王銳麒 王碩 徐慶陽
摘要:在L-谷氨酸發(fā)酵中,磷酸鹽和生物素的添加量直接影響著谷氨酸棒狀桿菌的菌體生長和菌體轉(zhuǎn)型,生物素和磷酸鹽的含量過多或過少都會(huì)直接影響L-谷氨酸的產(chǎn)量,為緩解這一問題,提出了調(diào)配磷酸鹽與生物素的最適濃度配比(PVH)的策略控制發(fā)酵。為了確定發(fā)酵過程中生物素和磷酸鹽的準(zhǔn)確含量,利用單因素實(shí)驗(yàn)對(duì)磷酸鹽與生物素的濃度配比進(jìn)行調(diào)整,以找出最有利于菌體快速生長和細(xì)胞迅速轉(zhuǎn)型的實(shí)驗(yàn)組。該實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)生物素濃度梯度為4,10,14 μg/L,磷酸鹽濃度梯度為3,5 g/L,通過實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),當(dāng)磷酸鹽與生物素濃度配比為5∶14時(shí),菌體量大,細(xì)胞轉(zhuǎn)型快,產(chǎn)酸多,糖酸轉(zhuǎn)化率高,在此條件下,最大OD600 nm達(dá)到82,較其他組分別提高了24%、47%、50%、65%,最終的菌體量為74,較其他組分別提高了29.7%、48.6%、54%、72%,L-谷氨酸的產(chǎn)量為86 g/L,相較于其他組分別提高了30%、45.3%、54.6%、80%。同時(shí),在最適PVH條件下常規(guī)發(fā)酵L-谷氨酸的實(shí)驗(yàn)中可以看出,其整體發(fā)酵水平高于其他非最適PVH組,該常規(guī)發(fā)酵實(shí)驗(yàn)中,L-谷氨酸產(chǎn)量高達(dá)178 g/L,轉(zhuǎn)化率達(dá)到77%,對(duì)于谷氨酸發(fā)酵具有借鑒意義。
關(guān)鍵詞:L-谷氨酸;生物素;磷酸鹽;糖酸轉(zhuǎn)化率;磷酸鹽與生物素濃度配比;常規(guī)發(fā)酵
中圖分類號(hào):TS201.24????? 文獻(xiàn)標(biāo)志碼:A???? 文章編號(hào):1000-9973(2023)08-0039-06
Study on the Effect of Optimum Concentration Ratio of Phosphate to Biotin on Glutamic Acid Fermentation
WANG Rui-qi1, WANG Shuo1, XU Qing-yang1,2,3*
(1.College of Bioengineering, Tianjin University of Science and Technology, Tianjin 300457, China;
2.Tianjin Engineering Laboratory of Efficient and Green Amino Acid Manufacturing,
Tianjin 300457, China; 3.National and Local United Engineering Laboratory of
Metabolic Control Fermentation Technology, Tianjin 300457, China)
Abstract: In the fermentation of L-glutamic acid, the addition amount of phosphate and biotin directly affects the bacterium growth and transformation of Corynebacterium glutamicum. Too much or too little biotin and phosphate will directly affect the yield of L-glutamic acid. In order to alleviate this problem, the optimal concentration ratio of phosphate to biotin (PVH) strategy is put forward to control the fermentation. In order to determine the accurate content of biotin and phosphate in the fermentation process, the concentration ratio of phosphate to biotin is adjusted by single factor experiment, so as to find out the experimental group which is most beneficial to the rapid growth of bacteria and the rapid transformation of cells. In this experiment, the concentration gradient of biotin is 4, 10, 14 μg/L, and the concentration gradient of phosphate is 3, 5 g/L. Through the experiment, it is found that when the concentration ratio of phosphate to biotin is 5∶14, the bacterial volume is large, cell transformation is fast, acid production is high, and sugar-acid conversion rate is high. Under such conditions, the maximum OD600 nm? reaches 82, which is 24%, 47%, 50%, 65% higher than that of the other groups respectively. The final bacterial volume is 74, which is 29.7%, 48.6%, 54%, 72% higher than that of the other groups respectively. The L-glutamate yield is 86 g/L, which is 30%, 45.3%, 54.6%, 80% higher than that of the other groups respectively. At the same time, in the experiment of conventional fermentation of L-glutamic acid under optimal PVH conditions, it can be seen that the overall fermentation level is higher than that of other non-optimal PVH groups. In this conventional fermentation experiment, the yield of L-glutamic acid is as high as 178 g/L and the conversion rate is as high as 77%, which has reference significance for glutamic acid fermentation.
