曾克非 夏婷婷 吳小蘭 雷祥華
(1.井岡山大學附屬醫(yī)院婦產(chǎn)科, 吉安 343000;2.井岡山大學附屬醫(yī)院生殖醫(yī)學科,吉安 343000)
子癇前期(preeclampsia,PE)是一種妊娠期特有的疾病,以蛋白尿和高血壓為主要表現(xiàn),可導致胎盤持續(xù)性缺氧缺血,進而引發(fā)炎癥,造成胎盤滋養(yǎng)層細胞凋亡及血管生成受損,影響胎兒器官發(fā)育,并損害母體健康,是孕產(chǎn)婦死亡的主要原因之一[1-2]。在PE發(fā)病過程中,炎癥反應是導致胎盤功能受損的主要病理基礎,抗炎治療是改善PE患者臨床癥狀的有效策略[3-4]。動物實驗研究表明,Toll樣受體4(Toll-like receptor 4,TLR4)是調控炎癥反應的重要信號分子,下調TLR4表達可抑制磷脂酰肌醇3-激酶(phosphatidylinositol-3-kinase/protein kinase B,PI3K)/蛋白激酶B(protein kinase B,AKT)通路蛋白磷酸化,抑制小鼠促炎細胞因子產(chǎn)生,保護關節(jié)及肝組織免于炎癥損傷[5-6]。研究發(fā)現(xiàn),下調TLR4還可通過抑制PE大鼠炎癥因子表達而恢復其螺旋動脈重塑,促使胎兒生長[7],而侯敬等[8]研究顯示PI3K/AKT信號在PE發(fā)病過程中具有重要作用,其通路蛋白在早發(fā)型PE患者體內表達明顯升高,由此可知,下調TLR4/PI3K/AKT信號激活可能是防治PE的分子作用機制之一。木犀草素最初提取自木犀草莖、枝、葉中,是一種具有明顯抗炎功效的天然化合物,可通過下調TLR4/NF-κB通路表達改善變應性鼻炎大鼠Th1/Th2失衡,減輕鼻黏膜炎癥損傷[9]。有研究顯示,木犀草素是銀杏葉的主要活性成分,可治療高血壓[10]。但木犀草素是否能夠通過TLR4/PI3K/AKT通路降低血壓,改善PE引發(fā)的胎盤血管生成受損及細胞凋亡還不清楚,本研究通過建立PE大鼠模型對此進行探討。
1.1 材料
1.1.1 實驗動物 SD大鼠購自上海昇敞生物科技有限公司,生產(chǎn)許可證號:SCXK(滬)2021-0002,雌性(76只)體質量180~210 g,雄性(38只)體質量270~310 g,SPF級,在井岡山大學附屬醫(yī)院屏障環(huán)境動物中心適應飼養(yǎng)1周,4~6只/籠,明暗各12 h交替照明,動物房溫度、濕度分別為22~25 ℃、50%~60%,通風換氣10~20次/h。本實驗經(jīng)井岡山大學附屬醫(yī)院生物醫(yī)學研究倫理委員會審批[倫批2023第(81)號]。
1.1.2 主要試劑與儀器 N-硝基-L-精氨酸甲酯(L-NAME,F(xiàn)T011014)購于上海梵態(tài)生物科技有限公司;腺病毒包裝的TLR4過表達載體(含有空載對照)購于蘇州吉瑪基因股份有限公司;大鼠IL-6 ELISA試劑盒、木犀草素(HPLC純度≥98%)、大鼠IL-17 ELISA試劑盒購于北京索萊寶科技有限公司(貨號SEKR-0005、SL8300、SEKR-0007);TUNEL細胞凋亡原位檢測試劑盒、BCA法總蛋白定量測定試劑盒、腫瘤壞死因子-α(TNF-α)測試盒、高強度RIPA裂解液購于南京建成生物工程研究所(貨號:G001-1-1、A045-3-2、H052、W062-1-1);大鼠二步法免疫組化試劑盒購于北京中杉金橋公司(貨號ZLI-9017);羊抗兔二抗、兔源Anti-BCL2相關X蛋白(BCL2-associated X protein,Bax)一抗、兔源Anti-天冬氨酸特異性半胱氨酸蛋白酶3(caspase-3)一抗、兔源Anti-B淋巴細胞瘤-2(B-cell