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        虎杖苷對角叉菜膠致肺水腫大鼠的干預(yù)作用研究

        2023-08-05 08:01:50張欽欽曾夢楠張貝貝王茹馮衛(wèi)生鄭曉珂河南中醫(yī)藥大學(xué)河南鄭州450046河南省中藥開發(fā)工程技術(shù)研究中心河南鄭州450046河南中醫(yī)藥大學(xué)呼吸疾病中醫(yī)藥防治省部共建協(xié)同創(chuàng)新中心河南鄭州450046
        中藥新藥與臨床藥理 2023年7期
        關(guān)鍵詞:肺水腫水平模型

        張欽欽,曾夢楠,3,張貝貝,王茹,馮衛(wèi)生,3,鄭曉珂,3(1.河南中醫(yī)藥大學(xué),河南 鄭州 450046;2. 河南省中藥開發(fā)工程技術(shù)研究中心,河南 鄭州 450046;3. 河南中醫(yī)藥大學(xué)呼吸疾病中醫(yī)藥防治省部共建協(xié)同創(chuàng)新中心,河南 鄭州 450046)

        肺水腫是由于肺內(nèi)組織液的生成以及回流平衡失調(diào),造成肺通氣與換氣功能嚴(yán)重障礙[1-2],是急性肺損傷病理進(jìn)程中的中心環(huán)節(jié),也是引起各種呼吸道疾病的重要因素,其發(fā)病迅速、死亡率高。隨著天然藥物研究的不斷發(fā)展,充分發(fā)揮其優(yōu)勢,積極找出安全有效的活性成分并闡明其作用機(jī)制,可能可為治療肺水腫提供新的思路?;⒄溶帐侵兴幓⒄鹊闹饕钚猿煞?,具有抗炎、鎮(zhèn)咳、抗氧化應(yīng)激及抗癌等多種藥理作用[3]。研究發(fā)現(xiàn),虎杖苷對慢性阻塞性肺疾病大鼠有一定改善作用,可能與抑制TLR4/NF-κB 信號(hào)通路有關(guān)[4];虎杖苷還能夠減輕哮喘小鼠的氣道炎癥,其作用機(jī)制可能與SIRT1/NF-κB 通路有關(guān)[5]。角叉菜膠是一種具有較強(qiáng)致炎作用的硫酸多糖物質(zhì),胸腔注射角叉菜膠后,能夠促進(jìn)釋放多種促炎因子[6],造成局部血管擴(kuò)張,毛細(xì)血管通透性增強(qiáng),出現(xiàn)肺損傷和肺水腫。故本研究擬觀察虎杖苷對角叉菜膠致肺水腫大鼠的干預(yù)作用,及其對水通道蛋白1(AQP1)通路的影響,以期為虎杖苷治療肺水腫的相關(guān)研究提供實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)。

        1 材料與方法

        1.1 動(dòng)物雄性SD 大鼠50 只,SPF 級,體質(zhì)量180~220 g,購自濟(jì)南朋悅實(shí)驗(yàn)動(dòng)物繁育有限公司,實(shí)驗(yàn)動(dòng)物生產(chǎn)許可證號(hào):SCXK(魯)20190003。動(dòng)物飼養(yǎng)于清潔級動(dòng)物房中,12 h 光照,恒溫24 ℃,自由攝食、飲水,實(shí)驗(yàn)單位動(dòng)物使用許可證號(hào):SYXK(豫)2020-0004。本實(shí)驗(yàn)經(jīng)河南中醫(yī)藥大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物倫理委員會(huì)批準(zhǔn),批文號(hào):DWLL2018080003。

