趙 婧，邵小達(dá)，趙 晟，潘 泓，馬立杰，張映曈，凌 軍，李鵬霞,4，黃 雯，周宏勝,,4,*

（1.沈陽農(nóng)業(yè)大學(xué)食品學(xué)院，遼寧 沈陽 110866；2.昆山益群農(nóng)產(chǎn)品有限公司，江蘇 蘇州 215300；3.江蘇省農(nóng)業(yè)科學(xué)院，農(nóng)業(yè)農(nóng)村部農(nóng)產(chǎn)品冷鏈物流技術(shù)重點實驗室，江蘇 南京 210014；4.江蘇省高效園藝作物遺傳改良重點實驗室，江蘇 南京 210014；5.南京市蔬菜科學(xué)研究所，江蘇 南京 210042）

桃（Prunuspersica（L.）Batsch.）是深受人們喜愛的核果類水果。外觀顏色是決定桃商品價值的重要指標(biāo)，而花色苷決定著桃果實的外觀顏色，其生物合成受溫度、光照等環(huán)境因素調(diào)控，其中合理的光照有利于花色苷的合成[1]。研究表明套袋栽培可以改善桃的外觀品質(zhì)，包括果面光潔度和顏色[2]，但也有研究認(rèn)為套袋會抑制花色苷的生物合成，即套袋采收影響了桃果皮花色苷的合成和色澤的呈現(xiàn)[3-4]。因此，尋求一種有效的促進(jìn)套袋采收桃果實花色苷合成的方法具有重要的意義。

花色苷由苯丙烷途徑和黃酮類化合物生物合成途徑產(chǎn)生[5]，受多個結(jié)構(gòu)基因和調(diào)節(jié)基因的控制[6]。苯丙氨酸（phenylalanine，Phe）是花色苷生物合成的直接前體[6-7]，研究表明在培養(yǎng)基中適當(dāng)添加Phe能促進(jìn)野生型擬南芥合成更多的花青素[8]；采后Phe處理的李果實具有較高的花色苷和酚類物質(zhì)含量[9]。外源Phe處理可能是一種有效增加果實花色苷含量和提升果實抗病性的方法[7]。

乙烯是植物產(chǎn)生的最重要的激素之一，能夠直接影響果實的成熟衰老[10]。1-甲基環(huán)丙烯（1-methylclopropene，1-MCP）是植物組織中乙烯受體的競爭性抑制劑，1-MCP處理可有效抑制桃果實的呼吸和乙烯釋放，從而延緩果實的軟化，保持果實品質(zhì)，在桃保鮮中應(yīng)用廣泛[11-12]。研究表明，1-MCP處理可以抑制薔薇科的蘋果[13]、李[14]、油桃[15]果實著色，但會促進(jìn)部分梨[16]和桃[3]果實著色。

本課題組前期的研究發(fā)現(xiàn)，1-MCP處理可以促進(jìn)早熟套袋桃的著色[3]，但其對中晚熟套袋桃著色效果的影響尚不明確。目前尚鮮有關(guān)于1-MCP結(jié)合Phe處理對桃果實花色苷合成影響的相關(guān)報道。本研究擬通過Phe、1-MCP及Phe+1-MCP處理采收后的中晚熟套袋桃果實，研究不同處理對桃果實表型、果皮色差、花色苷含量等的影響，為Phe和1-MCP在桃采后保鮮和色澤提升中的應(yīng)用提供理論依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

套“內(nèi)黑外黃”雙層果袋栽培的‘新川中島’桃果實于商業(yè)化成熟時采收于山東某商業(yè)化果園，當(dāng)天運至江蘇省農(nóng)業(yè)科學(xué)院，挑選成熟度一致、大小形狀均一、無病蟲害和機(jī)械傷的桃果實進(jìn)行實驗。

DL-Phe（99%） 北京百靈威科技有限公司；1-MCP 山東奧維特生物科技有限公司；氯化鉀、六水氯化鋁、鹽酸 國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司；甲醇上海凌峰化學(xué)試劑有限公司；氫氧化鈉 西隴科學(xué)股份有限公司；無水乙酸鈉 廣州市金華大化學(xué)試劑有限公司；以上試劑均為分析純。FastPure Plant Total RNA Isolation Kit、HiScript III RT SuperMix for qPCR（+gDNA wiper）逆轉(zhuǎn)錄試劑盒、GreenTaqMix和ChamQ Universal SYBR qPCR Master Mix 南京諾唯贊生物科技股份有限公司；甲醇、乙腈（均為色譜純）美國JTBaker公司；矢車菊素3-葡萄糖苷標(biāo)準(zhǔn)品、矢車菊素-3-O-蕓香糖苷標(biāo)準(zhǔn)品 上海源葉生物科技有限公司。

