李曉亞,吳甜甜,王洪玲,葛文沛,劉娜
(河南工業(yè)大學(xué)生物工程學(xué)院,河南鄭州 450001)
近年來,低熱量、低糖食品逐漸成為消費趨勢。攝入的糖分過高會在體內(nèi)轉(zhuǎn)化為脂肪,導(dǎo)致發(fā)胖,甚至引起高血脂、高血壓、糖尿病等疾病。因此,肥胖、糖尿病和齲齒等問題使消費者對蔗糖替代品的需求升高。有研究表明,低糖、低熱量的飲食方式不僅能改善高血脂癥狀,降低機體患糖尿病、心血管疾病的風(fēng)險[1],還有助于維持長時間的飽腹感和持續(xù)的能量釋放,從而進一步對身體和精神狀況產(chǎn)生積極影響,這使功能性甜味劑得到廣泛關(guān)注[2]。異麥芽酮糖(6-O-α-D-吡喃葡糖基-D-呋喃果糖)又名帕拉金糖,是蔗糖的一種同分異構(gòu)體,1957年由威登·哈根和洛倫茲首次發(fā)現(xiàn)[3-4],除具有與蔗糖類似的物理性質(zhì)和口感外,還有低熱量、不致齲、不吸濕、耐酸解的特點[5],其甜度約為蔗糖的50%,適合作為蔗糖的替代品[6]。已有國家將異麥芽酮糖認(rèn)證為公認(rèn)安全級食品[7],可防止脂肪過量積累[8],食用后不會引起血糖與胰島素的迅速上升,有助于糖尿病的防治[9-10]。異麥芽酮糖作為功能型甜味劑,越來越廣泛地應(yīng)用于食品與醫(yī)療行業(yè)。
異麥芽酮糖天然存在于甜菜、糖蜜和糖漿等食物中,但其含量微乎其微,提取困難,無法滿足市場的需求[11]。目前,異麥芽酮糖的主要來源是以微生物轉(zhuǎn)化法為主。大黃歐文氏菌(Erwiniarhubarb)DXW-62 中的蔗糖異構(gòu)酶(α-葡糖基轉(zhuǎn)移酶,sucrose isomerase,簡稱SIase,EC 5.4.99.11)可以將蔗糖異構(gòu)為異麥芽酮糖,但該酶為胞內(nèi)酶[8,12]。改變DXW-62 的細胞膜通透性有利于蔗糖與蔗糖異構(gòu)酶的接觸,從而提高蔗糖異構(gòu)酶的催化效率。超聲波可以提高細胞膜的通透性,經(jīng)超聲波作用后的細胞膜對鉀和鈣離子的通透性會發(fā)生較大的改變[13]。從而增強生物膜的彌散性,促進物質(zhì)交換,加速代謝,改善組織營養(yǎng)。吐溫-80 是一種親水性的表面活性劑,具有很強的破壞細胞膜的作用,也是一種油/水型乳化劑,可用作穩(wěn)定劑、擴散劑、抗靜電劑、纖維潤滑劑等[14]。丙酮和甲苯可使細胞膜的磷脂結(jié)構(gòu)受到破壞,從而改變細胞膜的透過性,再經(jīng)提取可使膜結(jié)合酶或胞內(nèi)酶等釋放到胞外。因此,本研究利用超聲波、吐溫-80、丙酮和甲苯等處理方法改變大黃歐文氏菌DXW-62 細胞膜通透性,加快蔗糖異構(gòu)酶的催化效率,進而提高異麥芽酮糖產(chǎn)率,以期為異麥芽酮糖的工業(yè)化生產(chǎn)提供參考。
大黃歐文氏菌DXW-62:河南工業(yè)大學(xué)生物工程學(xué)院實驗室保存。
固體培養(yǎng)基:蛋白胨10 g/L,牛肉膏3 g/L,氯化鈉5 g/L,瓊脂15 g/L。
種子培養(yǎng)基:蛋白胨10 g/L,牛肉膏3 g/L,氯化鈉5 g/L,蔗糖40 g/L。
液體培養(yǎng)基[15]:蛋白胨5 g/L,牛肉膏3 g/L,磷酸氫二鈉3 g/L,蔗糖80 g/L。
以上培養(yǎng)基均在115 ℃,30 min 條件下進行滅菌處理。
異麥芽酮糖標(biāo)準(zhǔn)品:北京沃凱生物科技有限公司;吐溫-80:天津市光復(fù)精細化工研究所;乙腈(色譜級)、丙酮、甲苯、磷酸二氫鈉、檸檬酸(均為分析純):天津市科密歐化學(xué)試劑有限公司;磷酸鹽緩沖液(phosphate buffered saline,PBS)、碘化丙啶(100 μg/mL):武漢塞維爾生物科技有限公司;蔗糖、氯化鈉(均為分析純)、蛋白胨(生物試劑)、牛肉膏(生物試劑)、瓊脂(生化試劑):北京奧博星生物技術(shù)有限責(zé)任公司。
