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        芍藥甘草湯對(duì)急性肺損傷大鼠腸道菌群的影響Δ

        2023-09-14 01:01:28張甘純宋信莉劉興德舒萬(wàn)芬王洪鑫貴州中醫(yī)藥大學(xué)藥學(xué)院貴陽(yáng)550025貴州醫(yī)科大學(xué)藥學(xué)院貴陽(yáng)550025
        中國(guó)藥房 2023年17期
        關(guān)鍵詞:厚壁菌門(mén)菌群

        張甘純 ,劉 文 ,宋信莉 ,劉興德 ,舒萬(wàn)芬 ,秦 琴 ,王洪鑫 (.貴州中醫(yī)藥大學(xué)藥學(xué)院,貴陽(yáng) 550025;2.貴州醫(yī)科大學(xué)藥學(xué)院,貴陽(yáng) 550025)

        急性肺損傷(acute lung injury,ALI)是一種常見(jiàn)而復(fù)雜的炎癥性疾病,由肺內(nèi)外各種致病因素引起。其特征是急性、進(jìn)行性呼吸窘迫和持續(xù)低氧血癥,病死率高達(dá)40%[1]。機(jī)械通氣和激素給藥是目前較為有效的ALI治療方案[2],但仍缺乏副作用較小的有效治療藥物。ALI屬于中醫(yī)“爆喘”“喘脫”范疇[3],治療上主要涉及清熱解毒、活血化瘀、益氣扶正等中藥及方劑[4]。芍藥甘草湯(Shaoyao gancao decoction,SGD)源于張仲景之《傷寒雜病論》,2018年作為第一批經(jīng)典名方收錄在《古代經(jīng)典名方目錄》中。該方由芍藥和炙甘草2味藥材組成。方中白芍性微寒,能夠養(yǎng)血調(diào)經(jīng)、斂陰止汗;甘草性平,能夠補(bǔ)脾益氣、清熱解毒、緩急止痛。現(xiàn)代研究和臨床實(shí)踐也證實(shí),SGD具有顯著的抗炎、鎮(zhèn)痛、止咳、平喘、調(diào)節(jié)免疫等作用,對(duì)多種炎癥性疾病有顯著的治療作用[5]。選用SGD治療ALI具有中醫(yī)理論與現(xiàn)代研究基礎(chǔ)。

        肺腸軸理論與中醫(yī)基礎(chǔ)理論“肺與大腸相表里”揭示了肺臟與胃腸道的關(guān)聯(lián)性,二者胚胎起源相同、結(jié)構(gòu)相似[6]?,F(xiàn)代研究亦證實(shí)肺和腸道在生理和病理?xiàng)l件下相互影響。如近年研究表明,腸道微生物能夠影響肺功能,參與多種肺系疾病,包括支氣管哮喘、肺癌、ALI和慢性阻塞性肺疾病等[7]。而肺部疾病也可表現(xiàn)出腸道菌群改變的特征,如采用糞菌移植治療手段可顯著降低Toll樣受體4/核因子κB 信號(hào)通路活性和氧化應(yīng)激水平,從而改善脂多糖(lipopolysaccharide,LPS)誘導(dǎo)的ALI[8]??梢?jiàn),機(jī)體腸道菌群的改變對(duì)于肺部疾病的發(fā)生、發(fā)展和治療都起著重要作用。本研究擬探討SGD 對(duì)ALI 大鼠腸道菌群的影響,從而闡明其防治ALI 的作用機(jī)制,為中醫(yī)藥治療ALI提供實(shí)驗(yàn)依據(jù)。

        1 材料

        1.1 主要儀器

        本研究所用主要儀器為FlexStation3 型多功能酶標(biāo)儀(美國(guó)Molecular Devices公司)、AE/240型十萬(wàn)分之一電子天平[梅特勒-托利多(上海)儀器有限公司]、KQ-500DE型數(shù)控超聲波清洗器(昆山市超聲儀器有限公司)、H1650R型冷凍高速離心機(jī)(湘潭湘儀儀器有限公司)。

