劉開莉 梁貴秋 莫炳巧 肖瀟 徐雯雯 李安華 陸春霞韋師妮 李小群

摘要? 通過(guò)對(duì)桑黃多糖提取方法進(jìn)行選取并測(cè)定其含量，選出提取率高的多糖提取方法以及最優(yōu)條件，結(jié)果表明超聲波輔助酶法較水浴輔助溶劑浸提法和微波輔助提取法得率更高，最佳提取條件為料液比1∶20（g： mL）、超聲波提取時(shí)間40 min、超聲波功率300 W、加酶量0.15%，在此條件下，桑黃菌絲多糖得率為（6.58±0.01）%；通過(guò)HPLC外標(biāo)法對(duì)桑黃菌絲多糖進(jìn)行成分分析，得出桑黃菌絲體多糖主要單糖成分有甘露糖、氨基葡萄糖、核糖、鼠李糖、葡萄糖醛酸、半乳糖醛酸、氨基半乳糖、葡萄糖、半乳糖、木糖、阿拉伯糖、巖藻糖；通過(guò)對(duì)桑黃菌絲多糖進(jìn)行氧化還原分析，得出桑黃菌絲多糖均有一定的抗氧化能力，但相較VC，桑黃菌絲多糖的抗氧化能力效果略弱。

關(guān)鍵詞? 桑黃菌絲；多糖；提?。怀煞譁y(cè)定；氧化還原性

中圖分類號(hào)? R284? 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼? A

文章編號(hào)? 0517-6611（2024）04-0157-05

doi：10.3969/j.issn.0517-6611.2024.04.035

開放科學(xué)（資源服務(wù)）標(biāo)識(shí)碼（OSID）：

Extraction of Polysaccharide from Mycelia of Sanghuangporus lonicericola and Analysis of Oxidative Reducibility

LIU Kai.li1，2，LIANG Gui.qiu1，2，MO Bing.qiao1，2 et al

（1.Guangxi Silkworm Technology Promotion Station，Nanning，Guangxi 530007;2.Guangxi Key Laboratory of Sericultural Genetic Improvement and Efficient Breeding，Nanning，Guangxi 530007）

Abstract? By selecting extraction method? and determining the content of polysaccharide of S. lonicericola， the polysaccharide extraction method with high extraction rate and the optimal conditions were selected. The results showed that ultrasonic assisted enzymatic method had a higher yield than water bath assisted solvent extraction method and microwave.assisted extraction method. The optimal extraction conditions were solid.liquid ratio of 1∶20 （g∶mL）， ultrasonic extraction time of 40 min， ultrasonic power of 300 W， the enzyme dosage of 0.15%. Under these conditions， the yield of polysaccharide from mycelial of S. lonicericola was （6.58±0.01）%. By HPLC external standard method， the main monosaccharide components of S. lonicericola mycelial polysaccharide were mannose， glucosamine， ribose， rhamnose， glucuronic acid， galacturonic acid， amino galactose， glucose， galactose， xylose， arabinose and fucose. Through oxidation.reduction analysis of S. lonicericola mycelial polysaccharide， it was found that S. lonicericola mycelial polysaccharide had certain antioxidant capacity， but compared to VC， the antioxidant effect of S. lonicericola mycelial polysaccharide was slightly weaker.

Key words? S. lonicericola mycelial;Polysaccharide;Extract;Composition determination;Oxidation reduction

基金項(xiàng)目? 廣西重點(diǎn)研發(fā)計(jì)劃項(xiàng)目（桂科AB21196040）；國(guó)家現(xiàn)代農(nóng)業(yè)產(chǎn)業(yè)技術(shù)體系廣西創(chuàng)新團(tuán)隊(duì)建設(shè)項(xiàng)目（nycytxgxcxtd-2021-02-05）。

作者簡(jiǎn)介? 劉開莉（1988—），女，廣西玉林人，農(nóng)藝師，從事蠶桑資源綜合利用和食品加工研究。*通信作者，正高級(jí)農(nóng)藝師，碩士，從事蠶桑資源綜合利用、食品加工和食品微生物研究。