BXM-30R 立式壓力蒸汽滅菌器:上海博迅實業(yè)有限公司醫(yī)療設(shè)備廠;KYC-100B 恒溫培養(yǎng)搖床:上海新苗醫(yī)療器械制造有限公司;LC-2030C 高效液相色譜儀(檢測器為示差折光檢測器):日本島津公司;HWQ-280 恒溫培養(yǎng)箱:寧波市科技園區(qū)新江南儀器有限公司;DZKW-S-4 電熱恒溫水浴鍋:北京市永光明醫(yī)療儀器有限公司;UV-3100PC 紫外可見分光光度計:上海美普達儀器有限公司;Revolve FL 熒光顯微鏡:美國Echo Laboratories 公司。
1.4.1 菌株發(fā)酵液中生長曲線的建立
比濁法測菌液OD600:將種子培養(yǎng)基按5%的接種量接于發(fā)酵培養(yǎng)基,6.0~16.0 h 定時取樣,每次取樣取3 個平行。加入10 mL 濃度為70%蔗糖溶液中,混勻并在40 ℃、180 r/min 搖床中反應(yīng)2.0 h,分別以培養(yǎng)時間為橫坐標(biāo),OD600和異麥芽酮糖產(chǎn)率為縱坐標(biāo),繪制菌株生長曲線[16]。
1.4.2 異麥芽酮糖標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制
將異麥芽酮糖配制成0.25、0.50、0.75、1.00、1.25 mg/mL 的標(biāo)準(zhǔn)液,過0.22 μm 的水系濾膜,通過高效液相色譜(high performance liquid chromatography,HPLC)法測定其峰面積,通過各濃度對應(yīng)的峰面積繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線[17]。檢測條件:ZORBAX 碳水化合物分析柱(4.6 mm×250 mm,5 μm);流動相為乙腈∶水=80∶20(體積比),流速1.0 mL/min,柱溫30 ℃,進樣量10 μL,運行時間20 min。
1.4.3 細胞膜的通透性處理
將大黃歐文氏菌DXW-62 接種到固體培養(yǎng)基中過夜,取DXW-62 接種于種子培養(yǎng)基中,30 ℃,180 r/min中振蕩反應(yīng)10.0 h 至對數(shù)期(OD600為0.60±0.05)。按5% 的接種量接入100 mL 液體培養(yǎng)基,反應(yīng)10.0 h 得到發(fā)酵液。
超聲波處理:將上述發(fā)酵液繼續(xù)反應(yīng)2.0 h 后置于冰水浴中進行超聲波處理。超聲波的作用參數(shù):變幅桿6,頻率25 kHz,功率分別為45、90、135、180、225、270 W,時間1 min。取超聲波處理后的發(fā)酵液于4 ℃、9 000×g條件下離心10 min,收集菌體,用去離子水重懸清洗3 次,加入10 mL 濃度為70% 蔗糖溶液中,混勻并在40 ℃、180 r/min 搖床中反應(yīng),每隔0.5 h 取1 mL 發(fā)酵液于沸水浴5 min 滅酶以終止反應(yīng)。反應(yīng)結(jié)束后,以相同條件離心反應(yīng)混合物,上清液稀釋5 倍后經(jīng)0.22 μm 濾膜過濾,采用HPLC 法測定異麥芽酮糖含量[18],以未經(jīng)超聲波處理的發(fā)酵液為空白對照組。
吐溫-80 處理:向發(fā)酵液中加入體積分?jǐn)?shù)分別為0.5%、1.0%、2.0%、3.0%、4.0%、5.0%和6.0%的滅菌吐溫-80 后繼續(xù)反應(yīng)2.0 h,后續(xù)測定異麥芽酮糖含量的操作同上。
