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        基于Notch1 信號(hào)通路調(diào)控巨噬細(xì)胞極化改善佐劑關(guān)節(jié)炎大鼠關(guān)節(jié)炎癥的機(jī)制

        2023-12-23 04:32:38李方澤胡賽賽陳瑩瑩
        關(guān)鍵詞:信號(hào)

        程 靜,萬 磊,趙 磊,李 舒,李方澤,胡賽賽,陳瑩瑩

        (1.安徽中醫(yī)藥大學(xué),安徽 合肥 230031;2.安徽中醫(yī)藥大學(xué)第一附屬醫(yī)院風(fēng)濕科,安徽 合肥 230031)

        類風(fēng)濕性關(guān)節(jié)炎(RA)是一種由免疫系統(tǒng)對(duì)其自身關(guān)節(jié)組織的異常攻擊引起的系統(tǒng)性自身免疫性疾?。?]。RA 患者的滑膜組織增殖并增厚,有許多浸潤(rùn)性炎癥細(xì)胞。聚集的免疫細(xì)胞通過促進(jìn)滑膜成纖維細(xì)胞的增殖和激活破骨細(xì)胞直接參與滑膜炎的發(fā)展[2]。RA 滑膜中大多數(shù)免疫細(xì)胞是巨噬細(xì)胞,是產(chǎn)生參與RA 病理發(fā)展的主要促炎細(xì)胞因子[3]。國(guó)內(nèi)外研究表明,巨噬細(xì)胞(Mφ)可以被分化為M1 和M2,M1 型Mφ 以CD80+和CD86+為代表,M2 型Mφ 以CD206+和CD163+為代表。M1 型巨噬細(xì)胞可通過釋放白細(xì)胞介素-1β(IL-1β)、IL-6、腫瘤壞死因子-a(TNF-a)等促炎因子參與RA 發(fā)生發(fā)展,M2 型Mφ 釋放IL-4、IL-10、IL-13 等抑炎因子減輕炎癥[4,5]。

        研究表明,Notch 是調(diào)控巨噬細(xì)胞功能的重要分子?;罨疦otch 信號(hào)可調(diào)控Mφ 向M1 型極化,發(fā)揮促炎效應(yīng);阻斷Notch 信號(hào)可誘導(dǎo)Mφ 向M2 型極化,發(fā)揮抗炎效應(yīng)[6]。Notch 信號(hào)通路的表達(dá)和活化能夠刺激滑膜細(xì)胞,從而促進(jìn) RA 中促炎因子的產(chǎn)生[7]。前期課題組動(dòng)物實(shí)驗(yàn)研究表明,Notch 信號(hào)的活化可調(diào)節(jié)巨噬細(xì)胞的M1 型極化,從而促進(jìn)佐劑性關(guān)節(jié)炎(adjuvant arthritis,AA)的發(fā)生[8]。本研究通過復(fù)制AA 大鼠模型,探究Notch1 信號(hào)通路在AA 大鼠關(guān)節(jié)炎指數(shù)(AI)、足趾腫脹度、血清中細(xì)胞因子(IL-4、IL-1β、IL-10、TNF-α)及M1/M2 巨噬細(xì)胞表達(dá)的影響,進(jìn)一步研究Notch1/Jagged1/RBP-Jκ/Hes1 信 號(hào) 軸 在AA 大 鼠 滑 膜M1/M2 型 巨噬細(xì)胞極化中的作用及分子機(jī)制。

        1 材料與方法

        1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物

        18 只清潔級(jí)SD 雄性大鼠,體重(195±15)g。動(dòng)物購(gòu)自安徽醫(yī)科大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心。本研究遵循安徽中醫(yī)藥大學(xué)第一附屬醫(yī)院實(shí)驗(yàn)動(dòng)物倫理委員會(huì)的規(guī)定,動(dòng)物倫理編號(hào)AHUCM-rats-2021022。