        1.2 主要藥品與試劑

        白芍(批號(hào)220101)、炙甘草(批號(hào)210601)飲片均購(gòu)自貴州一品藥業(yè)連鎖有限公司,經(jīng)貴州中醫(yī)藥大學(xué)藥學(xué)院孫慶文教授鑒定白芍為毛茛科植物芍藥PaeonialactifloraPall.的干燥根,炙甘草為豆科植物甘草GlycyrrhizauralensisFisch.的干燥根和根莖的炮制加工品。地塞米松(dexamethasone,DEX)原料藥(批號(hào)C13694947,純度≥98%)購(gòu)自上海麥克林生化科技有限公司;LPS(批號(hào)527N031)購(gòu)自上海索萊寶生物科技有限公司;白細(xì)胞介素1β(interleukin-1β,IL-1β)、IL-6、腫瘤壞死因子α(tumor necrosis factor-α,TNF-α)酶聯(lián)免疫吸附檢測(cè)(enzyme-linked immunosorbent assay,ELISA)試劑盒(批號(hào)分別為ZC-36391、ZC-36404、ZC-37624)購(gòu)自上海茁彩生物科技有限公司。

        1.3 動(dòng)物

        本研究所用動(dòng)物為SPF 級(jí)雄性大鼠,共60 只,體重(200±20) g,由北京華阜康生物科技有限公司提供,動(dòng)物生產(chǎn)許可證號(hào)為SCXK(京)2019-0008。大鼠飼養(yǎng)于通風(fēng)良好、室溫18~25 ℃、相對(duì)濕度50%~70%的動(dòng)物房中,飼養(yǎng)期間確保大鼠能夠自由進(jìn)食與飲水。本動(dòng)物實(shí)驗(yàn)獲得了貴州中醫(yī)藥大學(xué)動(dòng)物實(shí)驗(yàn)倫理委員會(huì)批準(zhǔn)(倫理批準(zhǔn)號(hào)20210133)。

        2 方法

        2.1 SGD的制備

        SGD由白芍和炙甘草按1∶1(m/m)配伍組成。稱(chēng)取白芍、炙甘草各55 g,加入600 mL水[9],浸泡30 min,用電陶爐以武火(1 200 W)煮沸后再以文火(600 W)煎煮至300 mL,濾液減壓濃縮,得到按生藥量計(jì)為2.0 g/mL 的SGD藥液,置于4 ℃冰箱中保存?zhèn)溆谩?/p>

        2.2 大鼠分組、給藥及ALI模型建立

        將60只大鼠按隨機(jī)數(shù)字表法分為正常組(CON組,生理鹽水)、模型組(MOD 組,生理鹽水)、陽(yáng)性對(duì)照組(DEX 組,5 mg/kg 地塞米松)[10]和芍藥甘草湯低、中、高劑量組(SGD-L、SGD-M、SGD-H 組,給藥劑量以生藥量計(jì)分別為5.8、11.6、23.2 g/kg,分別為臨床等效劑量的0.5、1、2倍[9]),每組10只。各組大鼠每天灌胃1次,灌胃體積均為10 mL/kg,連續(xù)7 d。末次給藥30 min后,CON組大鼠氣道滴注等體積的生理鹽水,其余各組大鼠氣道滴注LPS(5 mg/kg)建立ALI模型[10]。

        2.3 樣本采集

        造模12 h 后,麻醉大鼠,經(jīng)氣管注射冰磷酸鹽緩沖液5 mL灌洗左肺,30 s后緩慢回抽,重復(fù)2次,收集肺泡灌洗液(bronchial alveolar lavage fluid,BALF)并置于離心管中,在4 ℃下以3 000 r/min離心15 min,取上清液置于-80 ℃冰箱中保存?zhèn)溆?。隨后取右肺上葉用于病理形態(tài)學(xué)觀察,右肺下葉則用于計(jì)算肺組織濕/干重比。取糞便置于-80 ℃冰箱中凍存?zhèn)溆谩?/p>