收稿日期? 2023-03-31

桑黃［Sanghuangporus lonicericola （Parmasto） L.W.Zhou & Y. C. Dai］是銹革孔菌科桑黃屬真菌，菌蓋呈木質(zhì)狀，扁平球形或馬蹄形，顏色呈淺肝褐色至暗灰色或黑色，幼期有細(xì)微絨毛，后變無(wú)毛，有同心環(huán)棱，老時(shí)常龜裂，無(wú)皮殼，菌肉深咖啡色，木質(zhì)［1］。桑黃可多年生長(zhǎng)在樹上，主要寄生于桑樹，楊樹、樺樹等樹木上也可生長(zhǎng)，目前桑黃已實(shí)現(xiàn)人工栽培，我國(guó)東北、華北等已廣泛人工栽培桑黃［2-3］。桑黃始載于《藥性論》，其具有抗腫瘤、抗癌、抗氧化等作用，尤其對(duì)婦科疾病具有一定的療效，因此被賦予“桑樹黃金”的美譽(yù)［4-5］。隨著桑黃藥用價(jià)值的不斷被挖掘，桑黃栽培得到越來(lái)越重視，同時(shí)其活性成分的提取、分離等研究也取得了有效進(jìn)展。桑黃菌絲提取多糖較子實(shí)體提取多糖更為容易，利用價(jià)值更高，因此該試驗(yàn)通過(guò)對(duì)桑黃菌絲多糖提取的方法、成分測(cè)定和氧化還原性進(jìn)行分析，以期為桑黃進(jìn)一步開發(fā)利用提供參考。

1? 材料與方法

1.1? 試驗(yàn)材料

1.1.1? 試材。桑黃菌種由廣西壯族自治區(qū)蠶業(yè)技術(shù)推廣站食品加工研究實(shí)驗(yàn)室提供。在無(wú)菌的環(huán)境中，取1 cm3桑黃母種，接入經(jīng)高壓滅菌的100 mL PD培養(yǎng)基中，置于26 ℃、150 r/min的搖床中培養(yǎng)14 d，過(guò)濾得到菌絲體，將桑黃菌絲體于60 ℃烘干至質(zhì)量恒定，粉碎過(guò)60目篩，置于封口袋中于冰箱中冷凍備用。

1.1.2? 試劑。無(wú)水乙醇、苯酚、濃硫酸、無(wú)水葡萄糖等，均為分析純，由生工生物工程（上海）股份有限公司生產(chǎn)。

1.1.3? 儀器。全溫培養(yǎng)搖床（QHX-250BSH-Ⅲ型）；電熱恒溫鼓風(fēng)干燥箱（DHG-9245A型）；電子分析天平（ME104型）；數(shù)控超聲清洗器（KQ-500B型）；冷凍離心機(jī)（H1750R）；斷水自控電熱蒸餾水器；粉碎機(jī)；酶標(biāo)儀。

1.2? 試驗(yàn)方法

1.2.1? 苯酚溶液的制備與標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制。

1.2.1.1

苯酚溶液的制備。稱取80 g苯酚（C6H12O6，重蒸餾）于100 mL燒杯中，加水定容至100 mL的棕色容量瓶中，得到80%的苯酚溶液。吸取5 mL苯酚溶液（80%）溶于75 mL 水中，混勻，現(xiàn)用現(xiàn)配，標(biāo)記為苯酚工作液。

1.2.1.2? 標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制。根據(jù)中華人民共和國(guó)出入境檢驗(yàn)檢疫行業(yè)標(biāo)準(zhǔn)SN/T 4260—2015［6］的苯酚-硫酸法繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。將葡萄糖于105 ℃恒溫烘干至恒重，準(zhǔn)確稱取1.000 g 葡萄糖于100 mL燒杯中加水溶解，定容至1 000 mL容量瓶中，即葡萄糖濃度為1.0 g/L。分別吸取0、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 mL的葡萄糖溶液（1.0 g/L）于具塞刻度試管中，用蒸餾水補(bǔ)至1 mL，向試管中加入1.0 mL苯酚工作液后快速加入5.0 mL濃硫酸，靜置10 min，充分搖勻后置于30 ℃水浴中反應(yīng)20 min，490 nm測(cè)量吸光度，繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線（圖1）。得到回歸方程為y=4.481 6x+0.301 4（R2=0.991 7），其中y為吸光度，x為葡萄糖濃度。

