李雪儀,彭東輝,陳雨嬋,姜帆,秦安琪,曾元寧,匡海學(xué),王秋紅
(1.廣東藥科大學(xué)中藥學(xué)院/廣東省中藥飲片規(guī)范化炮制工程技術(shù)研究中心,廣東 廣州 510006;2.黑龍江中醫(yī)藥大學(xué)藥學(xué)院/教育部北藥基礎(chǔ)與應(yīng)用研究重點實驗室/黑龍江中藥及天然藥物藥效物質(zhì)基礎(chǔ)研究重點實驗室,黑龍江 哈爾濱 150040)
柴胡在《中國藥典》中收錄為傘形科植物柴胡Bupleurum chinenseDC.或狹葉柴胡Bupleurum scorzonerifoliumWilld.的干燥根,按照2種不同種植物的性狀不同,前者習(xí)慣稱之為“北柴胡”,后者習(xí)稱“南柴胡”。柴胡性味微苦、微辛、微寒,具有退熱解表、疏肝解郁、截瘧等功效[1-3]?,F(xiàn)代研究發(fā)現(xiàn),柴胡主要含有黃酮、皂苷、多糖以及揮發(fā)油等物質(zhì)[4],在具有抗腫瘤、抗抑郁癥和抗纖維化、抗衰老作用,對肝、肺損傷的保護(hù)作用的同時,還有保護(hù)心臟、肝臟和腎臟等作用[5-13]。
柴胡的炮制方法有酒制、蜜制、醋制、鱉血制等,酒炙柴胡的應(yīng)用歷史可追溯到《原機啟微》,附方[14]中提到:“瀉熱黃連湯治內(nèi)障,癥同上,有眵淚,黃芩(酒炒)、黃連(酒洗)、柴胡(酒炒)、生地黃(酒洗,各一兩)、升麻(半兩)、龍膽草(三錢)”,酒炙后能增強柴胡行血通經(jīng)、疏肝解郁的作用[15],柴胡酒炙方法在《全國中藥飲片炮制規(guī)范(一)(征求意見稿)》及部分地方炮制規(guī)范中有收錄[16]。目前柴胡研究較多的炮制方法是醋炙法和鱉血制法,關(guān)于酒炙法以及酒炙法對柴胡化學(xué)成分及藥理作用影響的研究較少。邱云等[17]研究發(fā)現(xiàn)酒炙后會降低柴胡中SSa和SSd質(zhì)量分?jǐn)?shù),李小寧等[18]研究發(fā)現(xiàn)酒炙能減少柴胡總多糖的質(zhì)量分?jǐn)?shù),葉耀輝等[19]提出酒法炮制后柴胡揮發(fā)性成分在總柴胡檢出物中比例升高。酒炙后的柴胡對血瘀證模型大鼠的血液流變學(xué)指標(biāo)和凝血四項指標(biāo)的改善作用更強[20],增強了活血行氣作用;酒炙后柴胡能更大范圍地提高虛熱大鼠的D-木糖值,側(cè)重于提高機體免疫能力[21],該效果較生柴胡更顯著?,F(xiàn)行研究多關(guān)注醋炙柴胡對柴胡功效的影響或炮制對柴胡的總體影響,酒炙對柴胡的影響較少單獨出現(xiàn),并且對酒炙柴胡所造成的影響及其原因沒有進(jìn)一步研究。本試驗在現(xiàn)行柴胡總黃酮和柴胡各皂苷測定方法的基礎(chǔ)上,研究柴胡酒炙前后總黃酮以及柴胡皂苷類成分質(zhì)量分?jǐn)?shù)變化,為后續(xù)柴胡酒炙的研究提供參考依據(jù)。
生柴胡片購于廣州清平藥材市場,經(jīng)廣東藥科大學(xué)中藥學(xué)院中藥資源系劉基柱教授鑒定為傘形科植物柴胡(Bupleurum chinenseDC.)的干燥根,屬北柴胡。藥材共9 批,產(chǎn)地為黑龍江、甘肅和內(nèi)蒙古,由實驗室自行炮制加工,詳細(xì)信息見表1。
表1 9批柴胡藥材信息表Table 1 The information of 9 batches of radix bupleuri
柴胡皂苷a(SSa,批號:J0901 AS)、柴胡皂苷b1(SSb1,批號:A1130 AS)和柴胡皂苷b2(SSb2,批號:A0319 AS)購自大連美侖生物技術(shù)有限公司,質(zhì)量分?jǐn)?shù)≥98%,柴胡皂苷d(SSd,批號:B20150)和蘆?。ㄅ枺築20771)購自上海源葉生物科技有限公司,質(zhì)量分?jǐn)?shù)≥98%。乙腈購自賽默飛世爾科技公司,為色譜純;甲醇、氨水購自天津市大茂化學(xué)試劑廠,均為分析純。