        2.4 肺組織病理形態(tài)學(xué)觀察

        取右肺上葉組織用5%多聚甲醛固定、梯度乙醇脫水、常規(guī)石蠟包埋、切片(厚度4 μm)后,以蘇木素-伊紅(hematoxylin-eosin,HE)染色,然后在光學(xué)顯微鏡下對(duì)肺組織進(jìn)行病理形態(tài)學(xué)觀察。

        2.5 肺組織濕/干重比計(jì)算

        取右肺下葉用生理鹽水清洗后吸干水分,稱(chēng)重,得濕重。然后將肺組織置于干燥箱中,70 ℃干燥48 h,稱(chēng)重,得干重。計(jì)算肺組織濕/干重比,即肺組織濕重/肺組織干重×100%。

        2.6 BALF中炎癥因子水平檢測(cè)

        取“2.3”項(xiàng)下BALF,采用ELISA 法檢測(cè)大鼠BALF中TNF-α、IL-6和IL-1β水平,具體操作根據(jù)相應(yīng)試劑盒說(shuō)明書(shū)進(jìn)行。

        2.7 腸道菌群檢測(cè)

        以CON組、MOD組和藥效最優(yōu)的SGD劑量組大鼠的糞便為檢測(cè)樣本(每組隨機(jī)選擇6只大鼠的樣本進(jìn)行檢測(cè)),委托杭州聯(lián)川生物技術(shù)股份有限公司進(jìn)行16S rRNA 測(cè)序和生物信息學(xué)分析。對(duì)糞便樣本進(jìn)行DNA提取后,采用引物341F(5′-CCTACGGGNGGCWGCAG-3′)和805R(5′-GACTACHVGGGTATCTAATCC-3′)對(duì)可變區(qū)(V3~V4)擴(kuò)增,之后在lllumina MiSeq平臺(tái)測(cè)序,按照相似度97%聚類(lèi),獲得操作分類(lèi)單元(operational taxonomic units,OTUs)。對(duì)所獲OTUs進(jìn)行分類(lèi)學(xué)注釋并生成不同分類(lèi)水平下的物種豐度,利用Mothur軟件計(jì)算樣品的Observed-species、Shannon、Simpson、Chao1 和Goods-coverage指數(shù),分析單個(gè)樣品內(nèi)部的物種多樣性,即Alpha多樣性;基于weighted UniFrac算法中的主坐標(biāo)分析(principal co-ordinates analysis,PCoA)和非度量多維標(biāo)度分析(non-metric multidimensional scaling,NMDS)比較不同樣品在物種多樣性方面的相似程度,即Beta 多樣性;最后,通過(guò)線(xiàn)性判別分析進(jìn)行效應(yīng)大小[linear discriminant analysis(LDA) effect size,LEfSe]分析并尋找差異菌群(以L(fǎng)DA score log10>4為標(biāo)準(zhǔn))。

        2.8 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法

        采用SPSS 21.0軟件對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。符合正態(tài)分布的計(jì)量資料用±s表示,多組間比較采用單因素方差分析,組間兩兩比較采用LSD-t檢驗(yàn),檢驗(yàn)水準(zhǔn)α=0.05。為了確定在ALI 進(jìn)展中起作用的關(guān)鍵菌群,將MOD 組和SGD-L 組的差異菌屬與炎癥因子進(jìn)行Pearson相關(guān)性分析。