lymphoma-2,Bcl-2)一抗、兔源Anti-CD31一抗、兔源Anti-GAPDH一抗、兔源Anti-TLR4一抗、兔源Anti-PI3K一抗、兔源Antip-PI3K一抗、兔源Anti-p-AKT一抗、兔源Anti-AKT一抗購于美國Abcam公司(貨號ab150077、ab32503、ab184787、ab196495、ab281583、ab181602、ab13867、ab133595、ab182651、ab38449、ab179463等)。
血壓測量儀購于中國成都泰盟科技有限公司(型號:BL-410);全自動生化分析儀購于美國Beckman Coulter公司(型號:AU2700);酶標儀購于美國Bio Tek公司(型號:Synergy H4);石蠟包埋機、切片機購于德國MEDITE公司(型號TES99、BM2135);倒置顯微鏡購于德國Leica公司(型號:DMIL/DFC295);蛋白電泳儀購于美國Hoefer公司(型號:SE300);轉印電泳儀購于中國北京六一生物科技有限公司(型號:DYCZ-40D);化學發(fā)光凝膠成像儀購于美國Bio-Rad公司(型號:Transilluminator)。
1.2 方法
1.2.1 建立PE大鼠模型及分組給藥 將大鼠以2∶1的雌雄比例合籠,交配后獲得孕鼠72只(觀察到陰栓),隨機平分為6組:對照組、模型組、木犀草素組、TLR4過表達載體組、TLR4空載組、木犀草素+TLR4過表達載體組,以陰栓脫落作為孕1 d,除對照組外,其余各組大鼠于孕10 d向其臀部皮下注射L-NAME,劑量為100 mg/kg[11],對照組大鼠同時皮下注射等劑量0.9%NaCl溶液,所有大鼠均每天注射1次,持續(xù)至孕18 d,大鼠妊娠晚期平均動脈壓與24 h尿蛋白含量顯著升高,表明PE模型制備成功。
將木犀草素溶于0.9%NaCl溶液中,制成4 mg/ml的藥液[12],木犀草素組、木犀草素+TLR4過表達載體組大鼠以10 ml/kg的劑量灌胃給藥,每日1次;TLR4過表達載體組、TLR4空載組、木犀草素+TLR4過表達載體組大鼠靜脈注射0.5 ml腺病毒包裝的載體(TLR4過表達載體、空載對照濃度按照說明書設置)[13],每周1次,對照組和模型組大鼠以10 ml/kg劑量每日灌胃給藥木犀草素1次,同時每周靜脈注射0.5 ml 0.9%NaCl溶液1次,各組大鼠均于孕13 d給藥,共給藥1周。
1.2.2 測定大鼠妊娠晚期24 h尿蛋白含量及平均動脈壓 使用代謝籠收集孕20 d大鼠24 h內的尿液,以生化分析儀測出其中尿蛋白含量;采用血壓測量儀測定孕20 d大鼠尾根部的收縮壓和舒張壓,計算平均動脈壓=(收縮壓+舒張壓×2)/3。
1.2.3 檢測大鼠妊娠結局狀況及收集標本 以乙醚麻醉孕21 d大鼠,采集尾靜脈血1.3 ml靜置離心,于-80 ℃冰箱中保存上清備用;然后打開子宮,取出胎鼠和胎盤,測量胎鼠體質量并計數(shù),獲得平均子代體質量和平均子代數(shù)目;以手術剪取0.4 g胎盤組織,加入裂解液剪碎、勻漿、離心,以BCA法測出上清中總蛋白濃度后將其調至各組相等,最后分組標記,于-80 ℃冰箱中保存?zhèn)溆?;剩余胎盤組織清洗、固定、脫水后,以儀器進行包埋、切片備用。
1.2.4 測定大鼠血清炎癥因子IL-6、TNF-α、IL-17水平 提前取出1.2.3中的血清,以冰水浴慢慢解凍,采用試劑盒測定其中炎癥因子IL-6、TNF-α、IL-17水平,具體步驟參照各自試劑盒說明書進行。