Key words: L-glutamic acid; biotin; phosphate; sugar-acid conversion rate; phosphate to biotin concentration ratio; conventional fermentation
收稿日期:2023-02-27
基金項(xiàng)目:內(nèi)蒙古自治區(qū)科技計(jì)劃項(xiàng)目(2021GG0299);呼倫貝爾市“科技興市”重點(diǎn)專項(xiàng)(2021hzzx07)
作者簡介:王銳麒(1998-),男,碩士研究生,研究方向:代謝工程與發(fā)酵過程控制。
通信作者:徐慶陽(1980-),男,研究員,博士生導(dǎo)師,博士,研究方向:代謝工程與發(fā)酵過程控制。
L-谷氨酸在動(dòng)物大腦及谷類蛋白質(zhì)中含量豐富,對(duì)生物體的代謝進(jìn)程有著非常重大的影響[1]。這使得L-谷氨酸普遍運(yùn)用于食品、醫(yī)藥等各大行業(yè),其為全球范圍內(nèi)規(guī)模最龐大的氨基酸產(chǎn)品,使得其有非常光明的發(fā)展?jié)摿2-3]。但是,我國的發(fā)酵水平相較于國外,發(fā)酵產(chǎn)酸率較低,糖酸轉(zhuǎn)化率在60%左右,其主要是因?yàn)槲覈劝彼岚l(fā)酵行業(yè)中,不同批次玉米漿和糖蜜所提供的生物素含量不一,從而造成發(fā)酵過程中生物素含量難以控制,同時(shí)發(fā)酵過程中磷酸鹽含量影響菌體量的大小,只要發(fā)酵過程中生物素和磷酸鹽濃度搭配不一,就會(huì)導(dǎo)致菌體活力不足,產(chǎn)酸能力弱,因此,找出最適磷酸鹽與生物素濃度配比成為提高谷氨酸產(chǎn)量的關(guān)鍵因素[4-5]。
我國谷氨酸生產(chǎn)規(guī)模雖然占比大,生產(chǎn)技術(shù)比較先進(jìn),但還存在一些問題:國內(nèi)現(xiàn)有谷氨酸的生產(chǎn)菌株主要為溫度敏感型突變株。溫度敏感型突變株發(fā)酵培養(yǎng)基中玉米漿用量高,造成發(fā)酵過程中容易起泡,在發(fā)酵中后期容易染菌,提取過程中谷氨酸發(fā)酵液濃縮比低,產(chǎn)物收率低,初次結(jié)晶產(chǎn)品顏色深,含雜質(zhì)高;且種子培養(yǎng)周期長,工序多,造成染菌風(fēng)險(xiǎn)大。因此,本文選用生物素亞適量型[6]發(fā)酵谷氨酸工藝,該工藝玉米漿用量低,周期短,不容易出現(xiàn)染菌,產(chǎn)酸方面較穩(wěn)定,有著較優(yōu)秀的提取收率,產(chǎn)品品質(zhì)好。
生物素可充當(dāng)羧化、脫羧等多個(gè)場(chǎng)景的輔助因子,參與到機(jī)體代謝進(jìn)程中[7],磷酸鹽是極為關(guān)鍵的緩沖劑,對(duì)能量的儲(chǔ)存與傳遞等有著重大的影響[8]。據(jù)朱蕾蕾等研究發(fā)現(xiàn),在發(fā)酵過程中,生物素和磷酸鹽濃度過低或過高都會(huì)影響菌體生長和產(chǎn)酸量,當(dāng)生物素過多時(shí),不利于脂肪酸合成,進(jìn)而影響磷脂和細(xì)胞膜的合成[9],谷氨酸的產(chǎn)量降低;當(dāng)磷酸鹽濃度過低時(shí),菌體生長緩慢,耗糖慢,產(chǎn)酸低。
針對(duì)上述問題,此次研究中采用GDK-9為供試菌,通過單因素實(shí)驗(yàn),控制生物素和磷酸鹽的添加量,找到最適PVH(磷酸鹽與生物素的濃度配比),在最佳PVH的條件下,研究該最適PVH對(duì)常規(guī)谷氨酸發(fā)酵的影響。