ACQUITY Arc 型超高效液相色譜儀、2489 UV型紫外檢測器(美國Waters 公司),MX-F 型渦旋器(美國Scilogex 公司),CA-1330 型冷卻水循環(huán)裝置、SB-1300 型水浴鍋(上海愛朗儀器有限公司),SB25-12 DTD 型超聲波清洗機(寧波新芝生物科技股份有限公司),H1750 R 型高速臺式離心機(湖南湘儀實驗室儀器開發(fā)有限公司),ME802/104 E 型電子分析天平[梅特勒-托利多國際貿(mào)易(上海)有限公司],N-1300 型旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀(日本EYELA 公司),AllegraX-15R 型臺式離心機(美國貝克曼庫爾特有限公司)。
根據(jù)《湖北省中藥飲片炮制規(guī)范(2018 年版)》[22]所載,取凈柴胡片適量,加10%(體積分?jǐn)?shù),下同)黃酒拌勻,于室溫中悶透,等待酒液被吸盡后,置于炒制容器內(nèi),用文火將其炒干,取出后放涼,打粉,過4號篩,即得生柴胡粉末和酒柴胡粉末。
2.2.1 對照品溶液的制備 稱取50 mg干燥至恒重的蘆丁對照品,置于25 mL 容量瓶中,加入適量甲醇,水浴加熱溶解,放冷,加入甲醇定容至容量瓶刻度,搖勻,即得[23]。
2.2.2 供試品溶液的制備 取各批次的生柴胡和酒柴胡粉末(過4號篩)各200 mg,稱定,置于具塞錐形瓶中,加入75%甲醇4 mL,超聲處理(功率800 W,頻率40 kHz)20 min,離心10 min(轉(zhuǎn)速4 750 r/min)。如上再次重復(fù)提取2 次,每次都加入75%甲醇3 mL,合并3 次上清液,轉(zhuǎn)移至10 mL 量瓶中,加甲醇定容至刻度,搖勻,分別作為生柴胡和酒柴胡粉末的供試品溶液。
2.2.3 標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制 參考周亞福等[24-25]的方法,將“2.2.1”項下制備的對照品溶液分別稀釋,配置成質(zhì)量濃度分別為0.5、0.25、0.1、0.05、0.025、0.012 5、0.006 25 mg/mL 的蘆丁對照品溶液。分別量取7 份上述質(zhì)量濃度的對照品溶液1 mL 于7 個10 mL 具塞試管中,依次加入60%甲醇溶液3.0 mL以及5%亞硝酸鈉溶液0.4 mL,搖勻,放置6 min,再加入10%硝酸鋁溶液0.4 mL,搖勻后再次放置6 min,加入4%氫氧化鈉溶液4.0 mL,搖勻后放置15 min,以等體積蒸餾水為空白對照,同時以1 mL黃酒代替供試品溶液,重復(fù)上述步驟重復(fù)測定3次,以消除黃酒本身的影響,在510 nm 處測定吸光度值。以吸光度值為縱坐標(biāo)(Y),總黃酮質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo)(X)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,得到回歸方程:Y=0.077 2X-0.008 2(r=0.999 5)。
2.2.4 總黃酮質(zhì)量分?jǐn)?shù)的測定 取“2.2.2”項下供試品溶液,按“2.2.3”項下方法測定各供試品的吸光度值,代入回歸方程,計算得生柴胡和酒柴胡粉末中總黃酮的質(zhì)量分?jǐn)?shù),結(jié)果見表2。通過t檢驗可知2 種柴胡總黃酮質(zhì)量分?jǐn)?shù)差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),證明酒炙后柴胡總黃酮質(zhì)量分?jǐn)?shù)升高。
表2 各批次柴胡中總黃酮的質(zhì)量分?jǐn)?shù)Table 2 Mass fraction of total flavonoids in different batches of radix bupleuri(,n=3) w/(mg·g-1)
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2.3.1 對照品溶液的制備 分別取SSa、SSb1、SSb2 和SSd 對照品適量,精確稱定,置于5 mL 容量瓶中,分別加入甲醇制成每1 mL 含SSa 10 mg、SSd 10 mg、SSb1 1 mg、SSb2 1 mg 的各對照品溶液,即得。
2.3.2 供試品溶液的制備 參考黃江等[26]的方法,分別取各批次生柴胡和酒柴胡粉末0.5 g,稱定,置具塞錐形瓶中,加入5%濃氨甲醇25 mL,密塞,超聲(功率500 W、頻率40 kHz)30 min。取出,放冷,用甲醇20 mL分3次洗滌藥渣以及容器,合并洗液及濾液回收溶劑至蒸干,殘渣加甲醇使溶解,轉(zhuǎn)移至5 mL量瓶中,加甲醇至刻度,定容,搖勻,即得。