1.2.5 檢測大鼠胎盤組織血管生成及細胞凋亡狀況 取出1.2.3中的胎盤組織切片,每只大鼠選3張于37.5 ℃下脫蠟(二甲苯孵育15 min)、水化(100%~70%乙醇依次孵育10 min)、封閉(5%牛血清白蛋白孵育3 h)后,4 ℃孵育CD31一抗(稀釋比例1∶250)過夜,洗滌,37.5 ℃孵育二抗(稀釋比例1∶500) 3 h,使用試劑盒進行免疫組化染色,再次洗滌、脫水后透明、封片,任選鏡下5個視野拍照,以顯微鏡所帶有的病理分析軟件分析計算出CD31陽性細胞比例;每只大鼠再次選出3張切片,以上述相同方法脫蠟、水化后,TUNEL染色、洗滌、脫水、透明、封片,顯微鏡下觀察并拍照,同樣以病理分析軟件分析計算凋亡細胞比例。
1.2.6 大鼠胎盤組織TLR4/PI3K/AKT通路蛋白水平檢測 取出1.2.3中的胎盤組織蛋白樣品液,以冰水浴慢慢解凍,各組均取20 μg蛋白100 ℃煮沸5 min變性,上樣電泳后濕轉,均于120 V電壓下進行80 min,然后將分離轉移到膜上的蛋白于37.5 ℃封閉(3%牛血清白蛋白孵育2 h),然后4 ℃分別孵育一抗(Anti-GAPDH、Anti-TLR4、Anti-PI3K、Anti-p-PI3K、Anti-p-AKT、Anti-AKT、Anti-Bax、Anti-caspase-3、Anti-Bcl-2)過夜稀釋比例分別為1∶2 000、1∶3 000、1∶2 500、1∶1 000、1∶1 500、1∶2 000、1∶2 500、1∶1 500、1∶1 000,以TBST洗膜(3次,6 min/次)后37.5 ℃孵育二抗(稀釋比例1∶1 000) 2 h,再次以TBST洗膜(3次,6 min/次)后,以化學發(fā)光法使蛋白條帶顯色,拍照,以Image J軟件定量條帶灰度值,對其進行統(tǒng)計分析后得到各蛋白相對表達水平。
1.3 統(tǒng)計學分析 實驗數(shù)據(jù)以±s表示,采用SPSS24.0軟件進行統(tǒng)計學分析,兩組間差異比較采用t檢驗;組間差異比較采用單因素方差分析,兩兩之間進一步比較行SNK-q檢驗,P<0.05表示差異具有統(tǒng)計學意義。
2.1 各組大鼠妊娠晚期平均動脈壓與24 h尿蛋白含量測定結果 與對照組相比,模型組大鼠妊娠晚期平均動脈壓與24 h尿蛋白含量顯著升高(P<0.05)。與模型組、木犀草素+TLR4過表達載體組分別相比,木犀草素組大鼠妊娠晚期平均動脈壓與24 h尿蛋白含量均顯著降低(P<0.05);TLR4過表達載體組大鼠妊娠晚期平均動脈壓與24 h尿蛋白含量均顯著升高(P<0.05)。與模型組相比,TLR4空載組大鼠妊娠晚期平均動脈壓與24 h尿蛋白含量差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。見表1。
表1 各組大鼠妊娠晚期平均動脈壓與24 h尿蛋白含量(±s,n=12)Tab.1 Average arterial pressure in third trimester of pregnancy and 24-hour urinary protein content of rats in each group (±s,n=12)
表1 各組大鼠妊娠晚期平均動脈壓與24 h尿蛋白含量(±s,n=12)Tab.1 Average arterial pressure in third trimester of pregnancy and 24-hour urinary protein content of rats in each group (±s,n=12)
Note:1)P<0.05 vs control group; 2)P<0.05 vs model group; 3)P<0.05 vs luteolin+TLR4 overexpression vector group.
