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        CRISPR/Cas13系統(tǒng)用于病原體檢測的研究進展

        2023-12-13 19:44:13趙亞楠曹啟新李曉聰趙建平肖偉利
        檢驗醫(yī)學 2023年8期
        關鍵詞:病原體靈敏度靶向

        趙亞楠 曹啟新 閆 彥 李曉聰 趙建平 肖偉利

        (內蒙古自治區(qū)人民醫(yī)院檢驗科,內蒙古 呼和浩特 010010)

        近年來,新型冠狀病毒(severe acute respiratory syndrome coronavirus 2,SARSCoV-2)、埃博拉病毒、甲型流感病毒、乙型流感病毒等各種病原體嚴重危脅著公共衛(wèi)生安全,快速、有效的病原體檢測是預防疾病傳播的重要途徑。然而,目前常用的病原體檢測方法,如聚合酶鏈反應(polymerase chain reaction,PCR)、基因芯片、恒溫擴增和基因測序,操作復雜、設備昂貴,無法滿足基層醫(yī)療和貧困地區(qū)的需求。因此,急需開發(fā)一種靈敏度高、特異性強、快捷、簡便的新一代檢測技術。

        成簇規(guī)律間隔短回文重復序列(clustered regularly interspaced short palindromic repeat,CRISPR)/成簇規(guī)律間隔短回文重復序列相關蛋白(clustered regularly interspaced short palindromic repeat-associated protein,Cas)是細菌和古生菌中普遍存在的一段重復序列,能夠在向導RNA(single guide RNA,sgRNA)引導下將Cas蛋白與靶序列結合,并對其進行特異性切割,從而抵御外源物質的入侵[1]。近年來,CRISPR/Cas系統(tǒng)發(fā)展迅速,在基因調控、疾病治療、植物育種等領域有著廣闊的應用前景,其中CRISPR/Cas9系統(tǒng)能夠在DNA基礎上對靶序列進行高效、精準的編輯,已廣泛應用于基礎研究、臨床治療等領域[2-5]。但CRISPR/Cas9僅能對DNA進行調控,對RNA的特異性較低,且會出現(xiàn)脫靶效應,甚至可能會對細胞基因組造成損傷,因此在應用方面存在一定的安全隱患。而CRISPR/Cas13系統(tǒng)以Cas13酶特異靶向并剪切單鏈RNA,同時對周邊RNA進行“附帶切割”,基于其精準的靶向性和酶切割能力,已被開發(fā)為新一代診斷技術,具有靈敏度高、特異性強等優(yōu)點,在病原微生物檢測方面具有廣闊的應用前景[6-8]。本文對基于CRISPR/Cas13系統(tǒng)的病原體檢測的研究進展進行綜述,為后續(xù)研究提供參考。

        1 CRISPR /Cas13系統(tǒng)簡介

        根據Cas蛋白組成和發(fā)揮作用方式的不同,可將CRISPR/Cas系統(tǒng)分為兩大類:一類系統(tǒng)可分為Ⅰ型和Ⅲ型系統(tǒng),其核酸酶需要多種Cas蛋白酶集合形成復合物才能發(fā)揮作用;二類系統(tǒng)可分為Ⅱ型、Ⅴ型和Ⅵ型系統(tǒng),其核酸酶只需要單一Cas蛋白即可發(fā)揮效用[9-10]。Ⅱ型(Cas9)和Ⅴ型(Cas12)主要對DNA具有靶向性,在基因編輯、腫瘤治療等方面被廣泛研究[4,11]。Cas13屬于二類Ⅵ型系統(tǒng),含有2個高等真核生物和原核生物核苷酸結合域(higher eukaryote and prokaryote nucleotidebinding domain,HEPN)結構,是一種靶向剪切RNA的新型CRISPR系統(tǒng)酶。Cas13具有加工處理向導RNA(CRISPR RNA,crRNA)和crRNA引導下靶向剪切單鏈RNA的雙重核酸酶活性,能夠特異性識別并剪切RNA片段,同時還具備非特異性RNA核糖核苷酸酶(RNA ribonuclease,RNase) 活性,可對周邊的RNA片段進行無差別的“附帶剪切”。根據Cas蛋白功能的不同,Ⅵ型系統(tǒng)又可分為4種亞型,分別為Ⅵ-A、Ⅵ-B、Ⅵ-C、Ⅵ-D,其中Ⅵ-A即為Cas13a,含有Cas1和Cas2蛋白,高分辨率電鏡檢測結果顯示Cas13a具有“雙瓣葉”球狀蛋白結構,由1個crRNA識別葉和1個核酸酶葉組成[11]。Cas13a與靶序列結合,可引起構象變化,催化HEPN 1和HEPN 2結合部位位點活化,導致靶序列在結合區(qū)域的外部被切割(順式切割),同時非特異性切割周邊其他RNA(反式切割)[12]。Ⅵ-B即為Cas13b,不含Cas1和Cas2,根據Cas13b轉座子上攜帶的附屬蛋白基因型的不同,可分為Ⅵ-B1和Ⅵ-B2型[13]。Ⅵ-B1的附屬蛋白是Csx27,Ⅵ-B2的附屬蛋白是Csx28,Cas13b蛋白酶活性受Csx27/Csx28影響,Csx27表現(xiàn)為抑制,Csx28表現(xiàn)為增強[13]。Ⅵ-D即為Cas13d,由crRNA、CRISPR系統(tǒng)酶(Cas1、Cas2、Cas13d)和附屬蛋白WYL1組成,Cas13d的相對分子質量遠小于其他3種核酸酶,可以僅依靠Cas13d上最小序列,即二級結構靶向RNA,附屬蛋白WYL1可以正向誘導酶切活性,由于Cas13d具有較強的靶向切割能力和酶切活性,被廣泛應用于基礎研究中[14]。目前關于Cas13c的報道較少。