1 材料與方法
1.1 菌種
L-谷氨酸生產(chǎn)菌:生物素亞適量型菌株黃色短桿菌GDK-9,本校相關(guān)科室負(fù)責(zé)存儲(chǔ)。
1.2 培養(yǎng)基
1.2.1 種子培養(yǎng)基
葡萄糖30 g/L;VH 3 μg/L;VB1 0.2 mg/L;FeSO4·5H2O 10 mg/L;(NH4)2SO4 1 g/L;MnSO4·H2O 10 mg/L;MgSO4·7H2O 1 g/L;K2HPO4·3H2O 3 g/L;精氨酸 0.3 g/L;賴氨酸0.3 g/L;蘇氨酸0.3 g/L;丙氨酸0.3 g/L;蛋氨酸0.3 g/L;苯丙氨酸0.3 g/L;氯化膽堿0.2 g/L;卡那霉素10 mg/L。
1.2.2 發(fā)酵培養(yǎng)基
葡萄糖40 g/L;(NH4)2SO4 6 g/L;VB1、VB2、VB3、VB5、VB12分別為2 mg/L;FeSO4·5H2O 10 mg/L;MnSO4·H2O 15 mg/L;MgSO4·7H2O 1.5 g/L;K2HPO4·3H2O(2.4,4.4 g/L)做梯度;生物素(1,7,11 μg/L)做梯度;氨基酸包 20 g/L;氯化膽堿 0.4 g/L;甜菜堿 0.2 g/L;卡那霉素 10 mg/L。
1.3 主要儀器
LDZH-100KBS全自動(dòng)高壓蒸汽滅菌器 天津博鑫生物科技有限公司;Biotech-5JG 5 L自動(dòng)控制發(fā)酵罐 上海保興生物設(shè)備工程有限公司;SBA-40E生物傳感分析儀 濟(jì)南延和生物科技有限公司;UV1800紫外可見分光光度計(jì) 上海菁華科技儀器有限公司。
1.4 培養(yǎng)方法
1.4.1 菌種活化
從-80 ℃冰箱中取出保菌管,于超凈臺(tái)上,用接種環(huán)在火焰附近,從保菌管中取3環(huán)于一代試管斜面上,在32 ℃培養(yǎng)箱中持續(xù)培養(yǎng)12 h。
1.4.2 一級(jí)種子培養(yǎng)
待菌種活化后,于超凈臺(tái)上運(yùn)用接種環(huán),在試管斜面上取2~3環(huán)菌種,將其接入至3個(gè)1 L圓底燒瓶中,于220 r/min、34 ℃的搖床中培養(yǎng)10~12 h。
1.4.3 二級(jí)種子培養(yǎng)
將培育完成的種子放到火焰旁邊,經(jīng)過5 L罐的進(jìn)樣口傾倒至罐內(nèi),后續(xù)將pH控制在7.0左右,實(shí)際溫度參數(shù)控制在34 ℃,溶氧數(shù)據(jù)保持在50%~60%。
1.4.4 發(fā)酵培養(yǎng)
當(dāng)OD600 nm提升至大約20的情況下,依據(jù)20%的接種量接入至發(fā)酵培養(yǎng)基的5 L發(fā)酵罐中。同時(shí)加入100 mL底糖,流加氨水,使pH維持在7.0~7.4弱堿環(huán)境下,依靠調(diào)整轉(zhuǎn)速與通風(fēng),從而讓初期階段的罐壓為0.08 MPa,溶氧數(shù)據(jù)大約為50%~60%,通風(fēng)速率為4~6 L/min,初始發(fā)酵溫度為34 ℃,發(fā)酵周期約為32 h。
1.5 實(shí)驗(yàn)方法
1.5.1 磷酸鹽與生物素混合添加控制實(shí)驗(yàn)
設(shè)計(jì)5組添加策略:
A組采取的具體設(shè)計(jì)方案:在培養(yǎng)基內(nèi)部增加實(shí)際劑量為3 g/L的磷酸二氫鉀,4 μg/L的生物素;
B組采取的具體設(shè)計(jì)方案:在培養(yǎng)基內(nèi)部增加實(shí)際劑量為3 g/L的磷酸二氫鉀,10 μg/L的生物素;