1.2 儀器與設(shè)備

Seven multi pH計 梅特勒-托利多儀器（上海）有限公司；HH-S數(shù)顯恒溫水浴鍋 常州萬達(dá)升實驗儀器有限公司；BSA124S電子天平 賽多利斯科學(xué)儀器（北京）有限公司；FM40型雪花制冰機(jī) 北京長流科學(xué)儀器有限公司；UV-1780型紫外-可見分光光度計 日本島津公司；A11 Basic液氮研磨器 艾卡（廣州）儀器設(shè)備有限公司；CR-400全自動測色色差儀 日本Konica Minolta公司；7820A氣相色譜儀、QTRAP高效液相色譜-質(zhì)譜（high-performance liquid chromatography-mass spectrometry，HPLC-MS）儀 美國Agilent公司；3K-15離心機(jī) 德國SIGMA公司；EDC-810型聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)（polymerase chain reaction，PCR）儀北京東勝創(chuàng)新生物科技有限公司；CFX 96 實時熒光定量PCR（quantitative PCR，qPCR）儀 美國伯樂公司。

1.3 方法

1.3.1 桃果實的處理

將桃果實隨機(jī)平均分為4 組，分別進(jìn)行4 種處理：1）對照組（Control）：清水浸泡10 min后晾干，用0.03 mm厚聚乙烯（polyethylene，PE）保鮮袋扎口密封空氣處理24 h；2）Phe處理組（Phe組）：8 mmol/L Phe溶液中浸泡10 min后晾干，用0.03 mm厚PE保鮮袋扎口密封空氣處理24 h；3）1-MCP處理組（1-MCP組）：清水浸泡10 min后晾干，用0.03 mm厚PE保鮮袋扎口密封1.0 μL/L 1-MCP處理24 h；4）Phe結(jié)合1-MCP處理組（Phe+1-MCP組）：8 mmol/L Phe溶液中浸泡10 min后晾干，用0.03 mm厚PE保鮮袋扎口密封1.0 μL/L 1-MCP處理24 h。密封處理結(jié)束后通風(fēng)散氣15 min后分別將各組桃果實置于打孔的保鮮箱內(nèi)貯藏。處理和貯藏均在常溫環(huán)境（（22±2）℃）下進(jìn)行，每個處理組單個生物學(xué)重復(fù)處理桃果實50 個，每2 d取樣，每次隨機(jī)選取8 個果實用于拍照和測定相關(guān)品質(zhì)指標(biāo)，其中0 d的樣本為處理前的桃果實，每個處理均進(jìn)行3 次生物學(xué)重復(fù)。

取樣時采用美工刀分離桃果皮與果肉，盡量保持桃果皮厚度一致（約1 mm），并迅速置于液氮中冷凍，每個生物學(xué)重復(fù)的樣本混勻后分別放入－80 ℃冰箱中保存，測定指標(biāo)時用液氮研磨器粉碎混勻，以保證取樣具有代表性。

1.3.2 桃果實色澤的測定

參照Zhang Yingtong等[3]的方法，采用CR-400色差儀測定每個果實赤道線上十字交叉4 個點的色澤（亮度（L*值）、紅度（a*值）、黃度（b*值）），并計算顏色指數(shù)（color index of red grape，CIRG）與色差值（ΔE），每個處理組取24 個桃果實，結(jié)果取平均值。

1.3.3 總花色苷含量的測定

采用pH示差法[17]測定桃果皮中總花色苷含量。取研磨碎的0.5 g桃果皮樣品，加入2.5 mL 95%的酸化甲醇（0.1 mol/L HCl），4 ℃避光振蕩提取4 h后離心（12 000 r/min、4 ℃、15 min）提取上清液。上清液分別加入0.025 mol/L氯化鉀緩沖液（pH 1.0）和0.4 mol/L醋酸鈉緩沖液（pH 4.5）稀釋，室溫靜置15 min后測定溶液在520、700 nm波長處吸光度，按下式計算總花色苷含量。重復(fù)測定3 次，結(jié)果取平均值。