丙酮或甲苯處理:向發(fā)酵液中分別加入丙酮和甲苯,丙酮或甲苯在發(fā)酵液中的體積比分?jǐn)?shù)分別為0.5%、1.0%、2.0%、3.0% 和4.0%,繼續(xù)反應(yīng)2.0 h,后續(xù)測定異麥芽酮糖含量的操作同上。
超聲波和吐溫-80 共同處理:以90 W 超聲波和體積分?jǐn)?shù)為5.0% 的吐溫-80 共同處理DXW-62,后續(xù)測定異麥芽酮糖含量的操作同上。異麥芽酮糖產(chǎn)率(y,%)的計算公式如下。
y=a/b× 100
式中:a為測得的反應(yīng)體系中異麥芽酮糖含量,g;b為反應(yīng)體系蔗糖質(zhì)量,g。
1.4.4 細胞膜通透性的測定
檢測細胞膜通透性的方法用碘化丙啶(propidium iodide,PI)染色法[19-20]。取1 mL 菌液,在4 ℃、8 000×g條件下離心10 min 去上清液,用PBS 清洗2 次后放入孔板。將100 μg/mL 的PI 染液用PBS 稀釋20 倍,配制成終濃度為5 μg/mL 的PI 染色工作液,向孔板內(nèi)加入適量PI 染色液覆蓋細胞,室溫避光孵育10 min。孵育后棄去染色液,加入PBS 覆蓋細胞,用熒光顯微鏡觀察細胞是否呈現(xiàn)紅色熒光。PI 不能穿透完整細胞膜,死細胞或凋亡晚期細胞的核呈紅色熒光。
所有測定均設(shè)計3 次平行。使用Origin 2021 軟件對數(shù)據(jù)進行分析作圖。
根據(jù)0.25、0.50、0.75、1.00、1.25 mg/mL 異麥芽酮糖濃度和所對應(yīng)的峰面積繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,如圖1所示,線性方程為y=14 883x- 5 998.9,R2=0.999 4,相關(guān)性良好。
圖1 異麥芽酮糖標(biāo)準(zhǔn)曲線Fig.1 Standard curve of isomaltulose
在6.0~16.0 h 內(nèi),定時取樣檢測菌體濃度和異麥芽酮糖產(chǎn)率,結(jié)果見圖2。
圖2 發(fā)酵液的菌體濃度及異麥芽酮糖產(chǎn)率Fig.2 Cell concentration and isomaltulose yield of fermentation broth
由圖2 可知,在6.0~12.0 h 內(nèi),異麥芽酮糖產(chǎn)率和菌體濃度隨培養(yǎng)時間的延長而上升,在12.0 h 時異麥芽酮糖產(chǎn)率已達到最高,為53.76%;超過12.0 h 后異麥芽酮糖產(chǎn)率逐漸下降,菌體濃度隨著培養(yǎng)時間的延長增加緩慢。這說明隨著培養(yǎng)時間的延長,菌株迅速繁殖,異麥芽酮糖產(chǎn)率逐漸上升,但是培養(yǎng)時間過長,培養(yǎng)基內(nèi)的營養(yǎng)物質(zhì)被大量消耗,菌體生長繁殖受限[15],異麥芽酮糖產(chǎn)率下降,在培養(yǎng)16.0 h 時異麥芽酮糖產(chǎn)率下降至45.23%。
由于吐溫-80、丙酮和甲苯是有機試劑,需要與菌體接觸反應(yīng)2.0 h 才能測定異麥芽酮糖產(chǎn)率。綜上所述,在培養(yǎng)12.0 h 時異麥芽酮糖產(chǎn)率最高,使用超聲波處理菌體;在培養(yǎng)10.0 h 時,菌株生長速度最快,分別添加吐溫-80、丙酮和甲苯到培養(yǎng)基中。
不同超聲功率對異麥芽酮糖產(chǎn)率的影響見圖3。
圖3 不同超聲功率對異麥芽酮糖產(chǎn)率的影響Fig.3 Effect of ultrasonic waves with different power on isomaltolose yield