C組采取的具體設(shè)計(jì)方案:在培養(yǎng)基內(nèi)部增加實(shí)際劑量為3 g/L的磷酸二氫鉀,14 μg/L的生物素;
D組采取的具體設(shè)計(jì)方案:在培養(yǎng)基內(nèi)部增加實(shí)際劑量為5 g/L的磷酸二氫鉀,10 μg/L的生物素;
E組采取的具體設(shè)計(jì)方案:在培養(yǎng)基內(nèi)部增加實(shí)際劑量為5 g/L的磷酸二氫鉀,14 μg/L的生物素。
1.5.2 常規(guī)谷氨酸發(fā)酵中驗(yàn)證最適磷酸鹽與生物素濃度配比實(shí)驗(yàn)
根據(jù)1.5.1各實(shí)驗(yàn)組中的數(shù)據(jù),用常規(guī)發(fā)酵原材料玉米漿代替生物素,驗(yàn)證最適添加組能否使菌體量最大、細(xì)胞轉(zhuǎn)型快、糖酸轉(zhuǎn)化率高。
1.6 發(fā)酵檢測(cè)方法
1.6.1 發(fā)酵過程中pH測(cè)定
以罐內(nèi)pH電極進(jìn)行測(cè)試,樣液運(yùn)用精密pH試紙進(jìn)行精準(zhǔn)測(cè)試。
1.6.2 發(fā)酵過程中殘?zhí)菧y(cè)定
發(fā)酵起始每2 h取樣測(cè)試,將樣品倒入1.5 mL EP管中,采用TG16-W離心機(jī)持續(xù)處理2 min,取對(duì)應(yīng)的上清液,對(duì)此進(jìn)行稀釋百倍的處理,后續(xù)運(yùn)用SBA-40E生物傳感分析儀測(cè)試具體的殘?zhí)菂?shù)。
1.6.3 發(fā)酵過程中菌體量測(cè)定
菌體量測(cè)定可用吸光度OD600 nm表示,每2 h取樣,根據(jù)發(fā)酵周期稀釋相應(yīng)倍數(shù),采用UV1800紫外可見分光光度計(jì)測(cè)定OD600 nm。菌體量=OD600 nm×稀釋倍數(shù)。
1.6.4 發(fā)酵過程中谷氨酸測(cè)定
發(fā)酵起始,每2 h取樣,用離心機(jī)離心2 min,取上清液,稀釋100,200,300等相應(yīng)倍數(shù),再用SBA-40E生物傳感分析儀測(cè)定谷氨酸產(chǎn)量。
2 結(jié)果與討論
2.1 不同磷酸鹽與生物素濃度配比對(duì)發(fā)酵過程的影響分析
在5 L發(fā)酵罐中進(jìn)行不同磷酸鹽與生物素濃度配比的分批發(fā)酵,在發(fā)酵過程中每2 h測(cè)定菌體量(OD600 nm)、L-谷氨酸的產(chǎn)量和最終的糖酸轉(zhuǎn)化率,并繪制發(fā)酵過程的菌體量曲線、產(chǎn)酸曲線和轉(zhuǎn)化率圖表,按照不同濃度配比設(shè)計(jì)出單因素實(shí)驗(yàn)組,磷酸鹽與生物素濃度配比分別為A(3∶4)、B(3∶10)、C(3∶14)、D(5∶10)、E(5∶14),從而確定最佳混合配比,通過測(cè)定發(fā)酵過程中L-谷氨酸產(chǎn)量、菌體量以及糖酸轉(zhuǎn)化率,明確不同配比對(duì)菌體生長與產(chǎn)酸的影響,結(jié)果見圖1。