2.3.3 色譜條件 色譜柱為SunFireC18柱(5 μm,4.6 mm×250 mm);流動相為乙腈(A)和水(B),以梯度方式洗脫(0~60 min,25%A→58%A);SSb1 和SSb2 的檢測波長為254 nm,SSa 和SSd 的檢測波長為210 nm;流速為1.0 mL/min;柱溫為30 ℃[27-29],進(jìn)樣量為10 μL。
2.3.4 線性關(guān)系的考察 分別吸取SSa、SSb1、SSb2、SSd 對照品溶液,分別稀釋至表3 中的質(zhì)量濃度。按照“2.3.3”項下色譜條件進(jìn)樣測定,以質(zhì)量濃度(X)為橫坐標(biāo),峰面積值(Y)為縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,結(jié)果線性關(guān)系良好,回歸方程見表4。
表3 4種成分對照品溶液的質(zhì)量濃度Table 3 Mass concentration of reference solutions for SSa,SSb1,SSb2 and SSd mg/mL
表4 線性關(guān)系考察結(jié)果Table 4 Results of linear relationship investigation
2.3.5 專屬性試驗 分別精密稱取SSa、SSb1、SSb2、SSd適量,置于5 mL 容量瓶中,加入甲醇制成SSa、SSb1、SSb2、SSd 質(zhì)量濃度分別為0.02、0.09、0.09、0.2 mg/mL 的混合對照品溶液。以甲醇為陰性對照溶液。
分別精密吸取生柴胡和酒柴胡供試品溶液(S1)、混合對照品溶液、陰性對照溶液,分別按照“2.3.3”項下方法進(jìn)樣測定,結(jié)果見圖1。從圖1 可知,254 nm 處SSb1 和SSb2 互不干擾,210 nm 處SSa和SSd 亦互不干擾,且陰性無干擾,方法專屬性良好[30]。
圖1 生柴胡粉末供試品溶液(S1)、酒柴胡粉末供試品溶液(J1)和混合對照品溶液的HPLC色譜圖Figure 1 H PLC chromatograms of Raw Bupleurum chinense test solution(S1),alcoholic bupleurum chinense test solution(J1)and mixed standard solution
2.3.6 精密度試驗 精密吸取同一批生柴胡粉末(S1),按“2.3.3”項下方法重復(fù)進(jìn)樣6 次,測得SSa、SSb1、SSb2、SSd 峰面積的RSD 值分別為0.34%、0.51%、0.84%和0.81%,表明方法精密度良好[30]。
2.3.7 重復(fù)性試驗 取同一批生柴胡粉末(S1)6份,分別按“2.2.2”項下方法制備供試品溶液,分別進(jìn)樣10 μL,按“2.3.3”項下方法測定。得到SSa、SSb1、SSb2、SSd 質(zhì)量分?jǐn)?shù)的RSD 值分別為0.16%、0.43%、0.10%和0.11%,表明方法重復(fù)性良好[30]。
2.3.8 穩(wěn)定性試驗 取同一批生柴胡粉末(S1)0.5 g,精密稱定,按“2.3.2”項下方法制備供試品溶液,分別在0、2、4、12、24、48 h 后依次進(jìn)樣,按“2.3.3”項下方法測定,計算得到SSa、SSb1、SSb2、SSd峰面積的RSD值分別為0.36%、0.84%、0.84%和0.90%,結(jié)果顯示供試溶液中各待測成分在48 h 內(nèi)基本穩(wěn)定[30]。
2.3.9 加樣回收率試驗 取已知質(zhì)量分?jǐn)?shù)的生柴胡粉末(S1)6 份,分別加入SSa(0.6 mg/mL)、SSb1(0.004 mg/mL)、SSb2(0.01 mg/mL)、SSd(1.0 mg/mL)對照品溶液1 mL,進(jìn)樣量10 μL,按“2.3.3”項下方法測定各柴胡皂苷的質(zhì)量分?jǐn)?shù),平行測定3次,表明樣品的加樣回收率良好[30]。見表5。
