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        青花椒總生物堿對(duì)金黃色葡萄球菌抑菌活性研究

        2023-12-30 15:59:42張文艷李俊杰艾玲松李茂東趙仲霞
        工業(yè)微生物 2023年6期
        關(guān)鍵詞:生物堿金黃色花椒

        張文艷,李俊杰,艾玲松,李茂東,趙仲霞,師 睿*

        1.昭通學(xué)院化學(xué)化工學(xué)院,云南 昭通 657000;2.云南三鑫職業(yè)技術(shù)學(xué)院醫(yī)藥健康學(xué)院,云南 文山 663000

        天然防腐劑具有良好的廣譜抑菌性,且安全無(wú)毒、無(wú)味,是理想的食品防腐劑的必要條件[1]?;ń分械狞S酮[2]、揮發(fā)油和生物堿類(lèi)[3]等多種活性物質(zhì)能有效抑制食品中常見(jiàn)微生物的生長(zhǎng)與繁殖。本文擬對(duì)昭通金江青花椒總生物堿的體外抑菌活性進(jìn)行研究,以期為新型天然防腐劑的開(kāi)發(fā)提供實(shí)驗(yàn)依據(jù),也為金江青花椒的精深加工提供理論依據(jù),共同助力金江青花椒產(chǎn)地脫貧攻堅(jiān)。

        1 材料與方法

        1.1 試劑與儀器

        青花椒:昭通市魯?shù)榭h花椒,烘干至恒重,粉碎后過(guò)0.250 mm 孔徑篩,于干燥器中避光保存;營(yíng)養(yǎng)肉湯培養(yǎng)基、營(yíng)養(yǎng)瓊脂固體培養(yǎng)基、PBS 緩沖液,Solarbio;金黃色葡萄球菌顯色培養(yǎng)基,海博生物;ATP 含量測(cè)定試劑盒,南京建成生物工程研究所;TD-400 臺(tái)式低速自動(dòng)平衡離心機(jī),上海佑科儀器儀表有限公司;DHP-9082 電熱恒溫培養(yǎng)箱,上海一恒科學(xué)儀器有限公司;P1000 型移液槍?zhuān)簖埮d創(chuàng)實(shí)驗(yàn)儀器(北京)股份公司;PT-3502 C 全波長(zhǎng)酶標(biāo)儀,北京普天新橋技術(shù)有限公司。

        1.2 實(shí)驗(yàn)方法

        1.2.1 青花椒總生物堿的提取制備

        參照張文艷[4]、石雪萍[5]、鄭丹等[6]的酸性染料比色法提取花椒生物堿。將青花椒生物堿提取后濃縮成浸膏,質(zhì)量濃度配置為800 mg/mL,過(guò)濾除菌后置于-20 ℃冰箱中保存?zhèn)溆谩?/p>

        1.2.2 菌種的活化及菌懸液的制備

        在無(wú)菌環(huán)境下,將凍存的金黃色葡萄球菌S.aureus 接種到營(yíng)養(yǎng)肉湯培養(yǎng)基中,在37 ℃,150 r/min 的條件下活化3 次,直至達(dá)到最佳生長(zhǎng)狀態(tài),然后備用。參考張可鑫等[7]的方法,采用二倍稀釋法將S.aureus 制成108 CFU/mL 的菌懸液備用,并進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。

        1.2.3 濾紙片法測(cè)定抑菌圈直徑

        取1 mL 菌懸液涂于營(yíng)養(yǎng)瓊脂固體培養(yǎng)基后將6 mm 濾紙片按梅花形貼在培養(yǎng)基表面,使濾紙片和培養(yǎng)基表面完全接觸。吸取15~20 uL 青花椒總生物堿提取液滴在濾紙片表面,對(duì)照組為無(wú)菌蒸餾水,每組三個(gè)平行。在30 ℃的條件下放置24 h 后取出觀察,采用十字交叉法測(cè)量抑菌圈直徑,求其平均值。藥敏試驗(yàn)判定標(biāo)準(zhǔn)[8]:抑菌圈直徑≥20 mm 為高敏,15 mm≤抑菌圈直徑<20 mm 為中敏,10 mm≤抑菌圈直徑<15 mm 為低敏,10 mm 以下為不敏感。