由圖1中a可知,菌體量在整個(gè)發(fā)酵過程中首先處于急劇增加趨勢(shì),隨后進(jìn)入平穩(wěn)期,最后走向衰退期[10],不同實(shí)驗(yàn)組的菌體量在4 h內(nèi)均呈現(xiàn)不同幅度的上升,其中E組菌體量上升幅度最快,最高組菌體量OD600 nm為82,隨著生物素和磷酸鹽濃度的調(diào)整,A、B、C、D組最高菌體量OD600 nm分別為25.2,41.2,43,61.2;較E組分別降低了69.2%、49.7%、47.5%、25.3%。E組終菌體量為74,較A、B、C、D組分別提高了72.9%、54%、48.6%、29.7%。由圖1中b可知,發(fā)酵0~4 h的時(shí)間段,發(fā)酵液中有L-谷氨酸產(chǎn)出且不同實(shí)驗(yàn)組呈現(xiàn)不同速度的增長幅度,由此說明此時(shí)間段菌體開始轉(zhuǎn)型,4 h后谷氨酸開始大量積累,到22 h時(shí)產(chǎn)酸均達(dá)到最大,E組最高產(chǎn)酸量達(dá)到86 g/L。A、B、C、D組L-谷氨酸產(chǎn)量分別為18,41,47,60 g/L,較E組分別降低了79%、52.3%、45.3%、30%。結(jié)合圖1中a和b可知,菌體量與L-谷氨酸產(chǎn)量呈正相關(guān),菌體量越大,L-谷氨酸產(chǎn)量越大。由圖1中a可知,A組磷酸鹽濃度為3 g/L,生物素濃度為4 μg/L,此時(shí)磷酸鹽濃度過低,導(dǎo)致谷氨酸棒狀桿菌生長受到抑制,菌體量增長緩慢[11];生物素濃度過低,不利于脂肪酸合成,進(jìn)而影響磷脂合成,導(dǎo)致細(xì)胞轉(zhuǎn)型慢[12],造成L-谷氨酸產(chǎn)量相對(duì)于其他組低。在相同磷酸鹽濃度的條件下,A、B、C組整體菌體量增幅明顯低于高磷酸鹽組,且最大菌體量也低于高磷酸鹽組,由此說明磷酸鹽濃度過低,菌體生長受到抑制[13]。同組內(nèi),由于生物素濃度依次提高,菌體量增幅C組>B組>A組,相鄰兩組最大菌體量下降幅度依次為3.5和16,由此說明,磷酸鹽與生物素的濃度配比影響著菌體量的生長。另外,由圖1中a可知,A、B、C組整個(gè)發(fā)酵過程延滯期明顯長于D、E組,A組延滯期最長,最大菌體量最低。由圖1中b可知,0~4 h內(nèi),各組均有產(chǎn)酸,且每組增幅差距不是特別大,這是因?yàn)榘l(fā)酵起始時(shí),磷酸鹽和生物素濃度對(duì)發(fā)酵產(chǎn)酸的影響不明顯,4 h后,細(xì)胞開始大量轉(zhuǎn)型,D、E組最高產(chǎn)酸量分別為60,86 g/L,產(chǎn)酸水平高于A、B、C組,由于磷鹽濃度較高于其他組,細(xì)胞呼吸和胞內(nèi)ATP水平得以控制,糖代謝水平高,所以整體產(chǎn)酸水平高[14]。同磷酸鹽濃度水平的各組中,生物素濃度提高,產(chǎn)酸量也隨之提高。A、B、C組最高產(chǎn)酸量分別為18,41,47 g/L,相鄰兩組產(chǎn)酸量升高幅度依次為23和5。這是因?yàn)樯锼貪舛鹊母叩蜎Q定細(xì)胞轉(zhuǎn)型的水平。細(xì)胞轉(zhuǎn)型快,轉(zhuǎn)型數(shù)量多,對(duì)應(yīng)的產(chǎn)酸量高。當(dāng)生物素濃度過量時(shí),幾乎沒有產(chǎn)酸型細(xì)胞,細(xì)胞形態(tài)和種子較接近,幾乎未分泌谷氨酸,有著僅長菌、耗糖、不產(chǎn)酸的現(xiàn)象[15]。綜合結(jié)果來看,在發(fā)酵時(shí)應(yīng)當(dāng)選擇E組磷酸鹽/生物素的最適濃度配比。
由表1可知,在低磷酸鹽濃度組中,C組谷氨酸產(chǎn)量最大,加入相同體積80%葡萄糖溶液后,發(fā)現(xiàn)A組轉(zhuǎn)化率最低,由于該組生物素含量低,細(xì)胞轉(zhuǎn)型慢,轉(zhuǎn)型細(xì)胞數(shù)量少,產(chǎn)酸率低,當(dāng)磷酸鹽不足時(shí),發(fā)酵后期發(fā)酵液中磷酸鹽幾乎耗盡,發(fā)酵相對(duì)無力,菌體早衰,因此糖酸轉(zhuǎn)化率低,僅為25%。而高磷酸鹽組中,E組生物素和磷酸鹽足夠使菌體快速轉(zhuǎn)型,菌體量大量上升,因此耗糖大,轉(zhuǎn)化率高,約為66.1%。高磷酸鹽、高生物素組糖酸轉(zhuǎn)化率明顯大于低磷酸鹽、低生物素組,且轉(zhuǎn)化率接近正常水平[16];因此,E組相較于其他組,磷酸鹽與生物素的比值最適宜。