        2 CRISPR /Cas13系統(tǒng)在病原體檢測中的研究進展

        2.1 在病毒檢測中的研究進展

        EAST-SELETSKY等[15]在CRISPR/Cas13a系統(tǒng)中加入結合有熒光基團和淬滅基團的RNA熒光報告分子,在其被切割前淬滅基團發(fā)揮作用,使RNA熒光報告分子不發(fā)射熒光;當Cas13a被靶序列激活時,“附帶切割”RNA熒光報告分子,致使RNA鏈斷裂,熒光基團被激活,并釋放熒光信號,通過收集熒光信號即可進行特定核酸檢測,但該方法的靈敏度較低,只達到pmol/L級,尚不能滿足臨床檢測需求。2017年,GOOTENBERG等[16]在先前研究的基礎上,結合重組聚合酶(recombinase polymerase amplification,RPA)擴增技術和T7核糖核酸聚合酶轉錄技術,發(fā)明了特異性高靈敏度酶報告解鎖(specific high-sensitivity enzymatic reporter unlocking,SHERLOCK)技術,并成功檢測出寨卡病毒和登革熱病毒的特定毒株。2018年,GOOTENBERG等[17]又根據CRISPR酶學的特點進一步優(yōu)化了SHERLOCK技術,第2代SHERLOCK技術與CRISPR相關蛋白Csm6結合,將靈敏度從pmol級提升至amol級;針對不同的Cas蛋白所結合的crRNA具有特異性,可以進行不同病原體的Cas13多通路檢測;結合側向層析試紙條技術,可在短時間內呈現(xiàn)結果,采用凍干技術可制備成易于攜帶的即時檢測(point-of-care testing,POCT)試劑。MYHRVOLD等[18]研發(fā)出HUDSON技術,用于病毒核酸的保護和釋放,該技術的原理為:利用加熱和化學還原方法,可同時裂解病毒顆粒,并滅活體液中的高水平核糖核酸酶,免去核酸提取的步驟。將HUDSON和SHERLOCK結合,可直接檢測體液中的病毒DNA/RNA,無需特殊設備,1~2 h即可出結果,大大提高了POCT的效能。有研究結果顯示,基于SHERLOCK技術可檢出EB病毒、乙型肝炎病毒、人類免疫缺陷病毒、禽流感病毒、非洲豬瘟病毒等[19-23],靈敏度高,特異性強,與其他病原體無交叉反應。郭悅等[24]將CRISPR/Cas13檢測與重組酶介導的擴增技術(recombinase aided amplification,RAA)結合,39 ℃條件下40~52 min可檢出8種輸入性傳染病病原體,靈敏度可以達到1~10拷貝/μL,臨床樣本中的病原體被全部檢出。目前,實時熒光定量PCR技術是檢測SARSCoV-2的金標準,廣泛應用大規(guī)模篩查,檢測限低至1拷貝/μL,但最新病毒動力學模型表明,相對于靈敏度而言,高頻率檢測和快速診斷才是減少病毒傳播的關鍵[25]。FOZOUNI等[26]將CRISPR/Cas13a與手機顯微鏡結合,進行SARSCoV-2檢測,無需預擴增即可直接檢測鼻拭子中的RNA,通過手機攝像頭讀取熒光信號,靈敏度達到100拷貝/μL,且能在5 min內提供準確結果。在大規(guī)模篩查中,基于CRISPR/Cas13a系統(tǒng)的SARS-CoV-2檢測在時效、成本、便攜上有著巨大的優(yōu)勢。