        1.2 藥物及主要試劑虎杖苷(貨號(hào):SP8420)、活性氧(ROS)檢測試劑盒(批號(hào):CA1410),北京索萊寶科技有限公司;醋酸地塞米松片,上海金不換蘭考制藥有限公司,批號(hào):20 201006;Annexin V-PE/7-AAD 凋亡試劑盒,美國BD 公司,批號(hào): 559763;角叉菜膠,美國Sigma 公司,批號(hào)C1013-25G;免疫球蛋白E(IgE,貨號(hào):E-EL-R0517c)、白細(xì)胞介素4(IL-4,貨號(hào):E-EL-R0014c)、干擾素γ(IFN-γ,貨號(hào):E-EL-R0009c)檢測試劑盒,武漢伊萊瑞特生物科技有限公司;總超氧化物歧化酶(T-SOD,貨號(hào):A001-1-1)、谷胱甘肽過氧化物酶(GSH-Px,貨號(hào):A005-1-2)及丙二醛(MDA,貨號(hào):A003-1-1)檢測試劑盒,南京建成生物工程研究所;HiScript III RT SuperMix(貨號(hào): R323- 01)、 2 × ChamQ Universal SYBR qPCR Master Mix(貨號(hào):Q711-02),南京諾維贊生物科技股份有限公司;CD11b-APC(批號(hào): 2311195)、 Ly6G- FITC(批號(hào): 2440387)、CD11b-FITC(批號(hào):2172513)、F4/80-PE(批號(hào):2142861)抗體,均購自美國Invitrogen 公司;AQP1(貨號(hào):A15030)、AQP5(貨號(hào):A13861)、IL-1β(貨號(hào):A19635)、IL-10(貨號(hào):A12255)以及β-actin(貨號(hào):AC026)抗體,均購自武漢愛博泰克(ABclonal)生物科技有限公司。

        1.3 主要儀器1905108 型酶標(biāo)儀,美國伯騰儀器有限公司;BD FACS Aria Ⅲ型流式細(xì)胞儀,美國BD公司;Odessey 雙色近紅外成像系統(tǒng),美國LI-COR公司;ABI QuantStudio 5 型實(shí)時(shí)熒光定量PCR 系統(tǒng),美國Thermo Fisher 公司;PowerPacTM通用電泳儀、Trans-Blot?TurboTM半干轉(zhuǎn)膜儀,美國Bio-Rad公司;Centrifuge-5804R 型小型高速冷凍離心機(jī),德國Eppendorf 公司;MX63 型顯微鏡,日本Olympus公司。

        1.4 分組、給藥及模型復(fù)制將50 只SD 大鼠隨機(jī)分為對照組、模型組、地塞米松組(0.075 mg·kg-1)及虎杖苷低、高劑量組(20、40 mg·kg-1),每組10 只。先按照上述劑量灌胃給藥,對照組和模型組給予同等體積的蒸餾水,每日1 次,連續(xù)灌胃給藥7 d。給藥結(jié)束后,除對照組胸腔注射同等體積生理鹽水外,其他各組大鼠從肋間肌處向胸膜腔注射1%角叉菜膠(20 mg·kg-1)溶液致炎48 h,建立肺水腫大鼠模型[7],然后進(jìn)行相關(guān)指標(biāo)檢測。

        1.5 測定大鼠肺組織含水量摘取大鼠肺組織,用生理鹽水清洗后,用濾紙拭干表面液體;用天平精確稱量左肺濕質(zhì)量,然后將左肺組織在真空干燥箱中烘干72 h 至恒重,取出后準(zhǔn)確稱量肺組織干質(zhì)量;計(jì)算:肺組織濕/干質(zhì)量比=肺濕質(zhì)量/肺干質(zhì)量,肺組織含水量(%)=(肺濕質(zhì)量-肺干質(zhì)量)/肺濕質(zhì)量×100%。

        1.6 肺組織病理學(xué)觀察取大鼠右肺上葉組織,于4%多聚甲醛固定液中浸泡24 h 后,采用乙醇梯度脫水,二甲苯透明,石蠟包埋,切成5 μm 薄片;二甲苯脫蠟,乙醇梯度洗脫后,進(jìn)行HE 常規(guī)染色,封片后在顯微鏡下觀察、拍照。

        1.7 流式細(xì)胞術(shù)檢測肺組織原代細(xì)胞凋亡及ROS水平取各組大鼠右肺下葉相同部位肺組織適量,經(jīng)胰酶消化后,加入胎牛血清終止消化,用70 μm濾網(wǎng)過濾收集肺組織原代細(xì)胞;分別嚴(yán)格按照ROS試劑盒和細(xì)胞凋亡試劑盒說明書步驟操作,染色后采用流式細(xì)胞儀檢測各組大鼠肺組織原代細(xì)胞凋亡及ROS 水平。