Groups Control Model Luteolin TLR4 overexpression vector TLR4 empty Luteolin+TLR4 overexpression vector Mean arterial pressure/mmHg 83.57±4.62 123.18±6.131)84.92±5.402)3)159.43±7.362)3)123.39±6.48 24 h urinary protein content/mg 6.13±1.12 11.65±1.671)6.48±1.182)3)16.23±2.092)3)11.69±1.58 121.94±9.41 11.22±1.43 71.593 0.000 F P 213.541 0.000
2.2 各組大鼠妊娠結局情況檢測結果 與對照組相比,模型組大鼠平均子代數(shù)目及平均子代體質量顯著降低(P<0.05)。與模型組、木犀草素+TLR4過表達載體組分別相比,木犀草素組大鼠平均子代數(shù)目及平均子代體質量均顯著升高(P<0.05);TLR4過表達載體組大鼠平均子代數(shù)目及平均子代體質量均顯著降低(P<0.05)。與模型組相比,TLR4空載組大鼠平均子代數(shù)目及平均子代體質量差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。見表2。
表2 各組大鼠平均子代數(shù)目及平均子代體質量(±s,n=12)Tab.2 Average offspring number and average offspring weight of rats in each group (±s, n=12)
表2 各組大鼠平均子代數(shù)目及平均子代體質量(±s,n=12)Tab.2 Average offspring number and average offspring weight of rats in each group (±s, n=12)
Note:1)P<0.05 vs control group; 2)P<0.05 vs model group; 3)P<0.05 vs luteolin+TLR4 overexpression vector group.
Groups Control Model Luteolin TLR4 overexpression vector TLR4 empty Luteolin+TLR4 overexpression vector Average subalgebra/only 13.26±1.83 9.25±0.921)12.89±1.472)3)5.47±0.412)3)9.19±0.85 Average offspring weight/g 4.92±0.37 3.39±0.141)4.71±0.352)3)2.85±0.192)3)3.35±0.16 9.30±0.76 3.52±0.18 132.514 0.000 F P 75.716 0.000
2.3 各組大鼠胎盤微血管密度測定結果 與對照組相比,模型組大鼠胎盤組織CD31陽性細胞比例顯著降低(P<0.05)。與模型組、木犀草素+TLR4過表達載體組分別相比,木犀草素組大鼠胎盤組織CD31陽性細胞比例均顯著升高(P<0.05);TLR4過表達載體組大鼠胎盤組織CD31陽性細胞比例均顯著降低(P<0.05)。與模型組相比,TLR4空載組大鼠胎盤組織CD31陽性細胞比例差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。見圖1、表3。
圖1 免疫組化學染色檢測胎盤組織CD31表達(微血管密度)(×100)Fig.1 Expression of CD31 (microvessel density) in placental tissue detected by immunohistochemical staining (×100)
表3 各組大鼠胎盤組織CD31陽性細胞比例(±s,n=12)Tab.3 Proportion of CD31 positive cells in placental tissue of rats in each group (±s,n=12)
表3 各組大鼠胎盤組織CD31陽性細胞比例(±s,n=12)Tab.3 Proportion of CD31 positive cells in placental tissue of rats in each group (±s,n=12)
Note:1)P<0.05 vs control group; 2)P<0.05 vs model group; 3)P<0.05 vs luteolin+TLR4 overexpression vector group.