        1.2 主要試劑和儀器

        弗氏完全佐劑(美國(guó)Sigma公司,貨號(hào)MB9887);白 細(xì) 胞 介 素-4(interleukin-4,IL-4) 、IL-10、IL-1β、TGF-α 試劑盒(武漢基因美公司,貨號(hào):JYM0651 Ra、JYM0297Ra、JYM0636Ra、JYM0612Ra);兔Notch1、Jagged1、Hes-1 抗體:均購(gòu)自abcam,貨號(hào)分別 為:ab53457,ab108293,ab120934;兔RBP-Jκ 抗體:bioss,貨 號(hào):bs-3906R。Notch1 通 路 抑 制 劑(FLI-06):上海藍(lán)木化工有限公司,貨號(hào):S8894。流式細(xì)胞儀(貝克曼公司);倒置顯微鏡(OLYMPUS 公司);離心機(jī)(上海和欣科教設(shè)備有限公司);電泳儀、電泳槽(上海天能科技有限公司)。

        1.3 分組、造模及給藥

        將18 只大鼠按隨機(jī)對(duì)照表分為3 組,即健康組、模型組和Notch1 抑制劑組,每組6 只。MC 和FLI 大 鼠 構(gòu) 建AA 大 鼠 模 型[9]。2 周 后 開 始 給 藥,Notch1 抑制劑組:制成0.224 mg/mL 混合液,0.056 mg/0.25 mL/100 g 尾靜脈注射,隔天1 次;健康組及模型組:生理鹽水2 mL/只灌胃1 次/d。給藥30 d。

        1.4 關(guān)節(jié)炎癥癥狀的測(cè)定

        在造模前1 天、致炎后第30 天測(cè)量每組SD 大鼠的右后足關(guān)節(jié)容積,計(jì)算各組大鼠右后足關(guān)節(jié)腫脹度(E)[10]。致炎后第30 天開始觀察,對(duì)其進(jìn)行全身性的觀察,并計(jì)算AI。AI 評(píng)分正常為0 分,1 處關(guān)節(jié)腫脹為1 分,2 處關(guān)節(jié)腫脹為2 分,2 處以上關(guān)節(jié)腫脹為3 分,全部肢體有腫脹為4 分。

        1.5 流式細(xì)胞儀測(cè)定巨噬細(xì)胞極化標(biāo)志物

        大鼠新鮮血液100 μL,加入抗鼠CD80-PE 0.25 μg、CD163-AF647 0.25 μg。根據(jù)操作手冊(cè)流式細(xì)胞儀檢測(cè)CD80+、CD163+細(xì)胞表達(dá)。

        1.6 ELISA 方法測(cè)定炎癥細(xì)胞因子的表達(dá)

        從腹主動(dòng)脈采血,按照 ELISA 說明書操作,檢測(cè)炎癥細(xì)胞因子的 OD 值,繪制IL-4、IL-1β、IL-10、TNF-α 標(biāo) 準(zhǔn) 曲 線,計(jì) 算 出 大 鼠 血 清IL-4、IL-1β、IL-10、TNF-α 濃度。

        1.7 Western Blot 測(cè)定相關(guān)蛋白表達(dá)水平

        用蛋白提取試劑盒提取滑膜總蛋白,電泳分離,采用半干法轉(zhuǎn)膜使蛋白質(zhì)從膠轉(zhuǎn)移至膜上,用室溫5%的脫脂奶粉封閉膜2 h。免疫反應(yīng):室溫下,將Notch1、Jagged1、Hes1、RBP-Jκ 抗體1/2 000稀釋后,和膜一起孵育2 h, 化學(xué)發(fā)光法顯色并拍照。計(jì)算各組Notch1、Jagged1、Hes1、RBP-Jκ 條帶的灰度值,以目的條帶與內(nèi)參β-actin 灰度值的比值做為滑膜Notch1、Jagged1、Hes1、RBP-Jκ 蛋白的相對(duì)表達(dá)量。

        1.8 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法

        采用 SPSS 27.0 統(tǒng)計(jì)軟件,Correlation Analysis法檢測(cè)相關(guān)性,ANOVA 法檢測(cè)方差分析,獨(dú)立樣本t檢驗(yàn)兩組間的對(duì)比,P<0.05 為差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