        1.8 流式細(xì)胞術(shù)檢測肺組織中巨噬細(xì)胞、中性粒細(xì)胞水平取各組大鼠右肺中葉相同部位肺組織適量,PBS 洗滌后剪碎,以膠原酶Ⅱ消化;過濾后以500×g離心5 min,收集細(xì)胞,然后用紅細(xì)胞裂解液裂解,離心后用400 μL PBS 重懸;加入CD16/32 抗體阻斷Fc-γR,冰上孵育后,分別加入其相應(yīng)抗體(巨噬細(xì)胞:F4/80、CD11b 抗體;中性粒細(xì)胞:CD11b、Ly6G 抗體);孵育后每管加入1 mL PBS 洗滌1 次,PBS 重懸細(xì)胞后采用流式細(xì)胞儀檢測。

        1.9 肺泡灌洗液中IgE、IL-4、IFN-γ 水平測定打開大鼠胸腔,結(jié)扎肺左支氣管,用PBS 重復(fù)灌洗右肺4 次,收集PBS 灌洗液,以3 000 r·min-1(離心半徑10 cm)離心10 min,取上清液,即得肺泡灌洗液。嚴(yán)格按照試劑盒說明書步驟操作,采用ELISA 法檢測肺泡灌洗液中IgE、IL-4 和IFN-γ水平。

        1.10 肺組織中MDA、GSH-Px、T-SOD 水平測定取各組大鼠右肺相同部位肺組織適量,制備肺組織勻漿,嚴(yán)格按照試劑盒說明書步驟操作,測定肺組織中MDA、GSH-Px、T-SOD 水平。

        1.11 RT-qPCR 法檢測肺組織AQP1、AQP5、IL-10、TNF-α、IL-13 mRNA 表達(dá)取各組大鼠左肺相同部位肺組織適量,提取總RNA;使用HiScript III RT SuperMix 預(yù)混液進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄得到cDNA;最后采用ChamQ 通用SYBR qPCR 預(yù)混液,以GAPDH 為內(nèi)參基因,通過實(shí)時(shí)熒光定量PCR 法對AQP1、AQP5、IL-10、TNF-α 和IL-13 的mRNA 表達(dá)水平進(jìn)行分析;采用2-△△Ct法計(jì)算目的基因mRNA 相對表達(dá)量。引物由武漢塞維爾生物有限公司設(shè)計(jì)合成,引物序列見表1。

        表1 PCR 引物序列Table 1 Primer sequences for PCR

        1.12 虎杖苷與AQP1 分子對接采用分子對接驗(yàn)證虎杖苷與潛在靶點(diǎn)AQP1 之間的相互作用關(guān)系。通過Chem Office 軟件繪制虎杖苷3D 結(jié)構(gòu);通過PDB 數(shù)據(jù)庫(https://www.rcsb.org)下載AQP1 蛋白的3D 結(jié)構(gòu),PDB 編號(hào)為8CTE;采用PyMOL 軟件對蛋白質(zhì)進(jìn)行去水、提取配體等處理;利用AutoDock 軟件將關(guān)鍵蛋白及化合物的pdb 格式轉(zhuǎn)換為pdbqt 格式,并尋找活性口袋;最后通過AutoDock Vina 軟件進(jìn)行分子對接驗(yàn)證。

        1.13 免疫組化法測定肺組織中AQP1 蛋白表達(dá)將新鮮肺組織標(biāo)本經(jīng)組織固定液固定后制成蠟塊,切片(5 μm),然后脫蠟、水化;檸檬酸鹽緩沖液回收抗原,3% H2O2封閉內(nèi)源性過氧化物酶20 min;沖洗后微波加熱修復(fù)抗原,3% BSA 封閉30 min;滴加AQP1 一抗(1∶200)后,于4 ℃下孵育過夜;洗滌,滴加生物素標(biāo)記的羊抗兔二抗(1∶2 000),室溫下孵育1 h;DAB 顯色,蘇木精復(fù)染3 min;將切片依次經(jīng)梯度乙醇脫水、二甲苯透明、晾干后,中性樹膠封片;顯微鏡下觀察并采集圖像進(jìn)行分析。

        1.14 Western Blot 法檢測肺組織中AQP1、AQP5、IL-1β、IL-10 蛋白表達(dá)取各組大鼠左肺相同部位肺組織適量,按照總蛋白提取試劑盒說明書步驟提取肺組織總蛋白;采用BCA 蛋白定量試劑盒測定蛋白濃度;經(jīng)SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)后,將蛋白轉(zhuǎn)移至PVDF 膜上;用5%封閉液封閉1.5 h 后,回收封閉液;加入一抗AQP1(1∶1 000)、AQP5(1∶1 000)、IL-1 β(1∶1 000)、IL-10(1∶1 000)、β-actin(1∶25 000)后,室溫下孵育2.5 h,用PBST 洗滌4 次,每次5 min;加入兔源熒光二抗(1∶20 000),室溫下避光孵育1 h 后,用PBST 洗滌3 次,PBS 洗滌1 次;采用Odyssey 雙色紅外激光成像系統(tǒng)進(jìn)行掃描分析。