Proportion of CD31 positive cells/%Groups 32.25±4.15 11.64±0.921)31.14±5.132)3)4.05±0.342)3)11.59±0.87 11.71±1.05 213.127 0.000 Control Model Luteolin TLR4 overexpression vector TLR4 empty Luteolin+TLR4 overexpression vector F P
2.4 各組大鼠胎盤細胞凋亡測定結果 與對照組相比,模型組大鼠胎盤細胞凋亡比例顯著升高(P<0.05)。與模型組、木犀草素+TLR4過表達載體組分別相比,木犀草素組大鼠胎盤細胞凋亡比例均顯著降低(P<0.05);TLR4過表達載體組大鼠胎盤細胞凋亡比例均顯著升高(P<0.05)。與模型組相比,TLR4空載組大鼠胎盤細胞凋亡比例差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。見圖2、表4。
圖2 TUNEL染色檢測大鼠胎盤細胞凋亡情況(×200)Fig.2 Apoptosis of rat placental cells detected by TUNEL staining (×200)
表4 各組大鼠胎盤細胞凋亡比例(±s,n=12)Tab.4 Proportion of placental cell apoptosis of rats in each group (±s,n=12)
表4 各組大鼠胎盤細胞凋亡比例(±s,n=12)Tab.4 Proportion of placental cell apoptosis of rats in each group (±s,n=12)
Note:1)P<0.05 vs control group; 2)P<0.05 vs model group; 3)P<0.05 vs luteolin+TLR4 overexpression vector group.
Apoptosis/%3.83±0.54 32.67±5.281)4.23±0.632)3)54.89±6.492)3)33.25±6.02 31.91±6.15 191.826 0.000 Groups Control Model Luteolin TLR4 overexpression vector TLR4 empty Luteolin+TLR4 overexpression vector F P
2.5 各組大鼠血清炎癥因子IL-6、TNF-α、IL-17水平檢測結果 與對照組相比,模型組大鼠血清炎癥因子IL-6、TNF-α、IL-17水平顯著升高(P<0.05)。與模型組、木犀草素+TLR4過表達載體組分別相比,木犀草素組大鼠血清炎癥因子IL-6、TNF-α、IL-17水平均顯著降低(P<0.05);TLR4過表達載體組大鼠血清炎癥因子IL-6、TNF-α、IL-17水平均顯著升高(P<0.05)。與模型組相比,TLR4空載組大鼠血
清炎癥因子IL-6、TNF-α、IL-17水平差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。見表5。
表5 各組大鼠血清炎癥因子IL-6、TNF-α、IL-17水平(±s,n=12)Tab.5 Serum inflammatory factors IL-6, TNF-α and IL-17 levels of rats in each group (±s,n=12)
表5 各組大鼠血清炎癥因子IL-6、TNF-α、IL-17水平(±s,n=12)Tab.5 Serum inflammatory factors IL-6, TNF-α and IL-17 levels of rats in each group (±s,n=12)
Note:1)P<0.05 vs control group; 2)P<0.05 vs model group; 3)P<0.05 vs luteolin+TLR4 overexpression vector group.
