雷慧，鮑亞玲△，鮑喜靜，馬君

糖尿病足潰瘍（DFU）與周圍神經病變、血管疾病和足部感染有關［1］。糖尿病性潰瘍肉芽組織中血管生成異常會導致營養(yǎng)供應減少，延緩創(chuàng)面愈合［2］。炎癥是組織損傷和感染的保護性反應，機體識別病原體后，巨噬細胞會啟動早期炎癥反應，從而募集免疫細胞，包括中性粒細胞和單核細胞，以產生炎性細胞因子，如白細胞介素6（IL-6）和腫瘤壞死因子α（TNF-α）等。炎癥反應可加重2型糖尿病患者傷口愈合期間的組織損傷，這種損傷的主要病理機制涉及炎性因子的相互作用和活性氧的產生［3］。因此，長時間的炎癥會導致傷口愈合延遲。金絲桃苷是一種類黃酮，具有抗炎、抗氧化、改善糖尿病腎?。―N）以及保護血管的作用［4］。研究表明，金絲桃苷能下調膿毒癥模型大鼠心肌細胞中的炎性因子水平，改善大鼠心肌損傷［5］。同時，金絲桃苷也可抑制DN大鼠腎組織炎癥反應，改善糖脂代謝，從而減輕腎組織病理損傷［6］。腺苷酸活化蛋白激酶（AMPK）/沉默信息調節(jié)因子1（SIRT1）信號通路參與能量代謝和炎癥反應過程，在糖尿病中也有調控作用［7］。研究發(fā)現，激活AMPK/SIRT1 信號通路可抑制糖尿病心肌病小鼠的炎癥和心肌細胞凋亡，從而減輕糖尿病心肌病癥狀［8］。由于金絲桃苷的抗炎活性，其對DFU也具有治療作用。本研究擬探討金絲桃苷對DFU模型大鼠創(chuàng)面愈合及AMPK/SIRT1 信號通路的影響，為DFU的治療提供參考。

1 材料與方法

1.1 實驗動物 SPF 級SD 大鼠（雌雄不限）60 只，7~8 周齡，體質量235~256 g，購自江蘇瀚江生物科技有限公司，生產許可證號：SCXK（蘇）2021-0004，大鼠均飼養(yǎng)于室溫22~26 ℃，相對濕度60%~70%，12 h光暗交替的飼養(yǎng)房中。本研究經張家口學院倫理委員會批準（倫理號：倫理審核2022-078）。

1.2 主要藥物、試劑及儀器 金絲桃苷（原料藥，純度≥99.5%）購自商丘美蘭生物工程有限公司；二甲雙胍片（0.25 g/片）購自深圳中聯制藥有限公司；高糖高脂飼料購自北京惠特比科技發(fā)展有限公司；鏈脲佐菌素（STZ）、IL-6、TNF-α 酶聯免疫吸附試驗（ELISA）試劑盒、HE 染色試劑盒、PCR 試劑盒、蛋白裂解液均購自昆山遠慕生物科技有限公司；Trizol試劑、反轉錄試劑盒、BCA試劑盒、ECL發(fā)光液均購自西安淳風生物科技有限公司；兔源AMPK、SIRT1、GAPDH一抗，羊抗兔二抗（批號分別為BK19402、BK01295、BK01856、BK11042）均購自南京標科生物科技有限公司。小動物血糖儀（型號Biosen C）、酶標儀（型號K6600-A）、顯微鏡（型號SS-NEX）、熒光定量PCR 儀（型號CG-05）均購自上海奧陸生物科技有限公司；凝膠成像系統（型號FluorChem E）購自杭州九洋生物科技有限公司。