表5 4種成分加樣回收率試驗結(jié)果Table 5 The results of recovery rate of 4 components
2.3.10 樣品中皂苷類化合物質(zhì)量分?jǐn)?shù)的測定 分別取各批次的柴胡生品和酒炙品的供試品,按“2.3.2”項下方法制備供試品溶液,按“2.3.3”項下色譜條件進(jìn)樣,平行測定3 次,見圖2。通過回歸方程計算炮制前柴胡中SSa、SSb1、SSb2、SSd 的質(zhì)量分?jǐn)?shù),SSb1 的定量限為0.001 mg/mL,結(jié)果如表6-8所示。通過t檢驗可知酒炙能使SSa 和SSd 的質(zhì)量分?jǐn)?shù)減少(P<0.05),SSb1 和SSb2 的質(zhì)量分?jǐn)?shù)增加(P<0.05)。
圖2 柴胡炮制前后的HPLC色譜圖Figure 2 HPLC chromatograms of radix bupleuri before and after processing
表6 柴胡生品中SSa、SSb1、SSb2、SSd的質(zhì)量分?jǐn)?shù)Table 6 The contents of SSa,SSb1,SSb2 and SSd in crude bupleurum chinense DC(,n=3) w/(mg·g-1)
表6 柴胡生品中SSa、SSb1、SSb2、SSd的質(zhì)量分?jǐn)?shù)Table 6 The contents of SSa,SSb1,SSb2 and SSd in crude bupleurum chinense DC(,n=3) w/(mg·g-1)
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表7 柴胡酒炙品中SSa、SSb1、SSb2、SSd的質(zhì)量分?jǐn)?shù)Table 7 The contents of SSa,SSb1,SSb2,SSd in radix bupleuri stir-fried in wine(,n=3) w/(mg·g-1)
表7 柴胡酒炙品中SSa、SSb1、SSb2、SSd的質(zhì)量分?jǐn)?shù)Table 7 The contents of SSa,SSb1,SSb2,SSd in radix bupleuri stir-fried in wine(,n=3) w/(mg·g-1)
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表8 柴胡中4種成分質(zhì)量分?jǐn)?shù)的t檢驗結(jié)果Table 8 T-test results of the mass fractions of four components in radix bupleuri
本試驗通過比較酒炙前后柴胡中總黃酮、皂苷類成分質(zhì)量分?jǐn)?shù)的變化來研究酒炙法對柴胡化學(xué)組成的影響。結(jié)果顯示,柴胡酒炙后總黃酮成分質(zhì)量分?jǐn)?shù)升高,其原因可能與輔料黃酒以及加熱情況下化學(xué)成分的結(jié)構(gòu)轉(zhuǎn)化有關(guān),具體機制有待進(jìn)一步研究。此外,有研究報道柴胡中的總皂苷質(zhì)量分?jǐn)?shù)為酒柴胡>生柴胡>醋柴胡[31],本研究發(fā)現(xiàn)經(jīng)酒炙后,SSa 和SSd 的質(zhì)量分?jǐn)?shù)減少,原因可能是生柴胡在潤洗和浸潤前處理的過程中,皂苷成分隨著水的沖洗而流失減少[32],與本實驗結(jié)果一致;同時,SSa、SSd 中的C13、28 位的有氧醚環(huán)在加熱過程中不穩(wěn)定,易開環(huán)[31],其中SSa 可以轉(zhuǎn)化生成SSb1[34],SSd轉(zhuǎn)化生成SSb2[33],導(dǎo)致SSb1、SSb2 質(zhì)量分?jǐn)?shù)增加。但是過程是否定量、轉(zhuǎn)化的影響因素等還需要進(jìn)一步研究。
經(jīng)前期研究得知,柴胡酒炙之后可增強升舉陽氣、活血行氣等功效,但是其化學(xué)成分變化以及對功效的影響還沒有深入研究,后續(xù)可進(jìn)一步研究酒炙法對柴胡功效的影響,從而闡明柴胡酒炙的科學(xué)內(nèi)涵。