        3 結(jié)果

        3.1 大鼠肺組織病理形態(tài)學(xué)變化觀察結(jié)果

        CON 組大鼠肺組織結(jié)構(gòu)正常,未見(jiàn)明顯水腫、炎癥細(xì)胞浸潤(rùn)或纖維結(jié)締組織增生,肺泡上皮細(xì)胞形態(tài)較為正常,未見(jiàn)明顯變性、壞死,間質(zhì)未見(jiàn)明顯炎癥細(xì)胞浸潤(rùn)及纖維組織增生;MOD組大鼠肺組織可見(jiàn)肺泡隔增厚,肺泡輕微水腫伴大量炎癥細(xì)胞浸潤(rùn),且以淋巴細(xì)胞和中性粒細(xì)胞為主,血管周?chē)g質(zhì)性水腫,說(shuō)明ALI 模型復(fù)制成功;與MOD組比較,各給藥組大鼠的肺組織病變程度均明顯減輕,具體表現(xiàn)為肺組織炎癥細(xì)胞浸潤(rùn)減少、肺泡隔增厚和肺泡水腫情況有所改善。結(jié)果見(jiàn)圖1。

        圖1 各組大鼠肺組織病理形態(tài)學(xué)觀察的顯微圖(HE染色,×200)

        3.2 大鼠肺組織濕/干重比計(jì)算結(jié)果

        與CON組比較,MOD組大鼠肺組織濕/干重比顯著升高(P<0.01);與MOD 組比較,各給藥組大鼠的肺組織濕/干重比均顯著降低(P<0.05 或P<0.01)。結(jié)果見(jiàn)表1。

        表1 各組大肺組織濕/干重比和BALF 中IL-1β、IL-6、TNF-α水平測(cè)定結(jié)果(±s,n=10)

        表1 各組大肺組織濕/干重比和BALF 中IL-1β、IL-6、TNF-α水平測(cè)定結(jié)果(±s,n=10)

        a:與CON組比較,P<0.01;b:與MOD比較,P<0.01;c:與MOD組比較,P<0.05。

        TNF-α/(pg/mL)22.19±5.27 90.27±6.80a 42.66±5.03b 54.04±5.65b 59.44±16.67b 67.50±10.50b組別CON組MOD組DEX組SGD-L組SGD-M組SGD-H組肺組織濕/干重比/%6.80±0.59 8.23±0.62a 7.31±0.64b 7.40±0.68b 7.53±0.63c 7.58±0.60c IL-1β/(pg/mL)12.62±0.77 33.07±3.12a 23.34±2.29b 22.19±3.63b 24.57±3.17b 28.22±3.65b IL-6/(pg/mL)33.41±9.58 137.33±12.39a 69.03±7.89b 86.49±9.67b 99.19±12.49b 104.24±14.12b

        3.3 大鼠BALF中炎癥因子水平測(cè)定結(jié)果

        與CON 組比較,MOD 組大鼠BALF 中IL-1β、IL-6、TNF-α水平顯著升高(P<0.01)。與MOD組比較,各給藥組大鼠BALF 中上述炎癥因子水平均顯著降低(P<0.01)。結(jié)果見(jiàn)表1。

        3.4 大鼠腸道菌群分析結(jié)果

        3.4.1 Alpha多樣性分析結(jié)果

        如表2 所示,各組樣本的Goods-coverage 指數(shù)均大于0.98,表明測(cè)序結(jié)果良好,能夠反映各樣本的微生物群落情況[11]。與CON 組比較,MOD 組的Observedspecies、Shannon、Simpson、Chao1 指數(shù)均顯著降低(P<0.01),說(shuō)明ALI 大鼠腸道內(nèi)菌群的豐富度和多樣性降低。與MOD 組比較,SGD-L 組上述4 項(xiàng)指數(shù)均顯著升高(P<0.05或P<0.01),表明SGD能夠增加ALI大鼠腸道內(nèi)菌群的豐富度和多樣性,恢復(fù)其菌群結(jié)構(gòu)。

        表2 各組大鼠腸道菌群的Alpha 多樣性分析結(jié)果(n=6)