1.2.2? 桑黃多糖提取方法的選取及含量測(cè)定。

1.2.2.1? 水浴輔助溶劑浸提法。

參考李瑞雪等［7］對(duì)桑黃菌絲體多糖的研究，根據(jù)其單因素試驗(yàn)的結(jié)果，該試驗(yàn)以料液比、水浴溫度、水浴時(shí)間、提取次數(shù)為影響多糖提取率的主要因素，每個(gè)因素設(shè)3個(gè)水平，選用L9（34）正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)（表1），每個(gè)處理3次重復(fù)。

準(zhǔn)確稱取樣品10.00 g，按表1正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)進(jìn)行多糖提取，合并提取的濾液，加入4倍體積的無(wú)水乙醇，搖勻后3 000 r/min離心5 min，棄去上清液，將殘?jiān)?0 ℃恒溫烘干。稱取烘干后的殘?jiān)鼧?.20 g，按照“1.2.1.2”方法測(cè)定多糖含量，根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算結(jié)果，計(jì)算提取率。

1.2.2.2? 微波輔助提取法。

參考秦俊哲等［8］采用微波輔助提取法提取桑黃子實(shí)體多糖的研究，該試驗(yàn)以料液比、微波提取時(shí)間、微波功率、提取次數(shù)為影響多糖提取率的主要因素，每個(gè)因素設(shè)3個(gè)水平，選用L9（34）正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)（表2），每個(gè)處理3次重復(fù)。

稱取樣品10.00 g，參照表2正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)進(jìn)行多糖提取，以下操作步驟同“1.2.2.1”。

1.2.2.3? 超聲波輔助酶法。

參考時(shí)東方等［9］對(duì)桑黃菌絲體粗多糖的提取方法研究和程偉等［10］對(duì)桑黃多糖超聲波協(xié)同纖維素酶法提取的工藝優(yōu)化研究，在其單因素試驗(yàn)的基礎(chǔ)上，該試驗(yàn)選用L9（34）正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)（表3），設(shè)定4個(gè)因素，每個(gè)因素3個(gè)水平，每個(gè)處理3次重復(fù)。

稱取樣品10.00 g，參照表3正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)進(jìn)行多糖提取，以下操作步驟同“1.2.2.1”。

1.2.3? 桑黃菌絲多糖的單糖組成分析。樣品由上海微譜化工技術(shù)服務(wù)有限公司采用HPLC外標(biāo)法進(jìn)行測(cè)試分析。

1.2.4? 桑黃菌絲多糖抗氧化性分析。

取“1.2.2”中通過(guò)不同方法提取得到的桑黃菌絲多糖為供試樣品，充分混勻后在料液比1∶20、提取溫度80 ℃、提取時(shí)間2 h、提取2次的條件下處理桑黃菌絲多糖，然后濃縮蒸干得到桑黃菌絲多糖提取物，于-18 ℃保存?zhèn)溆?，用于桑黃菌絲多糖的抗氧化性分析。

1.2.4.1? 不同濃度桑黃菌絲多糖溶液的配制。準(zhǔn)確稱取桑黃菌絲多糖提取物1.0 g于100 mL容量瓶中定容，即得10 mg/mL 的母液，4 ℃保存。分別從母液中吸取0.05、0.10、0.15、0.20、0.25、0.50、0.75、1.00、1.25? mL于10? mL容量瓶中定容，即為濃度0.05、0.10、0.15、0.20、0.25、0.50、0.75、1.00、1.25 mg/mL 的樣品待測(cè)液，現(xiàn)配現(xiàn)用。

1.2.4.2? 不同濃度VC溶液的制備。準(zhǔn)確稱取VC標(biāo)準(zhǔn)品1.0 g于100 mL容量瓶中定容，即得10 mg/mL的VC標(biāo)準(zhǔn)母液，現(xiàn)配現(xiàn)用。分別吸取0.05、0.10、0.15、0.20、0.25、0.50、0.75、1.00、1.25 mL于10? mL容量瓶中定容，即為濃度0.05、0.10、0.15、0.20、0.25、0.50、0.75、1.00、1.25 mg/mL的VC標(biāo)準(zhǔn)溶液，現(xiàn)配現(xiàn)用。