式中：ΔA＝（A520nm－A700nm）pH1.0－（A520nm－A700nm）pH4.5；Mw為矢車菊素-3 -O-葡萄糖苷的摩爾質(zhì)量（449.2 g/mol）；DF為稀釋倍數(shù)；V為提取液總體積/mL；δ為矢車菊素-3-O-葡萄糖苷摩爾消光系數(shù)（26 900 L/（mol·cm））；m為樣品質(zhì)量/g；L為比色皿寬度（1 cm）。

1.3.4 花色苷單體含量的測定

取研磨碎的果皮0.5 g，加0.5 mL 50%甲醇溶液（含0.1% HCl），樣品渦旋5 min，浸提20 min，超聲5 min，離心10 min，吸取上清液，殘渣內(nèi)加入0.5 mL 50%酸化甲醇溶液，再將上述操作重復(fù)一次，合并兩次上清液，過0.22 μm有機(jī)濾膜，采用HPLC-MS技術(shù)測定花色苷單體物質(zhì)并用相應(yīng)的標(biāo)準(zhǔn)品外標(biāo)法定量，花色苷單體含量單位為mg/kg[3]。

1.3.5 桃果皮花色苷與乙烯合成代謝相關(guān)基因表達(dá)水平的測定

采用FastPure Plant Total RNA Isolation Kit從桃果皮組織中提取總RNA。采用瓊脂糖凝膠電泳法和Nanodrop 2000超微量分光光度計測定RNA的質(zhì)量和濃度。采用HiScript III RT SuperMix for qPCR反轉(zhuǎn)錄試劑盒進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄，反轉(zhuǎn)錄后的cDNA存放于－20 ℃待用。

qPCR檢測操作按照ChamQ Universal SYBR qPCR Master Mix說明書進(jìn)行，引物序列設(shè)計如表1所示，以TEF2作為內(nèi)參基因[18-20]。采用2-ΔΔCt法分析qPCR結(jié)果。

表1 qPCR引物序列Table 1 Primer sequences used for qPCR

1.3.6 呼吸速率和乙烯生成速率的測定

參考曹建康[21]和闞娟[22]等的方法測定桃果實呼吸速率和乙烯生成速率。將待檢測樣本常溫（（22±2）℃）放置在密封罐中密閉2 h，抽取10 mL氣樣，采用氣相色譜儀進(jìn)行測定。

1.4 數(shù)據(jù)處理與分析

本實驗中數(shù)據(jù)取3 個重復(fù)的平均值。使用Excel 2010軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)統(tǒng)計，SPSS 24.0軟件進(jìn)行差異顯著性分析（Duncan法多重比較，以P＜0.05表示差異顯著），Origin 2021軟件制作圖表。

2 結(jié)果與分析

2.1 Phe和1-MCP處理對桃果實外觀色澤的影響

果皮色澤是評價桃果實外觀品質(zhì)的重要指標(biāo)。由圖1可知，隨著貯藏期的延長，桃果實果面逐漸變紅；貯藏第2天時果面開始逐漸著色，貯藏第6、8天時果面顏色最紅。采后不同處理對果皮著色程度有不同的影響：與Control組相比，Phe、1-MCP和Phe+1-MCP處理均可促進(jìn)果實著色，其中Phe+1-MCP組著色效果最佳，果面最為鮮紅。貯藏第6天時，處理組果實均已明顯著色，果面的著色程度排序依次為Phe+1-MCP組＞1-MCP組＞Phe組＞Control組。

圖1 Phe和1-MCP處理對桃果實外觀色澤的影響Fig.1 Effects of Phe and/or 1-MCP treatments on the appearance of peach fruits

2.2 Phe和1-MCP處理對桃果皮色澤的影響

色差是反映桃果皮著色情況最直觀的指標(biāo)，其中，a*值可反映果皮顏色紅綠度的變化，CIRG可反映與花色苷含量有關(guān)的果實色澤變化，ΔE能夠反映顏色的總體變化[1,3]。由圖2可知，貯藏過程中果皮a*值、CIRG和ΔE總體均呈上升的趨勢。整個貯藏期間，各處理組果皮的a*值均顯著高于對照組（P＜0.05），且Phe+1-MCP處理組果實的a*值始終最高（圖2A）。貯藏期果皮CIRG的變化趨勢與a*值一致（圖2B），整個貯藏期果面的CIRG由大到小依次為Phe+1-MCP組＞1-MCP組＞Phe組＞Control組。貯藏第8天時，Phe+1-MCP處理組的a*值分別是Control、Phe組和1-MCP組的13.63、1.68 倍和1.33 倍，CIRG分別為Control、Phe組和1-MCP組的1.61、1.16 倍和1.10 倍，說明Phe+1-MCP處理可以有效地促進(jìn)果皮紅色的形成，增色效果優(yōu)于Phe和1-MCP單獨處理。在整個貯藏期間，各處理組果皮的ΔE均顯著高于對照組（P＜0.05），且Phe+1-MCP處理組果實的ΔE始終最高，說明Phe+1-MCP處理組果實的色澤變化最明顯。