        3.4.2 Beta多樣性分析結(jié)果

        在PCoA 圖和NMDS 圖中,各組樣本內(nèi)部均能夠顯著聚類(lèi),表明各組樣本內(nèi)部腸道菌群趨于一致。CON組和MOD 組的菌群結(jié)構(gòu)組成差異顯著(P<0.05),表明ALI大鼠的腸道菌群結(jié)構(gòu)發(fā)生了紊亂;SGD-L組的腸道菌群結(jié)構(gòu)偏離了MOD 組,并趨向CON 組,表明經(jīng)SGD干預(yù)后,ALI大鼠的腸道菌群結(jié)構(gòu)向正常狀態(tài)回調(diào)。結(jié)果見(jiàn)圖2。

        圖2 各組大鼠腸道菌群的Beta多樣性分析結(jié)果

        3.4.3 腸道菌群結(jié)構(gòu)分析結(jié)果

        如圖3所示,在門(mén)水平下與CON組比較,MOD組大鼠糞便中擬桿菌門(mén)(Bacteroidota)和變形菌門(mén)(Proteobacteria)的相對(duì)豐度顯著升高(P<0.01),厚壁菌門(mén)(Firmicutes)的相對(duì)豐度顯著降低(P<0.01);與MOD 組比較,SGD-L組大鼠糞便中擬桿菌門(mén)和變形菌門(mén)的相對(duì)豐度顯著降低(P<0.01),厚壁菌門(mén)的相對(duì)豐度顯著升高(P<0.01)。

        圖3 各組大鼠糞便中門(mén)水平菌群物種的相對(duì)豐度結(jié)果

        如圖4所示,在屬水平下與CON組比較,MOD組大鼠糞便中乳桿菌屬(Lactobacillus)、大腸埃氏菌屬-志賀氏菌屬(Escherichia-Shigella)和鏈球菌屬(Streptococcus)的相對(duì)豐度顯著升高(P<0.05 或P<0.01),梭狀芽孢桿菌屬(Clostridia_UCG-014)、毛螺菌屬(Lachnospira ceae_NK4A136_group)、厚壁菌屬(Firmicutes)的相對(duì)豐度顯著降低(P<0.05 或P<0.01);與MOD 組比較,SGD-L 組大鼠糞便中乳桿菌屬、大腸埃氏菌屬-志賀氏菌屬和鏈球菌屬的相對(duì)豐度顯著降低(P<0.05 或P<0.01),梭狀芽孢桿菌屬、毛螺菌屬、瘤胃球菌屬(Ruminococcus)、杜氏桿菌屬(Dubosiella)、阿克曼菌屬(Akkermansia)的相對(duì)豐度顯著升高(P<0.05 或P<0.01)。上述結(jié)果表明,SGD 能夠逆轉(zhuǎn)ALI 大鼠的腸道菌群紊亂,并使其恢復(fù)到與正常情況相似的菌群結(jié)構(gòu)。

        圖4 各組大鼠糞便中屬水平菌群物種的相對(duì)豐度

        3.4.4 菌群差異分析結(jié)果

        CON 組與MOD 組、MOD 組與SGD-L 組大鼠的腸道菌群組成和結(jié)構(gòu)均存在顯著差異。相比于CON 組,MOD 組的差異菌屬為乳桿菌屬、鏈球菌屬和大腸埃氏菌屬-志賀氏菌屬;相比于MOD 組,SGD-L 組的差異菌屬為厚壁菌屬、毛螺菌屬、瘤胃球菌屬、梭狀芽孢桿菌屬、杜氏桿菌屬、阿克曼菌屬。這些菌群可能作為ALI的生物標(biāo)志物和SGD改善ALI的腸道指標(biāo)。結(jié)果見(jiàn)圖5。