1.2.4.3? 羥自由基清除率測(cè)定。

取試管先加2.0 mL硫酸亞鐵溶液（濃度為2 mmol/L）、2.0? mL過(guò)氧化氫溶液（濃度為6 mmol/L），搖勻后加入3.0? mL水楊酸（濃度為6 mmol/L），再充分搖勻，放于37 ℃水浴鍋中反應(yīng)15 min，取一支試管測(cè)量其吸光度記A0，分別向余下試管中依次加入0.6 mL樣品待測(cè)液（或同濃度的VC標(biāo)準(zhǔn)液，做對(duì)比試驗(yàn)）和0.4 mL雙蒸水，搖勻后37 ℃水浴15 min，在510 nm處測(cè)定吸光度Ab，重復(fù)3次試驗(yàn)，取平均值［11］。同時(shí)以2.0 mL雙蒸水代替過(guò)氧化氫溶液作空白對(duì)照，記Ac。按以下公式計(jì)算羥自由基的清除率（P）：

P=［1-（Ab-Ac）/A0］×100%

1.2.4.4? 超氧陰離子自由基清除率測(cè)定。

配制不同濃度的桑黃菌絲多糖樣品待測(cè)液，操作步驟參照“1.2.4.1”。分別吸取不同濃度待測(cè)液0.2 mL于盛有5.7 mL Tris-HCl緩沖溶液（pH=8.20，50 mmol/L）的試管中，在25 ℃水浴中靜置10 min，然后加入0.1 mL鄰苯三酚溶液（25 ℃，6 mmol/L），用漩渦混勻器迅速充分混勻，用酶標(biāo)儀測(cè)定反應(yīng)1 min時(shí)的吸光度A1，同時(shí)用雙蒸水代替樣品待測(cè)液作空白對(duì)照測(cè)吸光度A2，波長(zhǎng)為325 nm［12］。用等濃度的樣品待測(cè)液作參照測(cè)定吸光度A3，以扣除樣品本身的顏色對(duì)結(jié)果的干擾。按以下公式計(jì)算超氧陰離子自由基的清除率（P）：

P=［1-（A1-A3）/A2］×100%

1.2.4.5? 還原力測(cè)定。

按照“1.2.4.1”的步驟配制不同濃度的桑黃菌絲多糖待測(cè)液，分別吸取2 mL于刻度試管中，加入2 mL 磷酸緩沖液（pH為6.6）和2 mL鐵氰化鉀溶液（1%），充分混勻，在50 ℃下水浴20 min，加入2 mL三氯乙酸溶液（10%），混勻后取2 mL混合液，加入2 mL去離子水和0.4 mL三氯化鐵溶液（0.1%），靜置10 min，在700 nm下測(cè)定吸光度Ax；用蒸餾水代替樣品待測(cè)液作空白對(duì)照，測(cè)定其吸光度Ao；以質(zhì)量濃度為0.25 mg/mL的VC溶液的吸光度Ay為基準(zhǔn)，重復(fù)3次試驗(yàn)，取平均值［11］。按照以下公式計(jì)算還原力：

還原力=（Ax-Ao）/（Ay-Ao）×100%

2? 結(jié)果與分析

2.1? 不同提取方法桑黃菌絲多糖的含量比較

通過(guò)正交設(shè)計(jì)試驗(yàn)，分別得到不同方法提取桑黃菌絲體多糖的最佳工藝條件，在此條件下測(cè)定桑黃菌絲體的多糖得率并加以比較，結(jié)果見表4～6。

表4結(jié)果表明水浴輔助溶劑浸提法的最佳提取條件為料液比1∶15（g∶mL）、水浴溫度80 ℃、水浴時(shí)間2.5 h、提取次數(shù)2次，在此條件下做重復(fù)試驗(yàn)，桑黃菌絲多糖得率為（5.01±0.02）%。表5結(jié)果表明微波輔助提取法的最佳提取條件為料液比1∶20、微波提取時(shí)間15 min、微波功率550 W、提取次數(shù)2次，在此條件下做重復(fù)試驗(yàn)，桑黃菌絲多糖得率為（5.67±0.03）%。表6結(jié)果表明超聲波輔助酶法的最佳提取條件為料液比1∶20、超聲波提取時(shí)間40 min、超聲波功率300 W、加酶量0.15%，在此條件下做重復(fù)試驗(yàn)，桑黃菌絲多糖得率為（6.58±0.01）%。