通過上述結(jié)果分析,可以看出生物素與磷酸鹽的濃度對(duì)L-谷氨酸發(fā)酵產(chǎn)酸具有十分重要的影響:菌體生長需要磷酸鹽,在整個(gè)谷氨酸發(fā)酵過程中,磷源的量與菌體形變及生長速度有很大的關(guān)系。作為EMP途徑的關(guān)鍵元素,磷和ATP的產(chǎn)生有密切聯(lián)系[17-18];細(xì)胞中ATP的周轉(zhuǎn)以及能量水平會(huì)極大影響EMP途徑的葡萄糖耗費(fèi)。因此,在培養(yǎng)基中必須添加一定量的磷酸鹽才能保證菌體的正常生長。磷酸鹽在5 g/L時(shí)菌體長得最快,菌體量相對(duì)于3 g/L的磷酸鹽長得多。生物素是控制L-谷氨酸積累的重要因素。生物素是催化乙酰CoA羧化酶的重要輔酶[19],進(jìn)而加入到脂肪酸的合成進(jìn)程中,因此干涉磷脂的合成、細(xì)胞膜的正式誕生,為誕生有益于谷氨酸排放的細(xì)胞膜[20],期望磷脂合成不足,所以要求合理管控生物素亞適量的狀態(tài),改組實(shí)驗(yàn)中生物素最適濃度為14 μg/L左右。
2.2 最適生物素與磷酸鹽的比值對(duì)常規(guī)發(fā)酵的影響
通過上述實(shí)驗(yàn)的探究分析可得出,當(dāng)磷酸鹽與生物素濃度配比在5∶14的條件下,發(fā)酵過程中菌體量、L-谷氨酸產(chǎn)量、糖酸轉(zhuǎn)化率均比其他組高。但相較于傳統(tǒng)發(fā)酵培養(yǎng)基,實(shí)驗(yàn)組發(fā)酵培養(yǎng)基成分簡單,取消了傳統(tǒng)有機(jī)氮源豆餅水解液和玉米漿等工業(yè)原料,而這些工業(yè)原料在發(fā)酵過程中除了提供生物素和氮源外,還有很多供菌體生長的營養(yǎng)物質(zhì),因此,導(dǎo)致實(shí)驗(yàn)組即使是在最適PVH條件下,由于整體培養(yǎng)基營養(yǎng)不夠,菌體量不能進(jìn)一步生長,進(jìn)而導(dǎo)致L-谷氨酸的產(chǎn)量不夠高,達(dá)不到正常水平。所以,常規(guī)發(fā)酵實(shí)驗(yàn)中,發(fā)酵培養(yǎng)基中添加豆餅水解液和同一批次且生物素含量確定的玉米漿等有機(jī)原料,以提高菌體量,增大產(chǎn)酸量,結(jié)果見圖2。
圖2中F組和G組磷酸鹽與生物素濃度配比分別為5∶14、3∶14,由圖2中a可知,在相同生物素的條件下,隨著磷酸鹽濃度的增加,菌體量F組>G組,由圖2中c可知,菌體量生長速度在4 h時(shí)出現(xiàn)最大值,表明在同生物素、不同磷酸鹽的條件下,高磷酸鹽的菌體量長得更快,衰退時(shí)間更晚,在F組中,其最大菌體量為86,終菌體量為73,G組最大菌體量為73.2,終菌體量為62,相較于G組,F(xiàn)組菌體量提高了14.8%,終菌體量提高了15%,終菌體量升高幅度為11,最大菌體量升高幅度為12.8,兩組曲線趨勢(shì)大致相同,起始都以較高的生長速率生長,4 h達(dá)到最高比生長速率,菌體量達(dá)到峰值,伴隨著實(shí)際發(fā)酵時(shí)間的不斷增長,比生長速率有一定程度的降低,數(shù)值接近0,此時(shí),菌體增幅不大,開始積累L-谷氨酸,18 h以后,該數(shù)據(jù)是負(fù)值的情況下,意味著該階段的菌體量有所降低,F(xiàn)組比G組比生長速率數(shù)值絕對(duì)值小,因此菌體量比G組下降緩慢,所以可以分析出高磷酸鹽、高生物素菌體量更大,生長速率更快。