        1.2.4 最小抑菌濃度(MIC)的測(cè)定

        采用二倍稀釋法,以800 mg/mL 的青花椒提取物為母液,S.aureus 菌懸液菌液為稀釋液,稀釋青花椒提取物,使青花椒提取物的最終質(zhì)量濃度分別為6.25、12.5、25、50、100 mg/mL。因培養(yǎng)基和青花椒提取物均具有一定的吸光性,設(shè)置以下組別:空白對(duì)照為培養(yǎng)基,陰性對(duì)照為不加藥物的菌液,藥物對(duì)照組為無(wú)菌水加入等濃度的提取物,所有組別均設(shè)置三個(gè)平行組,于30 ℃條件下培養(yǎng)24 h 后,用酶標(biāo)儀測(cè)定600 nm 波長(zhǎng)處的吸光度。

        1.2.5 生長(zhǎng)抑制曲線的測(cè)定

        參考1.2.4 的方法,使藥物終濃度為1/8×MIC和1/4×MIC,于30 ℃條件下培養(yǎng)24 h,每隔2 h 在600 nm 下檢測(cè)其吸光值,并繪制其生長(zhǎng)抑制曲線。

        1.2.6 ATP 含量的測(cè)定

        將青花椒總生物堿按1×MIC 的比例加入對(duì)數(shù)期的金黃色葡萄球菌菌懸液培養(yǎng)基中。以無(wú)菌水作空白對(duì)照,將菌液和培養(yǎng)基按1∶1 比例混勻后作為陽(yáng)性對(duì)照。設(shè)定取樣時(shí)間間隔為1 h[9],將取出的樣品在6 000 r/min 下離心10 min,用PBS 洗滌并重懸菌體三次,接著,在300 W,間隔1.1 s 的條件下破碎細(xì)胞,隨后于8 000 r/min 冷凍離心10 min,吸取上清液,最后,參照ATP 測(cè)試盒的測(cè)定方法[10]檢測(cè)樣品中ATP 的含量。

        1.2.7 青花椒總生物堿對(duì)S.aureus 抑菌穩(wěn)定性的研究

        以S.aureus 為指示菌,使用青花椒總生物堿質(zhì)量濃度為800 mg/mL,進(jìn)行三次平行實(shí)驗(yàn)。參考1.2.3 的方法,檢測(cè)在不同處理?xiàng)l件下青花椒總生物堿對(duì)S.aureus 抑菌活性的影響。

        1.2.7.1 溫度對(duì)青花椒總生物堿抑菌穩(wěn)定性的影響

        參考羅曉東等[11]的方法,實(shí)驗(yàn)組把青花椒總生物堿分別放在以下溫度水浴30 min:40、50、60、70、80、90、100、121 ℃,對(duì)照組為30 ℃,每組三個(gè)平行。

        1.2.7.2 金屬離子對(duì)青花椒總生物堿抑菌穩(wěn)定性的影響

        參考宋姍姍等[12]的研究方法,實(shí)驗(yàn)組將青花椒總生物堿分別浸泡在0.1 mol/L-的NaCl、KCl 和CaCl2溶液中3 h 后進(jìn)行抑菌圈實(shí)驗(yàn),對(duì)照組則使用未經(jīng)處理的青花椒總生物堿。

        1.2.7.3 pH 對(duì)青花椒總生物堿抑菌穩(wěn)定性的影響

        參考原江鋒等[13]的方法,使用1 mol/L HCl 和1 mol/L NaOH 溶液調(diào)節(jié)pH。實(shí)驗(yàn)組將青花椒總生物堿分別調(diào)節(jié)為以下pH:4.0、5.0、6.0、7.0、8.0、9.0、10.0;陽(yáng)性對(duì)照為未做處理的青花椒總生物堿;空白對(duì)照為1 mol/L HCl 和1 mol/L NaOH 溶液。

        1.2.7.4 紫外線對(duì)青花椒總生物堿抑菌穩(wěn)定性的影響

        實(shí)驗(yàn)組用30 W 紫外燈分別照射10、20、30、40、50、60、70 min 青花椒總生物堿,對(duì)照組為未做處理的青花椒總生物堿。

        1.3 數(shù)據(jù)分析

        實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)采用Excel 2016、SPSS 26 統(tǒng)計(jì)軟件和Graphpad Prism 6 軟件進(jìn)行處理與分析,結(jié)果以(±s)表示。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 抑菌圈直徑測(cè)定

        由表1,圖1 可知,800 mg/mL 的青花椒總生物堿作用于S.aureus 后,抑菌圈平均直徑為22.75 ±1.54 mm,達(dá)到高度敏感,這表明青花椒總生物堿對(duì)金黃色葡萄球菌具有強(qiáng)抑制作用。