1.3 實驗方法

1.3.1 DFU 建模及分組給藥 大鼠適應性喂養(yǎng)1 周后構建DFU大鼠模型［9］，方法如下：大鼠給予高糖高脂飼料（60%普通飼料、20%蔗糖、10%蛋黃粉、10%豬油）喂養(yǎng)4周后禁食不禁水12 h，一次性腹腔注射65 mg/kg STZ，繼續(xù)以高糖高脂飼料喂養(yǎng)1周，檢測大鼠空腹血糖（FBG），兩次FBG＞16.7 mmol/L視為糖尿病大鼠造模成功。隨后腹腔注射3%戊巴比妥鈉麻醉大鼠，消毒足背部，然后用印章在大鼠足背部標記一個7 mm×3 mm 的矩形，剪除矩形范圍內皮膚并深至筋膜，以制備DFU大鼠模型。48只大鼠造模成功，按隨機數字表法分為模型組，金絲桃苷低、高劑量組，二甲雙胍組，每組12只。另取12 只大鼠作為對照組，以普通飼料（80%玉米、20%麥麩）喂養(yǎng)4周，然后一次性腹腔注射65 mg/kg生理鹽水，接著以相同方法制備一個7 mm×3 mm的矩形創(chuàng)面。

建模完成后，金絲桃苷低、高劑量組分別給予100、200 mg/kg 金絲桃苷灌胃給藥［10］（將金絲桃苷和生理鹽水混溶成質量濃度分別為10 g/L、20 g/L的混懸液，以10 mL/kg 灌胃）；二甲雙胍組給予200 mg/kg 二甲雙胍灌胃給藥［11］（將二甲雙胍片和生理鹽水混溶成濃度為20 g/L 的混懸液，以10 mL/kg灌胃）；對照組和模型組大鼠灌胃等體積生理鹽水。各組給藥每日1次，連續(xù)4周。

1.3.2 FBG 水平測定 分別于大鼠給藥前后采集大鼠尾靜脈血1 mL，采用血糖儀檢測FBG水平。

1.3.3 血清TNF-α、IL-6水平測定 給藥結束后，麻醉大鼠，腹主動脈取血3 mL，4 ℃、5 600 r/min離心12 min，取上清液，按照ELISA 試劑盒說明書操作方法檢測大鼠血清TNF-α、IL-6水平。

1.3.4 創(chuàng)面愈合率的測定 分別于給藥前和給藥后對大鼠傷口拍照，使用Image J 軟件測量傷口面積，計算創(chuàng)面愈合率，創(chuàng)面愈合率（%）=［1-（給藥后傷口面積/給藥前傷口面積）］×100%。

1.3.5 創(chuàng)面肉芽組織病理學觀察 收集大鼠創(chuàng)面肉芽組織，分為兩部分，一部分置于-80 ℃冰箱中保存；另一部分用4%多聚甲醛固定，石蠟包埋，切片（厚度4μm），HE染色，每張切片隨機讀取6個視野，顯微鏡下觀察大鼠創(chuàng)面肉芽組織病理學變化。

1.3.6 創(chuàng)面肉芽組織中AMPK、SIRT1 mRNA 表達檢測 取1.3.5中-80 ℃保存的大鼠創(chuàng)面肉芽組織，解凍，勻漿，Trizol試劑提取肉芽組織中的總RNA，反轉錄合成cDNA。熒光定量PCR（qPCR）法檢測大鼠肉芽組織中AMPK、SIRT1 mRNA 表達水平，內參為GAPDH。引物由蘇州拓維生物技術有限公司設計合成，引物序列見表1。參照PCR 試劑盒說明書配置反應體系及環(huán)境，AMPK、SIRT1 mRNA表達水平采用2-ΔΔCt法分析計算。樣本重復3次。

Tab.1 Primer sequence for qPCR表1 qPCR引物序列

1.3.7 創(chuàng)面肉芽組織中AMPK、SIRT1 蛋白表達水平的測定 取1.3.5中大鼠創(chuàng)面肉芽組織，解凍，勻漿，裂解緩沖液中裂解，BCA試劑盒定量總蛋白。電泳分離每個樣品中等量的蛋白質（30 μg）后轉膜，5%脫脂奶粉封閉1 h，加入兔源AMPK（1︰750）、SIRT1（1︰900）、GAPDH（1︰1 150）一抗，4 ℃下過夜；次日加入羊抗兔二抗（1︰2 100），室溫下孵育1 h，ECL 試劑顯影，Image J 軟件分析條帶灰度值。以GAPDH 為內參，計算AMPK、SIRT1蛋白表達水平。樣本重復3次。