2.2? 被測(cè)桑黃樣品菌絲多糖成分分析

通過(guò)HPLC外標(biāo)法分別對(duì)單糖標(biāo)準(zhǔn)品和桑黃菌絲多糖樣品進(jìn)行測(cè)試分析，結(jié)果如圖2所示。圖2a為12種單糖標(biāo)準(zhǔn)品呈現(xiàn)的12個(gè)主色譜峰，圖中顯示出峰時(shí)間按順序排列分別為甘露糖、氨基葡萄糖、核糖、鼠李糖、葡萄糖醛酸、半乳糖醛酸、氨基半乳糖、葡萄糖、半乳糖、木糖、阿拉伯糖、巖藻糖。圖2b顯示測(cè)試樣品中所含單糖的出峰時(shí)間，能準(zhǔn)確地測(cè)定桑黃菌絲多糖中單糖的組成情況。

2.3? 桑黃菌絲多糖抗氧化能力測(cè)定

2.3.1? 桑黃菌絲多糖對(duì)羥自由基的清除率。

由圖3可知，桑黃菌絲多糖對(duì)羥自由基的清除率隨濃度的增加而升高，濃度在0.05～0.50 mg/mL時(shí)羥自由基清除率上升較快，之后羥自由基清除率上升速度放緩，在1.25 mg/mL時(shí)羥自由基清除率達(dá)到31.95%。相比VC對(duì)照組，VC濃度在0.75 mg/mL時(shí)羥自由基清除率達(dá)到了99.64%，而桑黃菌絲多糖的羥自由基清除率為29.33%，桑黃菌絲多糖對(duì)羥基自由基清除效果并不是很明顯。

2.3.2? 桑黃菌絲多糖對(duì)超氧陰離子自由基的清除率。

由圖4可知，桑黃菌絲多糖對(duì)超氧陰離子的清除率都隨濃度的增加而升高，但升高的速度較緩。桑黃菌絲多糖的濃度在0.05～0.25 mg/mL時(shí)超氧陰離子清除率上升較快，之后超氧陰離子清除率上升速度有所減緩，在1.25 mg/mL時(shí)超氧陰離子清除率達(dá)到32.50%，但對(duì)比VC濃度在1.25 mg/mL時(shí)的清除率（97.54%），桑黃菌絲多糖對(duì)超氧陰離子清除效果明顯弱于VC。

2.3.3? 桑黃菌絲多糖的還原力。

由圖5可知，桑黃菌絲多糖的還原力隨濃度的增加而升高。桑黃菌絲多糖的濃度在0.05～0.50和1.00～1.25 mg/mL 時(shí)還原力的上升速度較快；濃度在0.50～1.00 mg/mL時(shí)還原力上升速度放緩，在1.25 mg/mL 時(shí)桑黃菌絲多糖的還原力達(dá)到37.03%，而相比VC濃度在0.50 mg/mL時(shí)還原力為98.27%，桑黃菌絲多糖的還原力效果略弱于VC。

3? 結(jié)論與討論

3.1? 不同提取方法桑黃菌絲多糖含量分析

選擇合適的多糖提取方法，能充分提高多糖的得率，對(duì)活性成分的高效獲得和保持有效有重要意義。多糖的提取方法有溶劑浸提法、超聲波提取法、微波提取法、酶法和超臨界萃取法［13］。目前，試驗(yàn)用得較多的是溶劑浸提法、超聲波提取法和微波提取法［14］。該研究通過(guò)不同的提取方法，選擇適合桑黃多糖的最佳提取方法，并測(cè)定桑黃菌絲體和菌液的多糖含量，為桑黃多糖的研究提供理論基礎(chǔ)。

竇茜茜等［15］通過(guò)熱水浸提法得到桑黃子實(shí)體多糖提取的最佳工藝條件：料液比1∶15、浸提時(shí)間8 h、浸提溫度100? ℃、浸提3次，得率為3.26%。徐衛(wèi)東等［16］利用響應(yīng)面優(yōu)化法對(duì)桑枝多糖提取條件進(jìn)行研究，得到最佳提取條件：料液比1∶20、提取溫度100 ℃、浸提時(shí)間2.5 h、提取2次，桑枝多糖得率為6.15%。李瑞雪等［7］在單因素試驗(yàn)的基礎(chǔ)上利用多因素正交試驗(yàn)對(duì)桑黃菌絲體中桑黃多糖的提取條件進(jìn)行研究，得到熱水浸提取桑黃多糖的最佳條件：料液比1∶14、提取溫度60 ℃、提取時(shí)間2.5 h、提取3次，多糖得率為4.97%。對(duì)比前人研究，該試驗(yàn)采用料液比1∶15、提取溫度80 ℃、提取時(shí)間2.5 h、提取2次對(duì)桑黃菌絲體進(jìn)行多糖提取，在此條件下桑黃菌絲多糖得率為（5.01±0.02）%。導(dǎo)致結(jié)果的差距可能是提取條件的不同以及桑黃品種之間多糖含量存在差異。