        圖1 金黃色葡萄球菌抑菌圈

        表1 金黃色葡萄球菌抑菌圈直徑

        2.2 最小抑菌濃度(MIC)

        由圖2 可知,25 mg/mL 青花椒總生物堿作用于S.aureus 后抑菌率高于90 %,故MIC 值為25 mg/mL。

        圖2 青花椒總生物堿對(duì)金黃色葡萄球菌的最小抑菌濃度

        2.3 青花椒總生物堿對(duì)S.aureus 生長(zhǎng)的影響

        由圖3 可知,1/4 MIC 和1/8 MIC 青花椒總生物堿作用于S.aureus 后均會(huì)抑制其生長(zhǎng)。

        圖3 金黃色葡萄球菌生長(zhǎng)抑制曲線圖

        2.4 金江青花椒總生物堿對(duì)金黃色葡萄球菌ATP含量的影響

        ATP 是細(xì)胞能量轉(zhuǎn)換的載體,細(xì)胞的功能隨著其水平的改變而改變。由圖4 可知,隨著青花椒總生物堿作用于S.aureus 時(shí)間的延長(zhǎng),其中ATP 含量呈降低趨勢(shì)。

        圖4 金黃色葡萄球菌中ATP 含量

        2.5 青花椒總生物堿對(duì)S.aureus 抑菌穩(wěn)定性的影響

        2.5.1 溫度對(duì)青花椒總生物堿抑菌穩(wěn)定性的影響

        由表2 可知,隨著溫度的上升,青花椒總生物堿的抑菌效果逐漸下降,說(shuō)明溫度對(duì)其抑菌活性有一定的影響。但從整體來(lái)看,青花椒總生物堿在40 ~90℃仍具有較強(qiáng)的抑菌活性,說(shuō)明青花椒總生物堿的抑菌效果不易受溫度影響。

        表2 不同溫度處理對(duì)青花椒總生物堿抑菌穩(wěn)定性的影響

        2.5.2 金屬離子對(duì)青花椒總生物堿抑菌穩(wěn)定性的影響

        由表3 可知,不同金屬離子對(duì)青花椒總生物堿抑菌活性的影響較小。

        表3 不同金屬離子對(duì)青花椒總生物堿抑菌穩(wěn)定性的影響

        2.5.3 pH 對(duì)青花椒總生物堿抑菌穩(wěn)定性的影響

        由表4 可知,pH 越高,花椒總生物堿的抑菌效果愈強(qiáng),在pH=10 時(shí),抑菌圈直徑達(dá)到了21.08±0.17 mm。且由空白對(duì)照可知,其抑菌效果的增強(qiáng)與單純堿性試劑無(wú)關(guān)。原因可能是,在堿性環(huán)境下花椒總生物堿發(fā)生了協(xié)同效應(yīng),其抑菌活性大大增強(qiáng)。由此可以證明花椒總生物堿的穩(wěn)定性較好,可在堿性環(huán)境下使用,且抑菌效果更突出。

        表4 pH 對(duì)金江花椒總生物堿抑菌穩(wěn)定性的影響

        2.5.4 紫外線對(duì)青花椒總生物堿抑菌穩(wěn)定性的影響

        如表5 可知,青花椒總生物堿經(jīng)不同時(shí)長(zhǎng)紫外線照射之后,其抑菌效果變化不大,說(shuō)明青花椒總生物堿對(duì)紫外光相對(duì)較穩(wěn)定。

        表5 紫外線處理對(duì)花椒總生物堿抑菌穩(wěn)定性的影響

        3 結(jié)論

        將青花椒總生物堿作用于S.aureus 后,測(cè)定其抑菌圈直徑、MIC 值、生長(zhǎng)抑制曲線、培養(yǎng)液中ATP含量,確定青花椒總生物堿對(duì)S.aureus 的有抑制效果,并檢測(cè)青花椒總生物堿的抑菌穩(wěn)定性。實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,青花椒總生物堿作用于金黃色葡萄球菌后,抑菌圈直徑為22.75±1.54 mm,MIC 值為25 mg/mL,生長(zhǎng)明顯受到抑制,且ATP 含量下降;藥物穩(wěn)定性檢測(cè)結(jié)果也表明青花椒總生物堿的抑菌穩(wěn)定性較好。綜上所述,青花椒總生物堿對(duì)S.aureus 的生長(zhǎng)繁殖具有顯著的抑制作用,有望依此研發(fā)新型天然抗菌劑。

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