        2.2 在細菌檢測中的研究進展

        傳統(tǒng)病原菌檢測技術通常包括微生物分離培養(yǎng)與鑒定、免疫學檢測和基于核酸檢測的分子生物學診斷技術,分離培養(yǎng)與鑒定周期長,無法滿足臨床快速檢測病原菌的需求,而免疫學和分子生物學診斷技術對儀器、人員要求較高,操作較復雜,所需成本高,無法滿足基層醫(yī)院的需要。2017年,世界衛(wèi)生組織(World Health Organization,WHO)發(fā)布了適用于發(fā)展中國家病原體檢測方法的標準,要求具有經濟、高靈敏度、高特異性、操作簡單、快速穩(wěn)定和易儲運的特點[27]。因此,迫切需要開發(fā)一種靈敏、特異、快速、便捷的新型病原菌檢測平臺。JIANG等[28]將PCR與CRISPR/Cas13結合,用于檢測沙門菌,顯示出優(yōu)異的敏感性,2 h內可以檢出至少10個沙門菌基因組DNA(1 amol/L或10 CFU/mL),特異性良好,與其他常見的食源性細菌沒有交叉反應。該方法能夠靈敏且準確地檢測沙門菌,為食品中食源性病原體的檢測提供了一種新的策略,突破了傳統(tǒng)方法耗時且高度依賴巨大人力和物力資源的局限。JIANG等[28]還利用CRISPR/Cas13系統(tǒng)檢測B族鏈球菌(group BStreptococcus,GBS),與基于培養(yǎng)和PCR的檢測方法相比,這種新型GBS檢測方法顯示出優(yōu)異的診斷性能,敏感性和特異性被大大提高,有望成為GBS快速篩查的新型POCT方法。AI等[29]利用SHERLOCK技術成功檢測出結核分枝桿菌,與GeneXpert法具有相同的敏感性。黃明耀等[30]利用CRISPR/Cas13a技術在2 h內快速檢測布魯菌,敏感性和特異性均為100%,檢測下限接近10 fg/μL,成功解決了臨床布魯菌檢測周期長、患者無法得到及時救治的難題。蘇璇等[31]利用CRISPR/Cas13a輔助RAA技術檢測食品中的金黃色葡萄球菌,其靈敏度為101CFU/mL,遠高于實時熒光定量PCR(102CFU/mL),且檢測時間僅需30 min,大大提高了對食源性疾病暴發(fā)的應急檢測能力,為金黃色葡萄球菌引起的食源性疾病早期診斷提供了有力的支持。

        2.3 在真菌檢測中的研究進展

        近年來,隨著免疫抑制劑、侵入性診療的廣泛應用,真菌感染率逐年上升,已成為醫(yī)院感染的主要病原體之一。傳統(tǒng)真菌分離培養(yǎng)方法檢測周期長,患者預后不良風險較高,因此快速、準確的檢測技術對臨床真菌感染診斷有著重要的意義。LI等[8]利用SHERLOCK檢測平臺建立了煙曲霉菌的鑒定方法,結果顯示,CRISPR/Cas13a技術能快速鑒定出煙曲霉菌,其敏感性和特異性與熒光定量PCR一致。宏基因組測序敏感性較高,但該技術對操作者的要求較高,并且需要使用GenBank數據庫進行核酸序列比對,使該方法局限于實驗室診斷而不能在臨床中廣泛使用,尤其是在缺乏實驗室診斷條件的地區(qū)。因此,基于CRISPR/Cas13a系統(tǒng)的檢測技術可用于初步篩查,為臨床快速確定曲霉菌感染提供依據。這為未來開發(fā)基于CRISPR/Cas13a系統(tǒng)的新型真菌感染檢測方法奠定了基礎。