        2 結(jié)果

        2.1 Notch1 抑制劑對(duì)AA 大鼠E 及AI 的影響

        模型組 AA 大鼠的E 及AI 均較健康組明顯增高(P<0.01);Notch1 抑制劑組的E 及AI 均較模型組明顯降低(P<0.01)。見表1。

        表1 各組大鼠E、AI 比較(n=6, ±s)Tab 1 Comparison of E and AI in each group of rats(n=6,±s)

        表1 各組大鼠E、AI 比較(n=6, ±s)Tab 1 Comparison of E and AI in each group of rats(n=6,±s)

        注:對(duì) 比NC 組,△△P<0.01;對(duì) 比MC 組,▲P<0.05,▲▲P<0.01。

        關(guān)節(jié)炎指數(shù)(分)0.00±0.00 6.85±1.69△△4.97±0.75▲組別NC MC FLI右后足關(guān)節(jié)腫脹度(%)44.74±11.92 80.26±17.53△△47.30±17.59▲▲

        2.2 Notch1 抑制劑對(duì)AA 大鼠M1、M2 表面標(biāo)志物的影響

        MC 組 AA 大鼠CD80+細(xì)胞的表達(dá)量較 NC組顯著增加,而CD163+細(xì)胞的表達(dá)量較 NC 組顯著減少(P<0.01);Notch1 抑制劑組,CD80+細(xì)胞的表達(dá)量顯著低于MC 組,CD163+細(xì)胞的表達(dá)量顯著高于MC 組(P<0.01)。見表2,圖1、2。

        圖1 各組CD80+流式細(xì)胞圖Fig 1 CD80 + flow cytometry of each group

        圖2 各組CD163+流式細(xì)胞圖Fig 2 CD163+ flow cytometry of each group

        表2 各組巨噬細(xì)胞極化標(biāo)志物的比較(n=6, ±s)Tab 2 Comparison of macrophage polarization markers in different groups(n=6, ±s)

        表2 各組巨噬細(xì)胞極化標(biāo)志物的比較(n=6, ±s)Tab 2 Comparison of macrophage polarization markers in different groups(n=6, ±s)

        注:對(duì)比NC 組,△△P<0.01;對(duì)比MC 組,▲▲P<0.01。

        組別NC MC CD80 0.92±0.15 4.10±0.49△△CD163 5.49±0.39 1.19±0.37△△3.60±0.47▲▲FLI 2.04±0.21▲▲

        2.3 Notch1 抑制劑對(duì)AA 大鼠IL-4、IL-1β、IL-10、TNF-α 水平的影響

        MC 組與 NC 組相比,IL-1β 和TNF-α 的表達(dá)顯著增加(P<0.01),而IL-4 和IL-10 的表達(dá)顯著減少(P<0.01);FLI 組IL-1β 和TNF-α 的表達(dá)顯著低于MC 組(P<0.05),IL-4 和IL-10 的 表 達(dá) 顯 著 高 于MC 組(P<0.01);見表3。

        表3 各組大鼠炎癥細(xì)胞因子水平的比較(n=6, ±s)Tab 3 Comparison of inflammatory cytokine levels in rats of each group(n=6, ±s)

        表3 各組大鼠炎癥細(xì)胞因子水平的比較(n=6, ±s)Tab 3 Comparison of inflammatory cytokine levels in rats of each group(n=6, ±s)

        注:對(duì)比NC 組,△△P<0.01;對(duì)比MC 組,▲▲P<0.01,▲P<0.05。

        組別NC IL-4 10.71±0.55 IL-1β 46.23±5.89 IL-10 67.81±3.91 TNF-α 42.00±7.99 MC 2.87±0.28△△153.60±13.02△△19.36±2.25△△177.41±7.94△△87.41±5.33▲FLI 6.82±0.23▲▲72.67±5.66▲30.00±0.99▲▲

        2.4 Notch1 抑制劑對(duì)AA 大鼠關(guān)節(jié)滑膜組織中Notch1、Jagged1、Hes1、RBP-Jκ 蛋白的影響

        MC 組 大 鼠 中Notch1、Jagged1、Hes1、RBP-Jκ的表達(dá)均明顯高于NC 組(P<0.01);Notch1 抑制劑組滑膜組織中Notch1、Jagged1、Hes1、RBP-Jκ 的表達(dá)明顯低于MC 組(P<0.05)。見表4,圖3。