        圖5 3組大鼠糞便中的差異菌屬分析結(jié)果

        3.4.5 腸道菌群與炎癥因子的相關(guān)性分析結(jié)果

        乳桿菌屬、鏈球菌屬、大腸埃氏菌屬-志賀氏菌屬的相對(duì)豐度與炎癥因子IL-1β、IL-6、TNF-α 的水平呈顯著正相關(guān)(P<0.05或P<0.01);毛螺菌屬、杜氏桿菌屬、厚壁菌屬的相對(duì)豐度與上述炎癥因子的水平呈顯著負(fù)相關(guān)(P<0.05或P<0.01)。結(jié)果見(jiàn)圖6。

        圖6 差異菌屬與炎癥因子的相關(guān)性熱圖

        4 討論

        LPS 誘導(dǎo)的ALI 模型被認(rèn)為是一種重復(fù)性好、與臨床病理變化相似度高的動(dòng)物模型[12]。不同的LPS誘導(dǎo)方式與臨床ALI 的嚴(yán)重程度有一定的相關(guān)性。如氣管內(nèi)注射或鼻腔滴注LPS可直接誘導(dǎo)肺中性粒細(xì)胞募集,上調(diào)肺ALI炎癥因子,模擬ALI炎癥的初始癥狀。而腹腔內(nèi)注射LPS 可誘發(fā)全身膿毒性ALI,模擬更嚴(yán)重的臨床階段[13]。本研究采用氣道滴注LPS復(fù)制ALI模型,MOD組大鼠肺組織病理切片可見(jiàn)肺泡隔增厚、炎癥細(xì)胞浸潤(rùn)、肺間質(zhì)水腫等病理變化,說(shuō)明模型構(gòu)建成功。ALI的特點(diǎn)之一是漿液涌入肺泡腔,導(dǎo)致肺泡水腫[14]。為了量化肺水腫的程度,本研究檢測(cè)了肺組織濕/干重比,發(fā)現(xiàn)經(jīng)SGD 預(yù)處理后可降低肺組織濕/干重比,表明SGD 可減緩肺水腫的發(fā)展。

        維護(hù)機(jī)體內(nèi)炎癥環(huán)境的平衡及阻斷級(jí)聯(lián)放大的失控性炎癥反應(yīng)是防治ALI的重要策略[15]。IL-1β、IL-6和TNF-α 是ALI 發(fā)病過(guò)程中重要的炎癥因子[16],TNF-α 和IL-1β不僅放大了炎癥級(jí)聯(lián)反應(yīng),引起炎癥性損傷,還招募了中性粒細(xì)胞進(jìn)入肺部,并表現(xiàn)出髓過(guò)氧化物酶活性增加,從而加重了肺損傷[17]。研究發(fā)現(xiàn),IL-6水平是預(yù)測(cè)ALI 患者發(fā)病率和死亡率的重要指標(biāo)[18]。因此,抑制上述炎癥因子的表達(dá)可以起到減輕ALI 的作用。為了檢測(cè)SGD 對(duì)LPS 誘導(dǎo)的ALI 大鼠的抗炎作用,筆者采用ELISA 法檢測(cè)了大鼠BALF 中炎癥因子水平。結(jié)果顯示,SGD 明顯抑制了模型大鼠BALF 中IL-1β、IL-6 和TNF-α的產(chǎn)生,有效緩解了ALI的炎癥反應(yīng)。