1.4 統計學方法 使用SPSS 24.0 軟件進行數據分析，計量資料以均數±標準差（）表示，多組間比較采用單因素方差分析，組間多重比較行SNK-q檢驗，P＜0.05為差異有統計學意義。

2 結果

2.1 各組大鼠FBG水平比較 給藥前，與對照組相比，模型組大鼠FBG水平升高（P＜0.05），模型組，金絲桃苷低、高劑量組，二甲雙胍組大鼠FBG水平差異無統計學意義（P＞0.05）。給藥后，與對照組相比，模型組大鼠FBG 水平升高（P＜0.05）；與模型組相比，金絲桃苷低、高劑量組大鼠FBG 水平依次降低（P＜0.05）；二甲雙胍組和金絲桃苷高劑量組FBG水平差異無統計學意義（P＞0.05）。見表2。

Tab.2 Comparison of FBG levels of rats between five groups表2 各組大鼠給藥前后FBG水平比較（n=12，mmol/L，）

Tab.2 Comparison of FBG levels of rats between five groups表2 各組大鼠給藥前后FBG水平比較（n=12，mmol/L，）

＊＊P＜0.01；a與對照組比較，b與模型組比較，c與金絲桃苷低劑量組比較，P＜0.05；表3—5同。

組別對照組模型組金絲桃苷低劑量組金絲桃苷高劑量組二甲雙胍組F給藥前5.03±0.71 22.35±4.19a 21.97±4.02a 22.58±3.98a 21.86±3.67a 55.700＊＊給藥后5.11±0.63 21.86±4.05a 15.97±3.11b 9.69±1.93bc 9.85±2.06bc 73.685＊＊

2.2 各組大鼠血清中TNF-α、IL-6水平比較 與對照組相比，模型組大鼠血清中TNF-α、IL-6 水平升高（P＜0.05）；與模型組相比，金絲桃苷低、高劑量組大鼠血清中TNF-α、IL-6 水平依次降低（P＜0.05）；二甲雙胍組和金絲桃苷高劑量組TNF-α、IL-6 水平差異無統計學意義（P＞0.05）。見表3。

Tab.3 Comparison of serum levels of TNF-α and IL-6 between five groups表3 各組大鼠血清中TNF-α、IL-6水平比較（n=12，ng/L，）

Tab.3 Comparison of serum levels of TNF-α and IL-6 between five groups表3 各組大鼠血清中TNF-α、IL-6水平比較（n=12，ng/L，）

組別對照組模型組金絲桃苷低劑量組金絲桃苷高劑量組二甲雙胍組F TNF-α 12.24±1.55 25.46±2.68a 20.49±2.12b 15.27±2.04bc 15.42±1.97bc 73.833＊＊IL-6 15.59±1.24 35.64±3.36a 27.24±2.93b 19.88±2.05bc 20.03±2.31bc 120.640＊＊

2.3 各組大鼠創(chuàng)面愈合率比較 對照組、模型組、金絲桃苷低劑量組、金絲桃苷高劑量組、二甲雙胍組大鼠創(chuàng)面愈合率分別為37.49%±3.57%、12.65%±2.01%、21.58%±2.47%、29.25%±2.90%、29.35%±3.04%，5組大鼠創(chuàng)面愈合率比較差異有統計學意義（F=130.081，P＜0.01）。與對照組相比，模型組大鼠創(chuàng)面愈合率降低（P＜0.05）；與模型組相比，金絲桃苷低、高劑量組創(chuàng)面愈合率依次升高（P＜0.05）；二甲雙胍組和金絲桃苷高劑量組創(chuàng)面愈合率差異無統計學意義（P＞0.05）。見圖1。