        圖3 各組大鼠Notch1/Jagged1/RBP-Jκ/Hes1 蛋白表達(dá)Fig 3 The protein expression of Notch1 / Jagged1 /RBP-Jκ / Hes1 in each group of rats

        表4 各組大鼠Notch1、Jagged1、Hes1 及RBP-Jκ 表達(dá)水平比較(n=6, ±s)Tab 4 Comparison of Notch1, Jagged1, Hes1 and RBP-Jκ expression levels in each group of rats(n=6, ±s)

        表4 各組大鼠Notch1、Jagged1、Hes1 及RBP-Jκ 表達(dá)水平比較(n=6, ±s)Tab 4 Comparison of Notch1, Jagged1, Hes1 and RBP-Jκ expression levels in each group of rats(n=6, ±s)

        注:與NC 組比較,△△P<0.01;與MC 組比較,▲P<0.05。

        組別NC MC FLI RBP-Jκ 0.41±0.13 0.90±0.21△△0.61±0.16▲Notch1 0.15±0.13 0.73±0.12△△0.44±0.19▲Jagged1 0.10±0.04 0.54±0.12△△0.35±0.01▲Hes1 0.19±0.01 1.45±0.50△△0.46±0.08▲

        2.5 AA 大鼠巨噬細(xì)胞極化標(biāo)志物與Notch1、Jagged1、Hes1、RBP-Jκ 蛋白的相關(guān)性分析

        相 關(guān) 性 分 析 顯 示,CD80 與Notch1、Jagged1、Hes1、RBP-Jκ 蛋白成正相關(guān)(P<0.01),CD163 與Notch1、Jagged1、Hes1、RBP-Jκ 蛋白成負(fù)相關(guān)(P<0.01),見表5。

        表5 CD80、CD163 與其他指標(biāo)相關(guān)性分析Tab 5 Correlation analysis of CD80, CD163 and other indicators

        3 討論

        RA 是一種自身免疫性炎癥性疾病,受累關(guān)節(jié)破壞不可逆主要特征為免疫細(xì)胞浸潤(rùn)和滑膜炎癥,在RA 中,活化的滑膜成纖維細(xì)胞產(chǎn)生促炎細(xì)胞因子和趨化因子,導(dǎo)致特征性關(guān)節(jié)炎癥和軟骨破壞[11,12]。研 究 發(fā) 現(xiàn),IL-4、IL-10 和TNF-α 是RA 發(fā)生、發(fā)展過程中的關(guān)鍵因素,它們參與Th1 介導(dǎo)的炎癥反應(yīng),導(dǎo)致軟骨和骨破壞[13]。M1 型巨噬細(xì)胞是 RA 關(guān)節(jié)軟骨炎癥的關(guān)鍵調(diào)控分子,M2 巨噬細(xì)胞通過分泌IL-10 等細(xì)胞因子發(fā)揮抗炎活性并有利于組織修復(fù),IL-4 可以誘導(dǎo)M1 巨噬細(xì)胞標(biāo)志物表降低和M2 巨噬細(xì)胞標(biāo)志物增加[14-16]。研究表明,誘導(dǎo)從M1 極化為抗炎M2 巨噬細(xì)胞的治療可能是更好地控制RA 異常炎癥反應(yīng)[17]。本次研究結(jié)果表明,與NC 組 對(duì) 比,MC 組IL-1β、TNF-α 表 達(dá) 水 平 明 顯升高,IL-4、IL-10 表達(dá)水平明顯降低;CD80+細(xì)胞表達(dá)明顯升高,CD163+細(xì)胞表達(dá)明顯降低;Notch1、Jagged1、Hes1、RBP-Jκ 蛋白表達(dá)水平顯著升高,表明AA 大鼠體內(nèi)的巨噬細(xì)胞向M1 型巨噬細(xì)胞極化,抑制抗炎細(xì)胞因子的分泌,促進(jìn)促炎細(xì)胞因子的表達(dá);異常激活A(yù)A 大鼠體內(nèi)的Notch1/Jagged1 /RBP-Jκ/Hes1 信號(hào)軸研究結(jié)果驗(yàn)證了課題組前期研究,在RA 發(fā)病中,Notch 信號(hào)通路和巨噬細(xì)胞極化的調(diào)控作用密切相關(guān)。

