

        ①一翻之前,水分損耗較小,芽孢桿菌屬(Bacillus)、魏斯氏菌屬(Weissella)、生絲畢赤酵母屬(Hyphopichia)、根霉屬(Rhizopus)在小麥自身糖化的情況下,利用糖類迅速繁殖,占據(jù)微生物群落優(yōu)勢,曲塊品溫由30 ℃上升到48 ℃左右。

        ②二翻至三翻時(shí)曲塊品溫到達(dá)60 ℃左右,并且持續(xù)時(shí)間較長。這個(gè)溫度對微生物的生長繁殖已經(jīng)造成較大影響,但溫度的上升是有一個(gè)過程的,對大曲微生物形成了溫度馴化,因此,此時(shí)仍然由泛菌屬(Pantoea)、威克漢姆酵母(Wickerhamomyces)、根霉屬(Rhizopus)、根毛霉屬(Rhizomucor)等耐高溫的菌屬占據(jù)優(yōu)勢。經(jīng)過這個(gè)高溫階段,水分散發(fā)也比較快,降到了14.8%。

        ③三翻后曲塊的品溫逐步降低,魏斯氏菌屬(Weissella)、生絲畢赤酵母屬(Hyphopichia)、伊薩酵母屬(Issatchenkia)等又開始活躍成為優(yōu)勢菌屬,尤其是出房時(shí)伊薩酵母屬(Issatchenkia)和威克漢姆酵母屬(Wickerhamomyces)占據(jù)真菌較大優(yōu)勢。

        2.4.2 酶系與微生物菌屬的關(guān)系

        ①在一翻前乳桿菌屬(Lactobacillus)、魏斯氏菌屬(Weissella)和片球菌屬(Pediococcus)占據(jù)絕對優(yōu)勢,推測是造成大曲酸度上升和酸性蛋白酶生成的主要菌屬;

        ②二翻至三翻時(shí)的根霉屬(Rhizopus)和根毛霉屬(Rhizomucor)占據(jù)優(yōu)勢,推測是液化力和糖化力的主要貢獻(xiàn)者,尤其是液化力,在二翻和三翻時(shí)達(dá)到頂峰;

        ③合房后的后熟階段,酵母菌屬占據(jù)優(yōu)勢,推測是出房酯化力的主要貢獻(xiàn)者。

        3 結(jié)論

        扳倒井黃河麥春季制曲工藝經(jīng)歷三次翻曲,翻曲節(jié)點(diǎn)品溫控制為48 ℃、61 ℃、61 ℃,中挺時(shí)間控制在6~7 d,微生物菌群多樣性和酶系豐富,其中乳桿菌屬(Lactobacillus)、魏斯氏菌屬(Weissella)和片球菌屬(Pediococcus)是造成大曲酸度上升和酸性蛋白酶生成的主要菌屬,根霉屬(Rhizopus)和根毛霉屬(Rhizomucor)是液化力和糖化力的主要貢獻(xiàn)者,酵母菌屬是大曲酯化力的主要貢獻(xiàn)者。下一步將進(jìn)一步挖掘可培養(yǎng)的菌屬資源,并進(jìn)一步探究其和制曲操作的對應(yīng)關(guān)系,提升大曲質(zhì)量,為白酒品質(zhì)提升奠定基礎(chǔ)。

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