圖2 Phe和1-MCP處理對桃果皮a*值（A）、CIRG（B）和ΔE（C）的影響Fig.2 Effects of Phe and/or 1-MCP treatments on a* value (A),CIRG (B) and ΔE (C) of peach peel

2.3 Phe和1-MCP處理對桃果皮總花色苷含量的影響

如圖3所示，在整個貯藏期間，桃果皮總花色苷含量呈逐漸上升的趨勢；貯藏第4天時總花色苷含量開始明顯增加。整個貯藏期間，各處理組果皮的總花色苷含量均顯著高于對照組（P＜0.05），總花色苷含量由大到小依次為Phe+1-MCP組＞1-MCP組＞Phe組＞Control組。Phe和1-MCP處理均可顯著促進(jìn)桃果皮總花色苷含量的增加，且Phe+1-MCP處理的促進(jìn)效果最好，明顯優(yōu)于Phe和1-MCP單獨處理。貯藏第4天時，Phe+1-MCP處理組的總花色苷含量已明顯高于其他組，分別是1-MCP、Phe組和Control組的1.24、3.71 倍和6.83 倍；貯藏第6天時，Phe+1-MCP處理組果皮的總花色苷含量為76.71 mg/kg，分別是1-MCP、Phe和Control組的1.33、3.36 倍和7.29 倍。

圖3 Phe和1-MCP處理對桃果皮總花色苷含量的影響Fig.3 Effects of Phe and/or 1-MCP treatments on the content of total anthocyanins in peach peel

2.4 Phe和1-MCP處理對桃果皮主要花色苷類物質(zhì)含量的影響

矢車菊色素是桃果實最主要的花色苷類物質(zhì)[23-24]。本研究檢測了第6天時桃果皮中主要的矢車菊色素類物質(zhì)含量（表2），發(fā)現(xiàn)矢車菊素-3-O-葡萄糖苷和矢車菊素-3-O-蕓香糖苷是果皮主要的呈色物質(zhì)，其中矢車菊素-3-O-葡萄糖苷含量最高。貯藏第0天時，矢車菊素-3-O-葡萄糖苷和矢車菊素-3-O-蕓香糖苷含量均較低；貯藏第6天時，矢車菊素-3-O-葡萄糖苷和矢車菊素-3-O-蕓香糖苷含量明顯上升。貯藏第6天時，Phe+1-MCP處理組的矢車菊素-3-O-葡萄糖苷含量分別是1-MCP、Phe組和Control組的1.35、3.39 倍和7.49 倍，矢車菊素-3-O-蕓香糖苷含量分別是1-MCP、Phe組和Control組的1.16、2.81 倍和6.87 倍。

表2 Phe和1-MCP處理對桃果皮花色苷單體含量的影響Table 2 Effects of phenylalanine and/or 1-MCP treatments on the content of anthocyanin monomers in peach peel

2.5 Phe和1-MCP處理對花色苷合成相關(guān)基因表達(dá)的影響

Phe和1-MCP處理后，桃果皮中大多數(shù)花色苷合成相關(guān)基因的表達(dá)量發(fā)生改變（圖4）。貯藏第2天時，與Control組相比，Phe、1-MCP和Phe+1-MCP處理均顯著促進(jìn)了花色苷合成結(jié)構(gòu)基因（PAL、DFR、ANS和UFGT）和調(diào)節(jié)基因（bHLH-3和WD40-1）的表達(dá)，Phe+1-MCP處理組的基因表達(dá)量最高，且顯著高于其他處理組（P＜0.05）。貯藏第4天時，Phe+1-MCP處理顯著提升了所有花色苷合成相關(guān)基因的表達(dá)，PAL、CHS、CHI、F3H、DFR、ANS、UFGT、MYB10.1、bHLH-3和WD40-1基因的表達(dá)量分別為Control組的3.61、2.19、2.23、3.81、3.41、4.00、2.22、1.89、2.38 倍和1.51 倍。貯藏第8天時，大多數(shù)花色苷合成相關(guān)基因的表達(dá)量與貯藏前期相比明顯降低，但Phe+1-MCP處理組的CHS、F3H、DFR、UFGT、MYB10.1、bHLH-3和WD40-1基因表達(dá)量仍顯著高于Control組（P＜0.05）。