Groups Control Model Luteolin TLR4 overexpression vector TLR4 empty Luteolin+TLR4 overexpression vector IL-17/(pg·ml-1)45.93±1.61 184.27±8.251)48.14±2.082)3)276.42±13.012)3)186.06±9.73 180.58±9.64 1351.209 0.000 F P IL-6/(ng·L-1)47.25±6.13 110.48±12.691)50.13±6.842)3)164.05±16.202)3)112.57±13.02 108.19±14.31 158.309 0.000 TNF-α/(ng·L-1)129.53±9.75 213.48±17.511)131.97±10.362)3)292.86±26.182)3)214.39±18.73 210.85±20.12 138.207 0.000
2.6 各組大鼠胎盤組織凋亡相關蛋白及TLR4/PI3K/AKT通路蛋白表達的檢測結果 與對照組相比,模型組大鼠胎盤組織凋亡蛋白Bax、caspase-3及TLR4/PI3K/AKT通路蛋白TLR4、p-PI3K/PI3K、p-AKT/AKT表達水平顯著升高(P<0.05),抗凋亡蛋白Bcl-2表達水平顯著降低(P<0.05)。與模型組、木犀草素+TLR4過表達載體組分別相比,木犀草素組大鼠胎盤組織凋亡蛋白Bax、caspase-3及TLR4/PI3K/AKT通路蛋白TLR4、p-PI3K/PI3K、p-AKT/AKT表達水平均顯著降低(P<0.05),抗凋亡蛋白Bcl-2表達水平均升高(P<0.05);TLR4過表達載體組大鼠胎盤組織凋亡蛋白Bax、caspase-3及TLR4/PI3K/AKT通路蛋白TLR4、p-PI3K/PI3K、p-AKT/AKT表達水平均升高(P<0.05),抗凋亡蛋白Bcl-2表達水平均降低(P<0.05)。與模型組相比,TLR4空載組大鼠胎盤組織上述各蛋白表達水平差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。見表6、圖3。
圖3 Western blot檢測各組大鼠胎盤組織TLR4/PI3K/AKT通路蛋白表達Fig.3 Expression of TLR4/PI3K/AKT pathway protein in placental tissue of rats in each group was detected by Western blot
表6 各組大鼠胎盤組織TLR4/PI3K/AKT通路蛋白相對表達水平(±s,n=12)Tab.6 Relative expression level of TLR4/PI3K/Akt pathway protein in placenta of rats in each group (±s,n=12)
表6 各組大鼠胎盤組織TLR4/PI3K/AKT通路蛋白相對表達水平(±s,n=12)Tab.6 Relative expression level of TLR4/PI3K/Akt pathway protein in placenta of rats in each group (±s,n=12)
Note:1)P<0.05 vs control group; 2)P<0.05 vs model group; 3)P<0.05 vs luteolin+TLR4 overexpression vector group.
Groups Control Model Luteolin TLR4 overexpression vector TLR4 empty Luteolin+TLR4 overexpression vector caspase-3/GAPDH Bcl-2/GAPDH 0.85±0.12 0.49±0.051)0.79±0.132)3)0.09±0.022)3)0.46±0.10 0.52±0.14 83.541 0.000 F P TLR4/GAPDH 0.49±0.14 1.25±0.271)0.52±0.152)3)2.01±0.342)3)1.27±0.28 1.22±0.31 56.808 0.000 p-PI3K/PI3K 0.38±0.11 1.07±0.231)0.42±0.132)3)1.78±0.292)3)1.10±0.24 1.02±0.18 75.132 0.000 p-AKT/AKT 0.24±0.05 0.96±0.211)0.27±0.082)3)1.68±0.322)3)0.95±0.16 0.92±0.24 85.901 0.000 Bax/GAPDH 0.22±0.03 0.98±0.141)0.26±0.052)3)1.71±0.262)3)0.97±0.12 0.95±0.21 147.369 0.000 0.07±0.02 0.45±0.071)0.10±0.032)3)0.99±0.202)3)0.46±0.08 0.44±0.11 123.008 0.000