時(shí)東方等［9］以桑黃菌絲為原材料，確定了微波輔助提取法的最佳工藝，并通過(guò)研究表明微波輔助提取法在提取時(shí)間和提取率上優(yōu)于熱水浸提法。秦俊哲等［8］通過(guò)對(duì)桑黃子實(shí)體多糖提取的研究，得出提取多糖的最佳工藝條件：微波處理時(shí)間5.1 min、微波功率540 W、提取2次，得率為4.18%。對(duì)比前人研究，該試驗(yàn)微波輔助提取法的最佳提取條件為：料液比1∶20、微波提取時(shí)間15 min、微波功率550 W、提取次數(shù)2次，在此條件下桑黃菌絲多糖得率為（5.67±0.03）%，從試驗(yàn)結(jié)果得知微波輔助法在提取時(shí)間上有明顯優(yōu)勢(shì)，且提取率較熱水浸提法更優(yōu)，這與時(shí)東方等［9］的觀點(diǎn)相同。

長(zhǎng)城等［17］通過(guò)4種方式對(duì)桑黃子實(shí)體中多糖工藝的提取進(jìn)行研究，得出超聲波提取法的最佳條件：超聲時(shí)間25 min、液料比400∶1（mL∶g）、超聲功率60 kHz。傅海慶等［18］研究得到桑黃菌絲多糖提取的最佳工藝條件：超聲波功率210 W、提取時(shí)間60 min、料液比1∶50（g∶mL），提取率為12.78%。對(duì)比前人研究，該試驗(yàn)超聲波輔助酶法的最佳提取條件為料液比1∶20、超聲波提取時(shí)間40 min、超聲波功率300 W、加酶量0.15%，在此條件下做重復(fù)試驗(yàn)，桑黃菌絲多糖得率為（6.58±0.01）%。導(dǎo)致結(jié)果的差距可能是提取條件的不同以及桑黃品種之間多糖含量存在差異。

3.2? 桑黃樣品菌絲多糖成分分析

許謙［19］以桑黃菌絲體為材料，利用硅膠薄層分析的方法分析桑黃多糖的主要組成成分，試驗(yàn)得出桑黃菌絲體多糖的單糖組成初步確定有D-葡萄糖、D-半乳糖、L-阿拉伯糖和D-乳糖。魏靜等［20］通過(guò)對(duì)桑黃菌絲體多糖（P1B）進(jìn)行結(jié)構(gòu)測(cè)定，結(jié)果表明P1B為單一組分，分子量為27 365 D，主要由鼠李糖、阿拉伯糖、葡萄糖3種已知單糖和甲基-α-D-吡喃甘露糖苷一種推測(cè)成分組成的雜多糖。對(duì)比前人研究，該試驗(yàn)結(jié)果表明桑黃菌絲體多糖主要單糖成分有甘露糖、氨基葡萄糖、核糖、鼠李糖、葡萄糖醛酸、半乳糖醛酸、氨基半乳糖、葡萄糖、半乳糖、木糖、阿拉伯糖、巖藻糖，單糖成分基本一致。

3.3? 桑黃菌絲多糖抗氧化能力分析

該試驗(yàn)結(jié)果表明桑黃菌絲多糖均有一定的抗氧化能力，但相較VC，桑黃菌絲多糖的抗氧化能力效果略弱。應(yīng)瑞峰等［21］通過(guò)比較桑黃子實(shí)體與不同階段桑黃菌絲多糖的抗氧化活性，表明桑黃菌絲體多糖活性會(huì)因不同生長(zhǎng)期而存在差異。因此，在今后的研究中，遵循桑黃菌絲多糖的變化規(guī)律，深入研究桑黃菌絲的培育復(fù)壯，培育出活性更強(qiáng)的桑黃菌絲，為桑黃發(fā)展提供可靠的理論依據(jù)。

參考文獻(xiàn)

［1］郭照輝，劉紅.桑黃菌的特性及人工栽培技術(shù)［J］.南方園藝，2013，24（4）：54-56.