圖4 Phe和1-MCP處理對桃果皮花色苷合成相關(guān)基因表達(dá)的影響Fig.4 Effects of Phe and/or 1-MCP treatments on gene expression associated with the synthesis of anthocyanins in peach peel

2.6 Phe和1-MCP處理對桃果實采后生理的影響

由圖5A可知，各組桃果實的呼吸速率在整個貯藏期間均呈現(xiàn)先上升后下降的變化趨勢，桃果實的呼吸速率在貯藏第6天時達(dá)到峰值。Control組桃的呼吸速率一直維持在相對較高的水平，1-MCP和Phe+1-MCP處理可以有效抑制果實的呼吸速率上升（P＜0.05），且其整個貯藏期均顯著低于Control組。由圖5B可知，采后桃果實乙烯生成速率隨貯藏時間的延長呈逐漸上升的趨勢。與Control組相比，1-MCP和Phe+1-MCP處理均可明顯抑制乙烯生成速率的上升，且其整個貯藏期均顯著低于Control組，Phe處理組乙烯生成速率在第4、6天時顯著低于Control組。

圖5 Phe和1-MCP處理對桃果實呼吸速率（A）、乙烯生成速率（B）的影響Fig.5 Effects of Phe and/or 1-MCP treatments on the respiration intensity (A) and ethylene production rate (B) of peach fruits

2.7 Phe和1-MCP處理對桃果實乙烯合成和信號轉(zhuǎn)導(dǎo)相關(guān)基因表達(dá)的影響

為探究Phe和1-MCP處理的桃果實采后乙烯生物合成減少的原因，對乙烯生物合成和信號轉(zhuǎn)導(dǎo)相關(guān)基因的表達(dá)量進(jìn)行分析。乙烯代謝相關(guān)基因表達(dá)量在貯藏過程中大多呈現(xiàn)先升高后降低的趨勢（圖6）。與Control組相比，Phe和1-MCP處理明顯降低了貯藏前期（第2、4天）多個乙烯代謝相關(guān)基因的表達(dá)量，其中Phe+1-MCP處理組多個乙烯代謝相關(guān)基因的表達(dá)量顯著低于其他各處理組（圖6）。貯藏第2、4天時，Phe+1-MCP處理組中乙烯合成（SAMS、ACS和ACO）和乙烯下游信號元件（CTR1、EIN4、EIN2和EIL）相關(guān)基因表達(dá)量均顯著低于Control組。貯藏第8天時，Phe+1-MCP處理組中ACS、CTR1、EIN2和EIL基因的表達(dá)量顯著低于Control組。

圖6 Phe和1-MCP處理對桃果皮乙烯代謝相關(guān)基因表達(dá)的影響Fig.6 Effects of Phe and/or 1-MCP treatments on gene expression associated with ethylene metabolism in peach peel

3 討論

花色苷是桃果皮主要的呈色物質(zhì)，本課題組前期研究發(fā)現(xiàn)雙層紙袋套袋會降低桃果實采收時的花色苷含量，導(dǎo)致果實外觀偏白[3-4]；且花色苷的生物合成不僅與光和溫度有關(guān)，也可能與乙烯、糖信號等密切相關(guān)[3,25]。傳統(tǒng)觀點認(rèn)為乙烯會促進(jìn)花色苷的生物合成，1-MCP處理會延緩果實的成熟和衰老，還會抑制果實的著色。例如李秀芳等[13]發(fā)現(xiàn)采后1-MCP處理會抑制蘋果花色苷含量的上升；徐燕紅[14]發(fā)現(xiàn)1-MCP處理會延緩‘桃形李’果實花色苷含量的增加；Zhang Wanli等[15]發(fā)現(xiàn)1-MCP處理會抑制油桃果肉花色苷的積累。但本研究以套袋采收的中晚熟桃品種為實驗材料，發(fā)現(xiàn)采后1-MCP處理可以有效地促進(jìn)桃果實的著色，1-MCP處理后桃果皮的色澤a*值、CIRG和ΔE顯著提高，花色苷含量也顯著高于對照組（P＜0.05）。這與本課題組前期的研究結(jié)果一致：乙烯處理會抑制套袋早熟桃‘春美’的著色，1-MCP處理可以緩解其抑制效應(yīng)[3]。本研究結(jié)果說明1-MCP處理可能在套袋采收的早熟和中晚熟桃品種中發(fā)揮著相似的作用，即促進(jìn)桃果實的采后著色。近年來，乙烯對果實花色苷生物合成的負(fù)面影響也在一些物種中有所報道，如Ni Junbei等[16]發(fā)現(xiàn)乙烯對紅梨花色苷的生物合成具有抑制作用，本研究結(jié)果與其一致，可為乙烯對不同果實花色苷積累有負(fù)面影響這一結(jié)論進(jìn)行補充。1-MCP處理對蘋果[13]、李[14]、桃[3]、梨[16,26]等水果花色苷含量有不同的影響，這說明1-MCP處理對不同果實中花色苷的形成可能存在不同的作用機(jī)制。