        1.15 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理方法采用SPSS 26.0 統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析;計(jì)量資料以均數(shù)± 標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示;多組間比較采用單因素方差分析(One-way ANOVA),兩兩比較采用LSD 法;以P<0.05 為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

        2 結(jié)果

        2.1 虎杖苷對肺水腫大鼠肺組織濕/干質(zhì)量比及含水量的影響結(jié)果見表2。與對照組相比,模型組大鼠的肺組織濕/干質(zhì)量比及含水量明顯升高(P<0.05,P<0.01),說明肺水腫大鼠模型復(fù)制成功。與模型組比較,虎杖苷高、低劑量組大鼠的肺組織濕/干質(zhì)量比及含水量明顯降低(P<0.05,P<0.01)。

        表2 虎杖苷對肺水腫大鼠肺組織濕/干質(zhì)量比及含水量的影響(±s,n=6)Table 2 Effects of polydatin on wet/dry mass ratio of lung and lung water content in rats with pulmonary edema(x ± s,n=6)

        表2 虎杖苷對肺水腫大鼠肺組織濕/干質(zhì)量比及含水量的影響(±s,n=6)Table 2 Effects of polydatin on wet/dry mass ratio of lung and lung water content in rats with pulmonary edema(x ± s,n=6)

        注:與對照組比較,#P<0.05,##P<0.01;與模型組比較,*P<0.05,**P<0.01

        劑量/(mg·kg-1)濕/干質(zhì)量比2.10±0.29 2.50±0.15##2.14±0.17*2.14±0.23*1.89±0.30**組別對照組模型組地塞米松組虎杖苷低劑量組虎杖苷高劑量組--0.075 20 40含水量/%51.6±6.68 59.9±2.43#53.1±3.57*52.8±4.91*46.0±9.32**

        2.2 虎杖苷對肺水腫大鼠肺組織病理變化的影響結(jié)果見圖1。對照組大鼠肺組織結(jié)構(gòu)完整,未見明顯炎性細(xì)胞浸潤和聚集,肺泡結(jié)構(gòu)完整,肺泡腔及間質(zhì)內(nèi)無滲出物,肺組織無明顯病變。與對照組比較,模型組大鼠肺組織可見明顯的氣道增厚,分泌物增多,肺泡結(jié)構(gòu)破壞,有水腫液聚集。與模型組比較,虎杖苷高、低劑量組大鼠肺組織的病理變化均得到明顯改善。

        圖1 虎杖苷對肺水腫大鼠肺組織病理變化的影響(HE 染色,×200)Figure 1 Effect of polydatin on the lung histopathology in rats with pulmonary edema(HE staining,×200)

        2.3 虎杖苷對肺水腫大鼠肺組織原代細(xì)胞凋亡水平的影響結(jié)果見圖2。與對照組相比,模型組大鼠肺組織原代細(xì)胞中的活細(xì)胞比例顯著降低(P<0.01),死細(xì)胞、凋亡細(xì)胞比例顯著升高(P<0.01)。與模型組比較,虎杖苷高劑量組大鼠肺組織原代細(xì)胞中的活細(xì)胞比例顯著升高(P<0.01),死細(xì)胞比例顯著降低(P<0.01),虎杖苷高、低劑量組的凋亡細(xì)胞比例顯著降低(P<0.05,P<0.01)。結(jié)果表明,虎杖苷能夠降低肺水腫大鼠肺組織原代細(xì)胞的凋亡水平。

        圖2 虎杖苷對肺水腫大鼠肺組織原代細(xì)胞凋亡水平的影響(±s,n=3)Figure 2 Effect of polydatin on apoptosis of primary cells of lung tissue in rats with pulmonary edema(±s,n=3)