由圖3 可知,與對照組相比,采用不同功率的超聲波處理條件均可提高異麥芽酮糖產(chǎn)率。當(dāng)時間為2.0 h,對照組的異麥芽酮糖產(chǎn)率為54.47%,同時超聲功率為45 W 時,異麥芽酮糖產(chǎn)率為65.03%;超聲功率為90 W 時,異麥芽酮糖產(chǎn)率為72.30%。超聲功率為270 W 時,異麥芽酮糖產(chǎn)率為61.07%,比對照組高12.12%。這是由于低功率超聲波可以使細胞短時局部破裂,改變細胞膜的通透性,使胞內(nèi)物質(zhì)釋放或胞外物質(zhì)進入細胞內(nèi),從而使異麥芽酮糖產(chǎn)率上升。但是隨著超聲功率的增大,對細胞破壞程度加大,使胞內(nèi)物質(zhì)釋放導(dǎo)致細胞失活,戴傳云等[21]也驗證了低功率超聲波可以導(dǎo)致細胞的非熱生物效應(yīng),使細胞表面瞬間造成微傷,改變細胞膜通透性,從而使代謝產(chǎn)物或營養(yǎng)物質(zhì)快速通過細胞膜,提高代謝產(chǎn)物的產(chǎn)率。
因此,最佳的處理條件為超聲功率90 W,相對于對照組,異麥芽酮糖產(chǎn)率達到80.0% 以上的時間由4.0 h 縮短為3.0 h。
不同濃度的吐溫-80 對異麥芽酮糖產(chǎn)率的影響見圖4。
圖4 不同濃度的吐溫-80 對異麥芽酮糖產(chǎn)率的影響Fig.4 Effect of tween-80 with different concentrations on isomaltolose yield
由圖4 可知,只有濃度為6.0%的吐溫-80 處理過后,異麥芽酮糖產(chǎn)率低于對照組。當(dāng)時間為2.5 h 時,對照組的異麥芽酮糖產(chǎn)率為60.53%;濃度為2.0% 的吐溫-80 反應(yīng)2.5 h 時異麥芽酮糖的產(chǎn)率為63.65%,與對照組相比高5.15%;濃度為5.0% 的吐溫-80 反應(yīng)2.5 h 時異麥芽酮糖的產(chǎn)率為83.14%,與對照組相比高37.35%;濃度為6.0%的吐溫-80 反應(yīng)2.5 h 時,異麥芽酮糖產(chǎn)率低于對照組,只有60.29%??梢院侠硗茰y低濃度的吐溫-80 對細胞產(chǎn)酶有明顯的促進作用,濃度過高時對細胞產(chǎn)酶有明顯的抑制作用。原因是吐溫-80為非離子型表面活性劑,可以將脂類溶解來改變細胞膜通透性[22],能夠有效提高異麥芽酮糖產(chǎn)率。綜上,選用濃度為5.0%的吐溫-80 作為處理條件。
不同濃度的丙酮對異麥芽酮糖產(chǎn)率的影響見圖5。
圖5 不同濃度的丙酮對異麥芽酮糖產(chǎn)率的影響Fig.5 Effect of acetone with different concentrations on isomaltolose yield
如圖5所示,所有濃度的丙酮處理均可使大黃歐文氏菌DXW-62 的異麥芽酮糖產(chǎn)率提高。當(dāng)時間為3.5 h 時,對照組的異麥芽酮糖產(chǎn)率為76.90%;添加濃度為0.5% 的丙酮反應(yīng)3.5 h 時異麥芽酮糖產(chǎn)率為81.01%,比對照組高5.34%。添加濃度為2.0%的丙酮反應(yīng)3.5 h 時異麥芽酮糖產(chǎn)率為83.04%,比對照組高7.98%。添加濃度為4.0%的丙酮反應(yīng)3.5 h 時異麥芽酮糖產(chǎn)率為81.02%,比對照組高5.36%。這是由于丙酮可以破壞脂質(zhì)雙層結(jié)構(gòu),使細胞內(nèi)物質(zhì)暴露在外部環(huán)境中,所以添加少量的丙酮可以增大細胞膜通透性[23],提高異麥芽酮糖產(chǎn)率。但是與功率為90 W 超聲波和添加濃度為5.0% 的吐溫-80 處理相比,濃度為2.0%的丙酮對異麥芽酮糖產(chǎn)率提高較少。綜上,應(yīng)用濃度為2.0%的丙酮處理大黃歐文氏菌DXW-62。