Fig.1 Wound healing of rats in each group after administration圖1 各組大鼠給藥后傷口愈合情況

2.4 各組大鼠創(chuàng)面肉芽組織病理學變化 對照組大鼠創(chuàng)面肉芽組織細胞結構完整，排列整齊，炎性細胞浸潤少；模型組大鼠創(chuàng)面肉芽組織成纖維細胞及毛細血管壞死嚴重，伴隨大量炎性細胞浸潤；金絲桃苷低、高劑量組創(chuàng)面肉芽組織上述病理學變化程度依次減輕；二甲雙胍組和金絲桃苷高劑量組創(chuàng)面肉芽組織病理學變化無明顯差異。見圖2。

Fig.2 Histopathological changes of wound granulation tissue of rats in each group(HE staining,×400)圖2 各組大鼠創(chuàng)面肉芽組織病理學變化情況（HE染色，×400）

2.5 各組大鼠創(chuàng)面肉芽組織中AMPK、SIRT1 mRNA表達水平比較 與對照組相比，模型組大鼠創(chuàng)面肉芽組織中AMPK、SIRT1 mRNA 表達水平降低（P＜0.05）；與模型組相比，金絲桃苷低、高劑量組大鼠創(chuàng)面肉芽組織中AMPK、SIRT1 mRNA表達水平依次升高（P＜0.05）；二甲雙胍組和金絲桃苷高劑量組兩因子表達水平差異無統計學意義（P＞0.05）。見表4。

Tab.4 Comparison of mRNA expression levels of AMPK and SIRT1 in wound granulation tissue of rats between five groups表4 各組大鼠創(chuàng)面肉芽組織中AMPK、SIRT1 mRNA表達水平比較（n=12，）

Tab.4 Comparison of mRNA expression levels of AMPK and SIRT1 in wound granulation tissue of rats between five groups表4 各組大鼠創(chuàng)面肉芽組織中AMPK、SIRT1 mRNA表達水平比較（n=12，）

組別對照組模型組金絲桃苷低劑量組金絲桃苷高劑量組二甲雙胍組F AMPK mRNA 1.00±0.00 0.31±0.02a 0.52±0.04b 0.71±0.06bc 0.72±0.08bc 329.350＊＊SIRT1 mRNA 1.00±0.00 0.34±0.03a 0.55±0.06b 0.85±0.08bc 0.87±0.10bc 208.909＊＊

2.6 各組大鼠創(chuàng)面肉芽組織中AMPK、SIRT1 蛋白表達水平比較 與對照組相比，模型組大鼠創(chuàng)面肉芽組織中AMPK、SIRT1 蛋白表達水平降低（P＜0.05）；與模型組相比，金絲桃苷低、高劑量組創(chuàng)面肉芽組織中AMPK、SIRT1蛋白表達水平依次升高（P＜0.05）；二甲雙胍組和金絲桃苷高劑量組創(chuàng)面肉芽組織中AMPK、SIRT1蛋白表達水平差異無統計學意義（P＞0.05）。見圖3、表5。

Fig.3 Western blot assay of AMPK and SIRT1 in wound granulation tissue of rats in each group圖3 各組大鼠創(chuàng)面肉芽組織中AMPK、SIRT1蛋白免疫印跡圖

Tab.5 Comparison of protein expression levels of AMPK and SIRT1 in wound granulation tissue of rats between five groups表5 各組大鼠創(chuàng)面肉芽組織中AMPK、SIRT1蛋白表達水平比較（n=12，）

Tab.5 Comparison of protein expression levels of AMPK and SIRT1 in wound granulation tissue of rats between five groups表5 各組大鼠創(chuàng)面肉芽組織中AMPK、SIRT1蛋白表達水平比較（n=12，）

組別對照組模型組金絲桃苷低劑量組金絲桃苷高劑量組二甲雙胍組F AMPK 0.95±0.15 0.18±0.03a 0.39±0.05b 0.72±0.09bc 0.75±0.09bc 135.349＊＊SIRT1 1.34±0.17 0.31±0.04a 0.57±0.07b 0.98±0.11bc 1.03±0.10bc 171.997＊＊