        2.4 虎杖苷對肺水腫大鼠氧化應(yīng)激水平的影響結(jié)果見圖3、表3。與對照組相比,模型組大鼠肺組織原代細(xì)胞ROS 水平及肺組織MDA 水平顯著升高(P<0.01),T-SOD、GSH-Px 水平顯著降低(P<0.01)。與模型組比較,虎杖苷高、低劑量組大鼠肺組織原代細(xì)胞ROS 水平及肺組織MDA 水平顯著降低(P<0.05,P<0.01),T-SOD、GSH-Px 水平顯著升高(P<0.05,P<0.01)。

        圖3 虎杖苷對肺水腫大鼠肺組織原代細(xì)胞活性氧(ROS)水平的影響(±s,n=3)Figure 3 Effect of polydatin on reactive oxygen species(ROS)of primary cells of lung tissue in rats with pulmonary edema(±s,n=3)

        表3 虎杖苷對肺水腫大鼠肺組織氧化應(yīng)激水平的影響(±s,n=6)Table 3 Effect of polydatin on oxidative stress in lung tissue of rats with pulmonary edema(±s,n=6)

        表3 虎杖苷對肺水腫大鼠肺組織氧化應(yīng)激水平的影響(±s,n=6)Table 3 Effect of polydatin on oxidative stress in lung tissue of rats with pulmonary edema(±s,n=6)

        注:與對照組比較,##P<0.01;與模型組比較,*P<0.05,**P<0.01

        GSH-Px/(U·mg-1)10.67±2.61 6.79±0.40##8.90±2.21**10.94±1.72*12.88±1.72**組別對照組模型組地塞米松組虎杖苷低劑量組虎杖苷高劑量組劑量/(mg·kg-1)--0.075 20 40 T-SOD/(U·mg-1)49.24±3.62 31.21±2.49##39.65±2.91**53.46±5.20**59.66±6.95**MDA/(nmol·mg-1)2.37±0.07 2.81±0.20##2.30±0.09**2.28±0.14**2.27±0.09**

        2.5 虎杖苷對肺水腫大鼠肺組織中巨噬細(xì)胞、中性粒細(xì)胞水平的影響結(jié)果見圖4、表4。與對照組相比,模型組大鼠肺組織中巨噬細(xì)胞、中性粒細(xì)胞水平顯著升高(P<0.01)。與模型組相比,虎杖苷高、低劑量組大鼠肺組織中巨噬細(xì)胞、中性粒細(xì)胞水平顯著降低(P<0.01)。

        圖4 虎杖苷對肺水腫大鼠肺組織中巨噬細(xì)胞、中性粒細(xì)胞水平的影響Figure 4 Effects of polydatin on neutrophils and macrophages in lung tissue of rats with pulmonary edema

        表4 虎杖苷對肺水腫大鼠肺組織中巨噬細(xì)胞、中性粒細(xì)胞水平的影響(±s,n=3)Figure 4 Effects of polydatin on neutrophils and macrophages in lung tissue of rats with pulmonary edema(±s,n=3)

        表4 虎杖苷對肺水腫大鼠肺組織中巨噬細(xì)胞、中性粒細(xì)胞水平的影響(±s,n=3)Figure 4 Effects of polydatin on neutrophils and macrophages in lung tissue of rats with pulmonary edema(±s,n=3)

        注:與對照組比較,##P<0.01;與模型組比較,*P<0.05,**P<0.01

        中性粒細(xì)胞水平/%7.20±0.36 13.93±0.15##10.07±0.74**12.50±0.87*7.30±0.56**組別對照組模型組地塞米松組虎杖苷低劑量組虎杖苷高劑量組劑量/(mg·kg-1)--0.075 20 40巨噬細(xì)胞水平/%3.87±0.31 9.67±0.38##5.73±0.61**8.43±0.25**7.17±0.59**

        2.6 虎杖苷對肺水腫大鼠肺泡灌洗液中炎癥因子水平的影響結(jié)果見表5。與對照組比較,模型組大鼠肺泡灌洗液中IgE、IL-4 水平顯著升高(P<0.01),IFN-γ 水平顯著降低(P<0.01)。與模型組相比,虎杖苷高、低劑量組大鼠肺泡灌洗液中IgE、IL-4 水平顯著降低(P<0.05,P<0.01),IFN-γ 水平顯著提高(P<0.05,P<0.01)。

        表5 虎杖苷對肺水腫大鼠肺泡灌洗液中炎癥因子水平的影響(±s,n=6)Table 5 Effects of polydatin on inflammatory factors in bronchoalveolar lavage fluid of rats with pulmonary edema(±s,n=6)