由圖2中b可知,F(xiàn)組和G組的曲線趨勢(shì)大致一致,2 h細(xì)胞轉(zhuǎn)型,4 h后開始大量產(chǎn)酸,F(xiàn)組最高產(chǎn)量為178 g/L,G組最高產(chǎn)量為98 g/L,相較于G組,F(xiàn)組L-谷氨酸產(chǎn)量提高了44.9%,升高幅度為80;F組L-谷氨酸終產(chǎn)量為170 g/L,G組L-谷氨酸終產(chǎn)量為92.8 g/L,相較于G組,F(xiàn)組L-谷氨酸終產(chǎn)量提高了45.4%,升高幅度為77.2。由圖2中d可知,單位時(shí)間內(nèi),谷氨酸產(chǎn)量越大,合成速率越高,F(xiàn)組的L-谷氨酸合成速率比G組整體要高,說明F組在發(fā)酵過程中更早進(jìn)入產(chǎn)酸期,更早轉(zhuǎn)型,0~16 h合成速率快,因?yàn)榘l(fā)酵前期生物素和磷酸鹽比例合適,加上培養(yǎng)基成分豐富,營養(yǎng)高,菌體量迅速升高,細(xì)胞快速度過長菌型,進(jìn)而更早進(jìn)入產(chǎn)酸期,代謝方向會(huì)有所轉(zhuǎn)變,依靠管控脂肪酸生物合成,進(jìn)一步調(diào)整細(xì)胞的滲透性,導(dǎo)致大量谷氨酸排入發(fā)酵液中,高磷酸鹽、高生物素菌體量迅速提升的同時(shí),糖耗加快,進(jìn)而提高了糖酸轉(zhuǎn)化率。
由表2可知,F(xiàn)組的糖酸轉(zhuǎn)化率為77%,遠(yuǎn)大于G組,當(dāng)生物素亞適量的情況下,使得菌體量進(jìn)入到最優(yōu)狀況,菌體轉(zhuǎn)型快,有著優(yōu)秀的產(chǎn)酸表現(xiàn),最終的糖酸轉(zhuǎn)化率表現(xiàn)較樂觀,菌體生物素與磷酸鹽不匹配時(shí),菌體生長緩慢,競爭生物素能力不足,進(jìn)而使得菌體無法轉(zhuǎn)型或者轉(zhuǎn)型慢,從而影響菌體產(chǎn)酸和糖酸轉(zhuǎn)化率。
3 結(jié)論
本研究在對(duì)磷酸鹽和生物素濃度配比進(jìn)行調(diào)配時(shí)發(fā)現(xiàn),當(dāng)磷酸鹽濃度為3 g/L時(shí),菌體量整體較低,最大菌體量較高磷酸鹽組降低了約47%;當(dāng)生物素濃度為10 μg/L及以下時(shí),細(xì)胞轉(zhuǎn)型慢,L-谷氨酸產(chǎn)量低,其最大產(chǎn)量較高,生物素濃度組降低了約31.6%;當(dāng)磷酸鹽濃度為5 g/L、生物素濃度為14 μg/L時(shí),對(duì)于菌體生長及生產(chǎn)性能的提高最大。在此條件下,最大OD600 nm達(dá)到了86,較對(duì)照組提高了14.8%,最終的菌體量為73,較對(duì)照組提高了15%,升高幅度為11,最終的L-谷氨酸產(chǎn)量為178 g/L,提高了44.9%,糖酸轉(zhuǎn)化率由40%提高至77%,因此,該磷酸鹽與生物素最適濃度配比在傳統(tǒng)谷氨酸發(fā)酵工業(yè)中,對(duì)提升菌體活力等有巨大價(jià)值,對(duì)于高效產(chǎn)酸等也有一定的參考價(jià)值。
參考文獻(xiàn):
[1]劉景陽,余子辰,徐慶陽.NH4+雙階段發(fā)酵控制谷氨酸工藝研究[J].中國調(diào)味品,2022,47(9):7-14.