3 討論

3.1 DFU 模型大鼠創(chuàng)面肉芽組織病變情況 DFU是糖尿病具有破壞性的并發(fā)癥，也是中晚期糖尿病患者感染、潰瘍或深部組織破壞的常見病因［12］。部分DFU 患者需要進行截肢手術，這極大地影響了患者的生活質量［13］。因此尋求DFU 的治療藥物意義重大。在DFU 創(chuàng)面愈合的早期階段，炎癥反應誘導中性粒細胞積聚，從而加速細菌和壞死組織的清除。在糖尿病患者中，傷口愈合的正常連續(xù)區(qū)域被破壞，傷口進入以持續(xù)發(fā)炎為特征的慢性非愈合狀態(tài)。炎性細胞的大量繁殖會導致促炎細胞因子的持續(xù)產生，從而使組織基質金屬蛋白酶表達失控，并明顯限制肉芽組織的形成和成熟［14］。因此，如炎癥得到有效抑制，將促進肉芽組織形成，有助于DFU 創(chuàng)面愈合。本研究發(fā)現DFU 模型大鼠創(chuàng)面肉芽組織成纖維細胞及毛細血管壞死嚴重，伴隨大量炎性細胞浸潤，FBG、血清中TNF-α、IL-6水平升高，創(chuàng)面愈合率降低。提示DFU 模型大鼠創(chuàng)面肉芽組織發(fā)生病變，愈合困難，同時伴隨高血糖和炎癥反應。

3.2 金絲桃苷可加快DFU 模型大鼠創(chuàng)面愈合 金絲桃苷具有抗炎、抗氧化及神經保護等藥用價值［15］。朱妍妍等［16］研究表明，金絲桃苷能通過激活Kelch樣環(huán)氧氯丙烷相關蛋白-1（Keap1）/核因子E2 相關因子2（Nrf2）/血紅素加氧酶-1（HO-1）信號通路，減輕過氧化氫誘導的小鼠精母細胞氧化損傷。申玲君等［17］研究發(fā)現，金絲桃苷能通過下調miRNA-199a來抑制脂多糖誘導的人肺泡上皮細胞凋亡和炎癥反應。本研究結果發(fā)現，金絲桃苷干預后的DFU 模型大鼠創(chuàng)面肉芽組織病變減輕，FBG、血清中TNF-α、IL-6 水平降低，創(chuàng)面愈合率升高。因此提示金絲桃苷能減輕DFU 模型大鼠血糖和炎癥反應，加快創(chuàng)面愈合。

3.3 金絲桃苷可調控AMPK/SIRT1信號通路 AMPK/SIRT1 信號通路是與能量代謝密切相關的通路［18］。張?zhí)N等［19］研究表明，N-乙酰半胱氨酸能激活AMPK/SIRT1 信號通路，緩解氧化應激和線粒體凋亡介導的腦血管內皮細胞損傷。同時，AMPK/SIRT1 信號通路在糖尿病中也起著調控作用。Li 等［20］研究發(fā)現，青蒿琥酯能通過激活AMPK/SIRT1信號通路，抑制糖尿病大鼠視網膜增厚，阻止視網膜屏障的形成。Xue 等［21］研究發(fā)現，羅漢果皂苷ⅢE 通過激活AMPK/SIRT1 信號通路緩解高糖誘導的足細胞炎癥和氧化應激。本研究發(fā)現，DFU 大鼠創(chuàng)面肉芽組織中AMPK、SIRT1 mRNA和蛋白表達水平較正常大鼠降低，經金絲桃苷處理后，AMPK、SIRT1 mRNA和蛋白表達水平升高；且金絲桃苷劑量越高，效果越明顯。結合上述研究結果，本研究認為金絲桃苷對DFU 大鼠創(chuàng)面愈合的改善情況可能與激活AMPK/SIRT1信號通路有關。

綜上所述，金絲桃苷能減輕DFU 大鼠炎癥反應，加快創(chuàng)面愈合，這一作用可能是通過激活AMPK/SIRT1信號通路來實現的。然而金絲桃苷能否通過其他通路加速DFU大鼠創(chuàng)面愈合還有待深入研究。