        表5 虎杖苷對肺水腫大鼠肺泡灌洗液中炎癥因子水平的影響(±s,n=6)Table 5 Effects of polydatin on inflammatory factors in bronchoalveolar lavage fluid of rats with pulmonary edema(±s,n=6)

        注:與對照組比較,##P<0.01;與模型組比較,*P<0.05,**P<0.01

        IFN-γ/(pg·mL-1)118.68±11.81 81.85±8.33##98.70±18.16**95.83±12.01*103.88±5.15**組別對照組模型組地塞米松組虎杖苷低劑量組虎杖苷高劑量組劑量/(mg·kg-1)--0.075 20 40 IgE/(ng·mL-1)0.82±0.29 2.08±0.50##0.83±0.34**1.27±0.25**0.94±0.14**IL-4/(pg·mL-1)8.42±1.96 13.4±1.40##9.22±1.29**11.46±1.74*8.14±1.10**

        2.7 虎杖苷對肺水腫大鼠肺組織AQP1、AQP5、IL-10、TNF-α、IL-13 mRNA 表達(dá)的影響結(jié)果見圖5。與對照組比較,模型組大鼠肺組織AQP1、AQP5、IL-10 mRNA 表達(dá)水平顯著降低(P<0.01),TNF-α、IL-13 mRNA 表達(dá)水平顯著升高(P<0.01)。與模型組相比,虎杖苷高、低劑量組大鼠肺組織AQP1、AQP5、IL-10 mRNA 表達(dá)水平顯著升高(P<0.01),TNF-α、IL-13 mRNA 表達(dá)水平顯著降低(P<0.01)。

        圖5 虎杖苷對肺水腫大鼠肺組織AQP1、AQP5、IL-10、TNF-α、IL-13 mRNA 表達(dá)的影響(±s,n=3)Figure 5 Effects of polydatin on mRNA expressions of AQP1,AQP5,IL-10,TNF-α and IL-13 in lung tissue of rats with pulmonary edema(±s,n=3)

        2.8 虎杖苷對肺水腫大鼠肺組織AQP1 蛋白表達(dá)的影響結(jié)果見圖6、圖7?;⒄溶张cAQP1 分子對接的結(jié)合能為-7.9 kJ·mol-1,以結(jié)合能≤-5 kJ·mol-1為標(biāo)準(zhǔn),表明虎杖苷與AQP1 靶點(diǎn)具有較強(qiáng)的結(jié)合活性。與對照組比較,模型組大鼠肺組織中AQP1 蛋白表達(dá)顯著下調(diào)(P<0.01);與模型組比較,虎杖苷高、低劑量組大鼠肺組織中AQP1 蛋白表達(dá)顯著上調(diào)(P<0.01)。

        圖6 虎杖苷與潛在靶點(diǎn)AQP1 的分子對接模式Figure 6 Molecular docking mode for polydatin and AQP1 target

        圖7 虎杖苷對肺水腫大鼠肺組織中AQP1 蛋白表達(dá)水平的影響(±s,n=6)Figure 7 Effect of polydatin on AQP1 protein expression in lung tissue of rats with pulmonary edema(±s,n=6)

        2.9 虎杖苷對肺水腫大鼠肺組織中AQP1、AQP5、IL-1β、IL-10 蛋白表達(dá)的影響結(jié)果見圖8。與對照組比較,模型組大鼠肺組織中AQP1、AQP5、IL-10 蛋白表達(dá)量顯著降低(P<0.01),IL-1β 蛋白表達(dá)量顯著升高(P<0.01)。與模型組比較,虎杖苷高、低劑量組大鼠肺組織中AQP1、AQP5、IL-10 蛋白表達(dá)量顯著升高(P<0.01),IL-1β 蛋白表達(dá)量顯著降低(P<0.01)。

        圖8 虎杖苷對肺水腫大鼠肺組織中AQP1、AQP5、IL-1β、IL-10 蛋白表達(dá)的影響(±s,n=3)Figure 8 Effects of polydatin on protein expressions of AQP1,AQP5,IL-1β and IL-10 in lung tissue of rats with pulmonary edema(±s,n=3)