不同濃度的甲苯對異麥芽酮糖產(chǎn)率的影響見圖6。
圖6 不同濃度的甲苯對異麥芽酮糖產(chǎn)率的影響Fig.6 Effect of toluene with different concentrations on isomaltulose yield
由圖6 可知,不同濃度的甲苯對異麥芽酮糖產(chǎn)率有很大影響。在3.5 h 時對照組的異麥芽酮糖產(chǎn)率為76.90%;添加濃度為0.5% 的甲苯反應(yīng)3.5 h 時,異麥芽酮糖產(chǎn)率為77.44%;添加濃度為1.0% 的甲苯反應(yīng)3.5 h 時,異麥芽酮糖產(chǎn)率為77.52%;添加濃度為2.0%的甲苯反應(yīng)3.5 h 時,異麥芽酮糖產(chǎn)率為72.41%,此時產(chǎn)率已經(jīng)比對照組低,繼續(xù)用濃度為3.0%和4.0%甲苯處理,異麥芽酮糖產(chǎn)率相比于對照組越來越低。由此可知低濃度甲苯處理對菌體細胞影響較小,能夠小幅度提高異麥芽酮糖產(chǎn)率,而高濃度甲苯能夠溶解大黃歐文氏菌DXW-62 細胞膜,導(dǎo)致細胞膜破損使細胞失活,所以異麥芽酮糖產(chǎn)率下降,劉曉艷等[14]的研究也表明了甲苯對細胞膜的損傷較大。綜上所述,添加濃度為1.0%的甲苯作為處理條件最佳。
90 W 功率的超聲波和濃度為5.0% 的吐溫-80 共同處理大黃歐文氏菌DXW-62,結(jié)果如圖7所示。
圖7 超聲波和吐溫-80 共同作用對異麥芽酮糖產(chǎn)率的影響Fig.7 Effect of ultrasound wave and tween-80 on isomaltulose yield
圖7 結(jié)果表明,經(jīng)過超聲波與吐溫-80 的共同作用后,并未提高異麥芽酮糖產(chǎn)率,產(chǎn)率最大為63.75%,此時對照組麥芽酮糖產(chǎn)率為82.99%,試驗組與對照組相比低23.18%。這是因為采用超聲波和吐溫-80 共同處理對細胞的破碎程度更大,導(dǎo)致細胞失活。經(jīng)過超聲波和吐溫-80 共同處理后的細胞破損程度太大,從而使細胞失活,導(dǎo)致異麥芽酮糖產(chǎn)率降低。
PI 染色結(jié)果如圖8所示。
圖8 PI 染色法的熒光顯微鏡觀察結(jié)果Fig.8 Observation results of fluorescence microscope by PI staining method
由圖8 可知,對照組極少細胞被PI 染色;濃度為5.0% 的吐溫-80 處理后細胞顯紅色熒光細胞數(shù)量比90 W 功率超聲波處理后的數(shù)量多;然后吐溫-80 和超聲波共同作用下,顯紅色熒光細胞數(shù)量明顯多于其余單因素處理。
顯紅色熒光細胞數(shù)量越多,細胞膜通透性越強[24]。試驗結(jié)果表明細胞膜通透性在一定程度上可以提高異麥芽酮糖產(chǎn)率,但是如果細胞膜通透性越大,那么細胞破碎就越多,這樣反而會使異麥芽酮糖產(chǎn)率下降。
本文通過研究不同的處理方法對大黃歐文氏菌DXW-62 的細胞膜通透性的改變,探究其對異麥芽酮糖產(chǎn)率的影響。結(jié)果表明,使用功率為90 W 的超聲波處理后,反應(yīng)2.0 h 時和其他功率的超聲波相比,異麥芽酮糖產(chǎn)率最高為72.30%,高于對照組(54.47%);利用濃度為5.0% 的吐溫-80 處理,繼續(xù)反應(yīng)2.5 h 后異麥芽酮糖產(chǎn)率相比其他濃度的吐溫-80 最高,為83.14%;在超聲波和吐溫-80 共同處理下,比對照組的異麥芽酮糖產(chǎn)率下降了23.18%,通過碘化丙啶染色觀察可知顯紅色熒光細胞數(shù)量最多。