Phe是花色苷生物合成的前體物質(zhì)[6,26]，在花色苷生物合成通路中發(fā)揮重要的作用。Aghdam等[27]發(fā)現(xiàn)Phe處理能夠促進(jìn)番茄果實酚類、黃酮類化合物與番茄紅素的積累；Sogvar等[9]的研究證明外源Phe處理促進(jìn)李果實花色苷及黃酮類化合物含量增加。本研究發(fā)現(xiàn)Phe處理可以有效促進(jìn)桃果實的著色（圖1）和花色苷的積累（圖3），與前人研究結(jié)果一致。雖然1-MCP和Phe單獨處理均可促進(jìn)套袋桃果實花色苷的合成，但本研究發(fā)現(xiàn)Phe結(jié)合1-MCP處理可以更有效地促進(jìn)桃果皮色澤的形成，使其花色苷含量明顯高于Phe和1-MCP單獨處理組。在植物培養(yǎng)過程中，適當(dāng)添加Phe能促進(jìn)野生型擬南芥合成更多的花青素，說明Phe含量對花青素合成起重要作用[8]。這可能是因為Phe結(jié)合1-MCP處理增加了桃果實中花色苷合成前體物質(zhì)的含量，因此其花色苷合成能力明顯高于1-MCP處理組。本研究還發(fā)現(xiàn)Phe和1-MCP處理均可有效促進(jìn)花色苷合成相關(guān)基因（PAL、CHS、CHI、F3H、DFR、ANS、UFGT、MYB10.1、bHLH-3和WD40-1）的表達(dá)，且Phe+1-MCP組基因表達(dá)量顯著高于Phe和1-MCP單獨處理組，這可能是Phe+1-MCP處理能夠更有效地促進(jìn)桃果皮花色苷含量升高的直接原因。桃屬于呼吸躍變型果實，在采后貯藏期間呼吸強(qiáng)度和乙烯釋放量會迅速提高[17]。本研究中1-MCP處理可以有效抑制桃果實的呼吸強(qiáng)度和乙烯釋放速率，且顯著抑制貯藏前期桃果實乙烯合成和信號轉(zhuǎn)導(dǎo)相關(guān)基因的表達(dá)，與周慧娟等[28]的研究結(jié)果一致。本研究還發(fā)現(xiàn)Phe+1-MCP處理可以有效降低桃果實乙烯釋放速率和乙烯合成和信號轉(zhuǎn)導(dǎo)相關(guān)基因的表達(dá)，這也可能是其能更有效地促進(jìn)桃果實花色苷含量升高的原因。本課題組前期研究發(fā)現(xiàn)抑制乙烯后桃果實花色苷合成量明顯增加[3]。Phe+1-MCP處理對花色苷合成的協(xié)同效應(yīng)還需要進(jìn)一步驗證和闡明其機(jī)制。

Phe、1-MCP和Phe+1-MCP復(fù)合處理均能不同程度地改善套袋桃采后著色困難的問題，有效提升桃總花色苷含量及花色苷單體含量，Phe結(jié)合1-MCP處理對花色苷的合成具有協(xié)同效應(yīng)。Phe+1-MCP處理可有效提升桃果皮花色苷合成相關(guān)基因的表達(dá)量，且降低部分乙烯合成和信號轉(zhuǎn)導(dǎo)相關(guān)基因的表達(dá)量，本研究可為1-MCP結(jié)合Phe在桃采后色澤調(diào)控中的應(yīng)用提供理論依據(jù)和技術(shù)參考。