        腸道菌群在ALI的發(fā)生發(fā)展和治療中起關(guān)鍵作用。人體腸道菌群在門(mén)水平下主要由厚壁菌門(mén)和擬桿菌門(mén)組成,其同樣也是大鼠腸道中最豐富的2個(gè)菌門(mén)。厚壁菌門(mén)的相對(duì)豐度降低與擬桿菌門(mén)的相對(duì)豐度升高常被認(rèn)為是菌群失調(diào)的標(biāo)志[19]。厚壁菌門(mén)和擬桿菌門(mén)主要參與宿主體內(nèi)脂肪和膽汁酸代謝的調(diào)節(jié),維持能量平衡,其中前者能夠幫助身體吸收和儲(chǔ)存能量,而后者則相反[20]。也有研究表明,厚壁菌門(mén)與IL-17 信號(hào)通路和補(bǔ)體信號(hào)通路密切相關(guān),可能在免疫和炎癥的調(diào)節(jié)中起重要作用[21]。變形菌門(mén)是腸道的4 個(gè)主要菌門(mén)(厚壁菌門(mén)、擬桿菌門(mén)、變形菌門(mén)、放線(xiàn)菌門(mén))中隨時(shí)間變化最不穩(wěn)定的菌門(mén),其相對(duì)豐度被視為反映腸道菌群紊亂的標(biāo)志之一及潛在的疾病診斷指標(biāo)。變形菌門(mén)能夠有效利用炎癥反應(yīng)產(chǎn)生的硝酸鹽作為電子受體,進(jìn)行厭氧呼吸。因此在炎癥環(huán)境中,變形菌門(mén)比依賴(lài)發(fā)酵生長(zhǎng)的厚壁菌門(mén)和擬桿菌門(mén)更具增殖優(yōu)勢(shì),其過(guò)度生長(zhǎng)可進(jìn)一步加重局部炎癥反應(yīng)[22]。本研究發(fā)現(xiàn),MOD組大鼠糞便中厚壁菌門(mén)的相對(duì)豐度降低,擬桿菌門(mén)和變形菌門(mén)的相對(duì)豐度升高;經(jīng)SGD 干預(yù)后,逆轉(zhuǎn)了這種趨勢(shì),使SGD-L組大鼠恢復(fù)到了與CON組相似的菌群結(jié)構(gòu)。

        宿主體內(nèi)許多促炎因子的產(chǎn)生都是由腸道微生物群誘導(dǎo)的,如鏈球菌及其細(xì)胞壁成分已被證明可誘導(dǎo)TNF-α 和IL-1β 分泌,鏈球菌及其家族的多個(gè)成員與肺功能下降有關(guān)[23];乳桿菌能在人淋巴細(xì)胞中誘導(dǎo)IL-6和TNF-α 分泌[24];過(guò)度生長(zhǎng)的大腸埃希菌可以促進(jìn)趨化因子配體5及CXC趨化因子配體1的表達(dá),從而加重炎癥損傷的程度[22]。而部分益生菌(如瘤胃球菌屬、杜氏桿菌屬、毛螺菌屬)可以抑制炎癥細(xì)胞因子的表達(dá),以抑制炎癥發(fā)生[25]。本研究中,菌群與炎癥因子的相關(guān)性分析結(jié)果顯示,差異菌屬與炎癥因子具有顯著的相關(guān)性。這提示SGD可能通過(guò)恢復(fù)菌群結(jié)構(gòu)、調(diào)節(jié)有害菌與有益菌比例發(fā)揮抗炎作用。如阿克曼菌是一種黏液降解菌,對(duì)維持腸黏膜的完整性起到了重要作用。而腸道屏障的損壞可能導(dǎo)致微生物轉(zhuǎn)運(yùn)到血液中,并使炎癥反應(yīng)持續(xù),從而加劇肺損傷[26]。這提示SGD可能通過(guò)維持腸道穩(wěn)態(tài),發(fā)揮抗ALI作用。

        綜上所述,SGD 可能通過(guò)改善肺組織損傷、減輕炎癥反應(yīng)、調(diào)節(jié)菌群結(jié)構(gòu)來(lái)發(fā)揮改善ALI的作用。然而在本研究中,藥效學(xué)結(jié)果出現(xiàn)劑量和效應(yīng)“倒掛”的現(xiàn)象,這可能是中藥提取物產(chǎn)生的雙向調(diào)節(jié)作用,具體原因有待進(jìn)一步分析。此外,本研究并未對(duì)在腸道菌群研究中確定的差異菌屬進(jìn)行單獨(dú)驗(yàn)證,后續(xù)可開(kāi)展驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)對(duì)本研究結(jié)果加以證實(shí)。

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