[2]湯超.釀酒酵母高產(chǎn)谷氨酸補(bǔ)料發(fā)酵研究[D].武漢:湖北工業(yè)大學(xué),2019.
[3]KHAN N S, MISHRA I M, SINGH R P, et al. Modeling the growth of Corynebacterium glutamicum under product inhibition in L-glutamic acid fermentation[J].Biochemical Engineering Journal,2005,25(2):173-178.
[4]臧傳剛,梁恒宇,王宏齡,等.不同磷酸氫二鈉濃度對(duì)谷氨酸發(fā)酵的影響[J].食品研究與開發(fā),2015,36(14):125-130.
[5]劉樹濤,王文風(fēng).生物素與谷氨酸發(fā)酵[J].發(fā)酵科技通訊,2010,39(2):36-39.
[6]申宏偉.生物素超亞適量谷氨酸發(fā)酵高產(chǎn)酸菌種選育及工藝優(yōu)化[D].周口:河南蓮花味精股份有限公司,2012.
[7]黃瑤,廖蘭,廖春燕,等.不同來源生物素對(duì)谷氨酸短桿菌的影響[J].廣西工學(xué)院學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),2010,21(3):80-83.
[8]CHEN X C, SONG H, FANG T, et al.Enhanced cyclic adenosine monophosphate production by Arthrobacter A302 through rational redistribution of metabolic flux[J].Bioresource Technology,2009,101(9):3159-3163.
[9]BECKER J, WITTMANN C. Systems and synthetic metabolic engineering for amino acid production-the heartbeat of industrial strain development[J].Current Opinion in Biotechnology,2012,23(5):718-726.
[10]張文惠,安小平,范航,等.一株糞腸球菌噬菌體的分離及其生物學(xué)特性研究[J].生物技術(shù)通訊,2013,24(4):484-487.
[11]田孝俊,張路軍,任偉,等.三種磷酸鹽在谷氨酸發(fā)酵中的應(yīng)用分析[J].發(fā)酵科技通訊,2005(1):15-16.
[12]高君,趙二紅,張國慶,等.谷氨酸多級(jí)混合轉(zhuǎn)型發(fā)酵技術(shù)研究與應(yīng)用:中國,LH20070203[P].2009-07-07.
[13]LAMPILA L E.Applications and functions of food-grade phosphates[J].Annals of the New York Academy of Sciences,2013,1301(1):37-44.
[14]劉翠翠.谷氨酸棒桿菌合成微生物油脂的代謝途徑平衡[D].上海:華東理工大學(xué),2020.
[15]楊陽,張苗苗,高越,等.谷氨酸棒狀桿菌高效發(fā)酵谷氨酸的關(guān)鍵分子機(jī)理研究進(jìn)展[J].食品工業(yè)科技,2019,40(5):311-315,321.
[16]WEN J B, XIAO Y Q, LIU T, et al. Rich biotin content in lignocellulose biomass plays the key role in determining cellulosic glutamic acid accumulation by Corynebacterium glutamicum[J].Biotechnology for Biofuels,2018,11(1):132.
[17]ALEKSEENKO V, ALEKSEENKO A.The abundances of chemical elements in urban soils[J]. Journal of Geochemical Exploration,2014,147:245-249.
[18]STEPHEN R C, ELENA M B.Reconsideration of the planetary boundary for phosphorus[J].Environmental Research Letters,2011,6(1):14009.
[19]楊帆.不同外源添加條件下白靈菇細(xì)胞質(zhì)中乙酰輔酶A的合成途經(jīng)和功能研究[D].沈陽:沈陽農(nóng)業(yè)大學(xué),2020.
[20]WENDISCH V F, SPIES M, REINSCHEID D J, et al. Regulation of acetate metabolism in Corynebacterium glutamicum: transcriptional control of the isocitrate lyase and malate synthase genes[J].Archives of Microbiology,1997,168(4):262-269.