        2.4 在寄生蟲檢測中的研究進展

        寄生蟲實驗室檢測主要以病原學檢查、免疫學檢測和分子生物學檢測為主。對于病原學檢查而言,影響因素較多,寄生蟲感染階段、寄生部位和樣本采集的方法、操作、部位不同均容易導致漏診,而且對檢測人員要求較高,需要有豐富的知識和經驗。相較于傳統(tǒng)的病原學檢查,免疫學檢測和分子生物學檢測有更高的敏感性和特異性,且操作相對簡便、易行,結果客觀、準確,重復性好,結合病原學檢查結果,可以極大地提高寄生蟲的檢測效率[32]。隨著CRISPR/Cas13系統(tǒng)在病毒、細菌等病原體檢測中的廣泛應用,目前該系統(tǒng)也逐步應用于寄生蟲檢測。余復昌[33]建立了基于RPA反應和CRISPR/Cas13a系統(tǒng)的檢測微小隱孢子蟲的“一管法”快速檢測方法,具有高效、特異、穩(wěn)定的特性,在資源相對匱乏的偏遠地區(qū)具有廣闊的應用前景。LEE等[34]采用SHERLOCK檢測平臺對惡性瘧原蟲(即鐮刀瘧原蟲)進行檢測,可同時鑒別惡性瘧原蟲、間日瘧原蟲、卵形瘧原蟲、三日瘧原蟲;該方法優(yōu)化了核酸提取過程,能夠在60 min內檢測出每毫升血液中的2個瘧原蟲,符合WHO建議的檢測靈敏度。

        3 總結與展望

        CRISPR/Cas13系統(tǒng)目前已被開發(fā)為一種新型的分子診斷工具,為病原體的檢測打開了新思路。該系統(tǒng)具有高靈敏度、高特異性、快速、便捷、成本低的特點,可以實現(xiàn)快速POCT,在病原體檢測領域有著廣闊的應用前景。與基于PCR的傳統(tǒng)分子診斷技術相比,基于CRISPR/Cas13系統(tǒng)的核酸檢測技術具有高靈敏度和單堿基錯配特異性高的特點,如SHERLOCK技術可以將靈敏度提高到amol/L級別,無需精密的儀器設備、昂貴的試劑和專業(yè)人員;SHERLOCK試紙條可以大批量生產,室溫儲存,保質期長,可在基層醫(yī)療機構和偏遠地區(qū)實現(xiàn)病原體的快速篩查;借助生物傳感器實現(xiàn)可視化信號讀取,大大降低了檢測成本,能夠實現(xiàn)快速定量檢測和多重檢測。ACKERMAN等[35]開發(fā)了一種用于可擴展的多路復用病原體檢測平臺,即核酸多重評估的組合陣列反應(combinatorial arrayed reactions for multiplexed evaluation of nucleic acids,CARMEN),將CARMEN和Cas13檢測(CARMEN-Cas13)結合,可在單個陣列上對4 500多個靶crRNA對進行測試,能夠區(qū)分SARSCoV-2等169種可感染人類的病毒,并可對甲型流感病毒株進行全面的亞型分析,完成數十種人類免疫缺陷病毒耐藥突變株鑒定。

        然而,目前基于CRISPR/Cas13系統(tǒng)的病原體的診斷技術仍面臨許多挑戰(zhàn)。為了提高檢測靈敏度,許多基于CRISPR/Cas13系統(tǒng)的核酸檢測技術均加入了RPA擴增技術,該技術容易引起非特異性擴增,造成假陽性或假陰性的結果,可能需要通過NGS等較為成熟的技術驗證結果的準確性。多種引物的加入會使CRISPR/Cas13生物傳感器體系的建立和檢測過程復雜化,限制檢測速度,為實現(xiàn)POCT增加難度。優(yōu)選Cas13蛋白、設計crRNA引物是建立高效CRISPR/Cas13生物傳感器的基礎和難點,仍需進一步研究。大多數基于 CRISPR/Cas13系統(tǒng)的檢測平臺只能實現(xiàn)對單一病原體的定性檢測,難以實現(xiàn)定量檢測與高通量檢測。因此,未來還需要對基于CRISPR/Cas13系統(tǒng)的病原體檢測技術進一步優(yōu)化,構建快速定量檢測和高通量檢測平臺是未來研究的重點。

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