［2］榮丹，唐夢(mèng)瑜，么越，等. 桑黃活性物質(zhì)提取分離及藥理作用研究進(jìn)展［J］.中國(guó)食用菌，2022，41（6）：1-6.

［3］圣明明，王宏媛，馮岳琴，等.藥用真菌桑黃研究進(jìn)展［J］.輕工科技，2016，32（12）：13-15.

［4］吳聲華，戴玉成.藥用真菌桑黃的種類解析［J］.菌物學(xué)報(bào)，2020，39（5）：781-794.

［5］劉惠知，邵晨霞，吳勝蓮，等.桑黃菌的藥理及產(chǎn)品開發(fā)研究進(jìn)展［J］.食用菌，2013，35（5）：1-3.

［6］中華人民共和國(guó)國(guó)家質(zhì)量監(jiān)督檢驗(yàn)檢疫總局.出口植物源食品中粗多糖的測(cè)定 苯酚-硫酸法：SN/T 4260—2015［S］.北京：中國(guó)標(biāo)準(zhǔn)出版社，2016：1-4.

［7］李瑞雪，王鈺婷，夏家鳳，等.桑黃菌絲體中多糖提取工藝優(yōu)化及其體外抗氧化活性分析［J］.中國(guó)農(nóng)學(xué)通報(bào)，2019，35（29）：143-150.

［8］秦俊哲，任金玫，殷紅.響應(yīng)面法優(yōu)化微波輔助提取桑黃子實(shí)體多糖的工藝研究［J］.陜西科技大學(xué)學(xué)報(bào)（自然科學(xué)版），2014，32（4）：89-92，96.

［9］時(shí)東方，周勇，李雪，等.桑黃菌絲體粗多糖的提取方法研究［J］.菌物研究，2008，6（4）：226-230，233.

［10］程偉，秦俊哲，杜軍國(guó)，等.桑黃多糖超聲波協(xié)同纖維素酶法提取的工藝優(yōu)化［J］.現(xiàn)代食品科技，2012，28（6）：662-666.

［11］彭常安，李媛媛.葛花總黃酮的抗氧化作用研究［J］.安徽師范大學(xué)學(xué)報(bào)（自然科學(xué)版），2012，35（2）：163-166.

［12］王勇，慶偉霞，楊玉霞，等.分光光度法測(cè)定二氫黃酮化合物對(duì)超氧陰離子自由基的清除作用［J］.化學(xué)研究，2013，24（5）：441-443.

［13］張洋洋，呂國(guó)英，方立林，等.桑黃主要活性物質(zhì)的提取方法及藥理活性研究進(jìn)展［J］.食藥用菌，2021，29（5）：404-408.

［14］于秋菊. 桑黃多糖提取、分離、結(jié)構(gòu)解析及藥理作用研究進(jìn)展［J］.山東化工，2022，51（13）：68-69，72.

［15］竇茜茜，丁建新，張東娜，等.桑黃多糖提取工藝研究［J］.解放軍藥學(xué)學(xué)報(bào)，2007，23（6）：423-426.

［16］徐衛(wèi)東，王佩香，歐陽(yáng)臻，等.響應(yīng)曲面法優(yōu)化桑枝多糖提取工藝［J］.中國(guó)藥房，2011，22（43）：4064-4067.

［17］長(zhǎng)城，趙俊華，于文杰，等.楊樹桑黃多糖提取工藝與測(cè)定［J］.化學(xué)試劑，2021，43（7）：973-978.

［18］傅海慶，李吟，傅華英.超聲波法提取桑黃菌絲體多糖的研究［J］.中國(guó)農(nóng)學(xué)通報(bào)，2012，28（36）：282-286.

［19］許謙.桑黃菌絲多糖的提取及多糖成分分析［J］.湖北農(nóng)業(yè)科學(xué)，2014，53（18）：4405-4407，4410.

［20］魏靜，李金鳳，丁興紅，等.桑黃菌絲體多糖的分離純化及其結(jié)構(gòu)表征［J］.時(shí)珍國(guó)醫(yī)國(guó)藥，2017，28（3）：587-590.

［21］應(yīng)瑞峰，黃梅桂，王耀松，等.桑黃子實(shí)體與桑黃菌絲多糖抗氧化活性研究［J］.食品研究與開發(fā)，2017，38（21）：1-5.