        Notch 信 號(hào) 通 路 包 含Notch 受 體(Notch1)和Notch 配體(Jagged-1)[18]。Notch 信號(hào)激活可能對(duì)巨噬細(xì)胞中的免疫防御機(jī)制產(chǎn)生負(fù)調(diào)節(jié),同時(shí)可以促進(jìn) 細(xì) 胞 因 子 分 泌 并 加 重RA[19]。Notch1 和Jagged1結(jié)合之后,再與轉(zhuǎn)錄因子RBP-Jκ 相結(jié)合,從而形成一個(gè)轉(zhuǎn)錄復(fù)合物,進(jìn)而調(diào)控靶基因Hes1的表達(dá),導(dǎo)致巨噬細(xì)胞的炎癥極化向M1 型分化,促進(jìn)IL-1β、TNF-α 等促炎細(xì)胞因子的形成,能參與RA 的發(fā)展過程。抑制Notch 信號(hào)通路傳導(dǎo)引起巨噬細(xì)胞極化從M1 型向M2 型分化,可能參與治療RA 的過程[20-22]。本 次 實(shí) 驗(yàn) 研 究 發(fā) 現(xiàn),Notch1 抑 制 劑 組 的IL-1β、TNF-α 表達(dá)水平明顯低于MC 組,IL-4、IL-10表 達(dá) 水 平 明 顯 高 于MC 組;與Su 等[23]研 究 結(jié) 果相似。

        RBP-Jκ 依賴性Notch 通路是一種參與關(guān)節(jié)維持和關(guān)節(jié)軟骨穩(wěn)態(tài)的新途徑[24]。Yang 等[25]研究發(fā)現(xiàn),抑制Notch1 受體和Jagged1 配體和Hes1 的表達(dá)可促進(jìn)巨噬細(xì)胞極化為M2 巨噬細(xì)胞。相關(guān)性分析,CD80 與Notch1、Jagged1、Hes1、RBP-Jκ 蛋白成正相關(guān),CD163 與Notch1、Jagged1、Hes1、RBP-Jκ 蛋白成負(fù)相 關(guān),Notch1 與Jagged1 結(jié)合后,與RBP-Jκ結(jié)合形成轉(zhuǎn)錄復(fù)合物,從而調(diào)節(jié)靶基因Hes1的表達(dá),可以使巨噬細(xì)胞向M1 極化。結(jié)果表明,Notch1/Jagged1/RBP-Jκ/Hes1 信號(hào)軸與M1、M2 相關(guān)。本研究結(jié)果顯示,Notch1 抑制劑組可以顯著下調(diào)滑膜組織中Notch1、Jagged1、Hes1、RBP-Jκ 蛋白表達(dá),而與MC 組相比較,Notch1 抑制劑組大鼠E、AI 顯著降低;CD80+細(xì)胞表達(dá)明顯降低,CD163+細(xì)胞表達(dá)明顯升高;對(duì)比前期研究,本研究進(jìn)一步明確了抑制Notch1 信號(hào)通路可以通過調(diào)控巨噬細(xì)胞向M2 型極化,上調(diào)IL-4 和IL-10 表達(dá),下調(diào)IL-1β和TNF-α 表達(dá),來改善AA 大鼠的炎癥反應(yīng)。

        綜上所述,通過抑制Notch1/Jagged1/RBP-Jκ/Hes1 信號(hào)軸,可調(diào)控M1 型向M2 型巨噬細(xì)胞極化,改善AA 大鼠的免疫炎癥反應(yīng),這為以后臨床研究提供了技術(shù)和科學(xué)基礎(chǔ)。

        作者貢獻(xiàn)度說明:

        程靜:完成試驗(yàn)、分析數(shù)據(jù)、撰寫論文;萬磊:進(jìn)行實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì),為論文提供方向;趙磊采集標(biāo)本; 李舒,李方澤,胡賽賽,陳瑩瑩:收集資料。

        所有作者聲明不存在利益沖突關(guān)系。

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