PE作為一種常見的產(chǎn)科疾病,嚴重威脅孕產(chǎn)婦生命安全和胎兒發(fā)育,還是造成流產(chǎn)、早產(chǎn)、新生兒死亡的重要原因,目前尚無特效治療手段,對于人口質量的提升產(chǎn)生較大的負面影響[14-15]。本文以皮下注射L-NAME的方法誘導建立PE大鼠模型,觀察到大鼠血清中炎癥因子IL-6、TNF-α、IL-17水平明顯升高,顯示L-NAME可引發(fā)妊娠大鼠體內炎癥,導致大鼠尿蛋白含量和平均動脈壓明顯升高,胎盤組織血管生成受損,凋亡蛋白Bax、caspase-3表達水平顯著升高,抗凋亡蛋白Bcl-2表達顯著降低,細胞大量凋亡,最終造成胎鼠發(fā)育遲緩,體質量降低,存活率減少,揭示PE模型建立成功。
胎盤滋養(yǎng)層細胞是維持胎盤正常功能和胎兒營養(yǎng)支持的重要結構,在PE病理過程中會發(fā)生嚴重凋亡,影響胎兒正常生長發(fā)育[1-2],而炎癥反應是導致包括胎盤滋養(yǎng)層細胞凋亡在內的PE病理過程的主要因素,減輕母體全身炎癥有利于PE的治療[3-4]。木犀草素是一種有顯著抗菌消炎活性的天然黃酮類物質,可通過抑制IL-17炎癥信號通路,降低氧化應激水平,促進血管平滑肌細胞增殖及再生,減輕腦缺血損傷,發(fā)揮腦保護作用[16-17],劉翠翠等[10]研究發(fā)現(xiàn)木犀草素還可治療高血壓。本研究以木犀草素干預處理PE大鼠,可顯著降低其血清IL-6、TNF-α及IL-17水平、平均動脈壓、24 h尿蛋白含量,降低胎盤細胞凋亡比例及凋亡蛋白Bax、caspase-3表達,提升抗凋亡蛋白Bcl-2表達,增加平均子代數(shù)目、平均子代體質量和胎盤組織CD31陽性細胞比例,表明木犀草素能夠抑制炎癥細胞因子表達,減輕PE大鼠體內炎癥,降低滋養(yǎng)層細胞凋亡率,促進胎盤血管生成及胎鼠生長發(fā)育,改善大鼠妊娠后期高血壓及蛋白尿癥狀,揭示木犀草素對PE具有較強的治療作用。
在動物實驗中發(fā)現(xiàn),TLR4作為與炎癥密切相關的重要蛋白分子,可通過調控NF-κB、PI3K/AKT信號參與介導小鼠肝損傷、過敏性鼻炎等炎癥疾病的致病過程,下調TLR4表達可通過抑制PI3K/AKT信號激活減輕小鼠肝組織炎癥[5,18-19]。研究發(fā)現(xiàn),PI3K/AKT信號通路蛋白在早發(fā)型子癇前期患者體內表達明顯升高,可介導PE的發(fā)病過程[8];另外下調TLR4表達還可通過抑制NF-κB信號激活減少PE大鼠炎癥因子合成釋放,進而抑制胎盤滋養(yǎng)層細胞凋亡,修復胎盤功能,促使子代存活,改善大鼠PE癥狀[7,20]。另外有研究顯示木犀草素可通過下調變應性鼻炎大鼠TLR4/NF-κB通路表達,從而改善其鼻黏膜炎癥損傷,因而推測下調TLR4/PI3K/AKT通路可能是木犀草素治療PE的作用機制[9]。本文以腺病毒包裝的TLR4過表達載體上調PE大鼠TLR4表達,對此推測進行驗證,結果顯示,木犀草素可以降低PE大鼠胎盤組織TLR4、p-PI3K/PI3K、p-AKT/AKT蛋白表達水平,而以腺病毒包裝的TLR4過表達載體可以促進PE大鼠炎癥進展,加重其高血壓及蛋白尿癥狀,進一步降低子代存活率,并可減弱木犀草素對上述癥狀的改善作用,逆轉木犀草素對PE的治療作用,表明木犀草素可通過下調TLR4/PI3K/AKT通路抑制炎癥反應,改善PE臨床癥狀,維持胎盤正常功能,促使胎兒存活。
綜上所述,木犀草素可通過下調TLR4表達,減弱PI3K、AKT蛋白的磷酸化,進而降低炎癥因子表達合成,阻礙炎癥反應進展,減少PE大鼠胎盤細胞凋亡,促進胎盤血管生成,改善大鼠妊娠后期高血壓與蛋白尿癥狀,提高子代存活率,干擾TLR4/PI3K/AKT信號途徑傳導是其藥理機制之一。本文為木犀草素治療PE提供了支持性證據(jù),對其臨床的推廣應用可能有一定的參考價值。