        3 討論

        肺水腫是指肺血管內(nèi)液體滲入到肺間質(zhì)或肺泡中導(dǎo)致肺血管外液量增多的病理狀態(tài)[8],其發(fā)病迅速、死亡率高,治療不及時(shí)會(huì)導(dǎo)致病情惡化,甚至危及生命。研究表明,虎杖苷具有抗炎、抗氧化應(yīng)激、鎮(zhèn)咳、降血脂、抗休克等藥理作用[9],其能夠通過調(diào)控HMGB1/TLR4/NF-κB 信號(hào)通路改善膿毒癥急性肺損傷[10]。研究[11]還發(fā)現(xiàn),虎杖苷能夠降低高原肺水腫模型大鼠的肺動(dòng)脈高壓,改善肺血管收縮狀態(tài)及微循環(huán),對抗低氧誘導(dǎo)的肺微血管內(nèi)皮細(xì)胞氧化損傷,從而降低肺水腫程度。但虎杖苷對角叉菜膠致肺水腫的干預(yù)作用未見報(bào)道,因此本研究通過胸腔注射角叉菜膠復(fù)制肺水腫大鼠模型,探討了虎杖苷對肺水腫的干預(yù)作用及可能的作用機(jī)制。

        本研究結(jié)果顯示,模型組大鼠的肺組織濕/干質(zhì)量比及含水量明顯升高,可見明顯的肺泡結(jié)構(gòu)破壞及炎癥浸潤,表明通過角叉菜膠成功誘導(dǎo)建立了肺水腫大鼠模型[7]。細(xì)胞凋亡是機(jī)體炎癥調(diào)控的重要機(jī)制,在肺水腫發(fā)病過程中發(fā)揮著重要作用[12],氧化應(yīng)激是細(xì)胞凋亡發(fā)生的重要原因之一[13],大量ROS 會(huì)引起機(jī)體代謝紊亂和器官衰竭,并對肺實(shí)質(zhì)細(xì)胞直接造成氧化損傷,進(jìn)而侵襲肺間質(zhì),導(dǎo)致肺水腫[14]。而虎杖苷能夠降低肺水腫大鼠肺組織原代細(xì)胞的凋亡水平及ROS 水平,降低肺組織MDA 水平,升高T-SOD、GSH-Px 水平,明顯降低肺組織濕/干質(zhì)量比及含水量,改善肺組織的病理變化。

        肺水腫發(fā)生時(shí),會(huì)引起肺部組織出現(xiàn)大量炎性細(xì)胞,中性粒細(xì)胞集聚在炎癥部位后,血液中的單核細(xì)胞被大量招募,然后分化為巨噬細(xì)胞和樹突狀細(xì)胞。巨噬細(xì)胞和中性粒細(xì)胞是2 種重要的天然免疫細(xì)胞,具有很強(qiáng)的病原識(shí)別、清除和吞噬能力。在炎癥性疾病發(fā)展過程中,巨噬細(xì)胞分泌的炎癥因子TNF-α、IL-1β 和IL-6 能加重體內(nèi)的炎癥反應(yīng)。研究[15]發(fā)現(xiàn),AQPs 具有調(diào)控炎癥反應(yīng)的作用,AQP1低表達(dá)與肺組織中IL-1β 釋放和中性粒細(xì)胞積聚、分泌有關(guān)。AQPs 是一組細(xì)胞膜轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白,在水的跨膜轉(zhuǎn)運(yùn)中發(fā)揮著重要作用,是維持體內(nèi)水液代謝平衡的分子學(xué)基礎(chǔ)[16]。研究表明,AQP1 是肺損傷的重要標(biāo)記物,AQP1 表達(dá)水平降低,肺損傷程度加深[17],AQP5 與AQP1 相互協(xié)調(diào)對調(diào)節(jié)水分轉(zhuǎn)運(yùn)速率有著重要作用[18]。本研究結(jié)果表明,虎杖苷可上調(diào)肺水腫大鼠肺組織中的AQP1、AQP5 表達(dá),降低中性粒細(xì)胞和巨噬細(xì)胞水平,抑制促炎細(xì)胞因子IL-1β、TNF-α 的釋放,提高抗炎細(xì)胞因子IFN-γ、IL-10 的水平,進(jìn)而改善肺損傷。

        綜上所述,虎杖苷與AQP1 靶點(diǎn)具有較強(qiáng)的結(jié)合活性,其對角叉菜膠誘導(dǎo)的肺水腫大鼠具有明顯改善作用,可能與其通過調(diào)節(jié)體內(nèi)炎癥反應(yīng)、氧化應(yīng)激與細(xì)胞凋亡水平,以及上調(diào)AQP1、AQP5 表達(dá)有關(guān)。

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