徐福飛 龐佳慧 吳雨龍 江海濤 李盛杰 霍光明 華 春

（1．南京師范大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院，江蘇 南京 210046；2．南京曉莊學(xué)院食品科學(xué)學(xué)院，江蘇 南京 211171；3．江蘇省高校特殊生物質(zhì)廢棄物資源化利用重點(diǎn)建設(shè)實(shí)驗(yàn)室，江蘇 南京 211171）

菌質(zhì)是一種以藥食兩用真菌為發(fā)酵菌株，以中藥材或中藥渣為藥性基質(zhì)進(jìn)行發(fā)酵的產(chǎn)物[1]。在發(fā)酵過程中，藥性基質(zhì)為真菌的生長代謝提供營養(yǎng)成分，而真菌代謝所產(chǎn)的酶反作用于藥性基質(zhì)改變其結(jié)構(gòu)與成分，從而生成新的活性成分，其含量高于真菌與藥性基質(zhì)的疊加，藥性基質(zhì)毒性得到降低[2]。竹黃菌是一種藥食兩用真菌，含黃酮、萜類等活性成分，具有抗氧化[3]、保肝[4]、抗菌、提高免疫力[5]等功效。

女貞子為木樨科植物女貞的果實(shí)[6]，經(jīng)90%乙醇提取后的女貞子渣中還含有黃酮、多糖、氨基酸等活性成分，可以作為藥性基質(zhì)[7-8]。黃貞菌質(zhì)是以女貞子渣為藥性基質(zhì)，以竹黃菌為發(fā)酵真菌，經(jīng)固體雙向發(fā)酵技術(shù)獲得的產(chǎn)物，該產(chǎn)物含有女貞子渣基質(zhì)、竹黃菌菌絲以及竹黃菌在女貞子渣基質(zhì)上的代謝產(chǎn)物。黃酮和天然多糖在抗氧化[9]、抗菌、抗炎[10]、抗病毒[11]、抗腫瘤[12]等方面均表現(xiàn)出較好的生物活性。傳統(tǒng)工藝是對同一物質(zhì)中黃酮和多糖常采用分批分次提取，存在提取過程煩瑣、效率低、成本高、費(fèi)時費(fèi)力等特點(diǎn)。本研究采用超聲波輔助液體雙相滲透法從黃貞菌質(zhì)中同步提取總黃酮與多糖，以響應(yīng)面CCD法優(yōu)化提取工藝條件，并測定黃貞菌質(zhì)總黃酮和多糖的體外抗氧化活性，為開發(fā)黃貞菌質(zhì)類飼料添加劑提供參考。

1 材料與方法

1.1 試驗(yàn)材料

黃貞菌質(zhì)由南京曉莊學(xué)院食品科學(xué)學(xué)院藥用菌物研究所提供。蘆丁和葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)品購自上海源葉生物有限公司；DPPH、ABTS、乙酸乙酯和無水乙醇購自國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司。

1.2 儀器設(shè)備

KQ.250B 超聲波清洗儀（江蘇省昆山市超聲儀器有限公司）；RE-3000 旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器、SHZ-Ⅲ型循環(huán)水真空泵（上海亞榮生化儀器廠）；紫外-可見分光光度計(jì)（北京普析通用儀器有限責(zé)任公司）；臺式冷凍干燥機(jī)（美國Labconco公司）；高速冷凍離心機(jī)（美國熱電公司）。

1.3 試驗(yàn)條件

1.3.1 黃貞菌質(zhì)的制備

參考文獻(xiàn)[13-14]方法制備黃貞菌質(zhì)。稱取粉末狀女貞子渣53.3 g裝入發(fā)酵菌袋中，加入66.7 mL純凈水，攪拌均勻，于121 ℃滅菌30 min 后冷卻。竹黃菌菌種在馬鈴薯瓊脂固體培養(yǎng)基平板上活化，從活化的竹黃菌平板上挑取生長良好的竹黃菌菌苔接種于馬鈴薯液體培養(yǎng)基，置于恒溫?fù)u床培養(yǎng)箱，設(shè)置溫度27 ℃，轉(zhuǎn)速140 r/min，培養(yǎng)3 d。取一定量竹黃菌種子液接種于滅菌后的女貞子渣菌袋內(nèi)，采用無菌玻棒攪拌均勻，于27 ℃恒溫培養(yǎng)箱中靜置培養(yǎng)30 d，直至菌絲布滿整個培養(yǎng)菌袋，發(fā)酵完成。將黃貞菌質(zhì)從菌袋中取出，40 ℃烘干，粉碎后裝入密封袋中，于-20 ℃保存。

1.3.2 ULDPM提取黃貞菌質(zhì)總黃酮與多糖

準(zhǔn)確稱取黃貞菌質(zhì)粉末10 g 于燒杯中，加入一定體積的乙酸乙酯（上相）和純凈水（下相），使用玻棒攪拌均勻，封上保鮮膜，轉(zhuǎn)移到超聲波儀中，設(shè)置一定的超聲功率、超聲溫度和超聲時間進(jìn)行處理，結(jié)束后將混合物以4 500 r/min 離心10 min，將上清液轉(zhuǎn)移至分液漏斗中靜置至上相和下相分離。上層溶液和下層溶液分別用旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀蒸發(fā)除去溶劑，下層濃縮液加入4 倍體積的95%乙醇醇沉，離心收集沉淀，隨后上相和下相沉淀經(jīng)真空冷凍干燥得黃貞菌質(zhì)總黃酮與多糖。

1.3.3 黃貞菌質(zhì)總黃酮與多糖得率的測定

1.3.3.1 黃貞菌質(zhì)總黃酮得率的測定參考文獻(xiàn)[15]的方法測定黃貞菌質(zhì)總黃酮得率。以蘆丁標(biāo)準(zhǔn)品繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線，得回歸方程為Y=6.308 6X+0.049 6，R2=0.998；計(jì)算黃貞菌質(zhì)總黃酮得率。

式中：c為黃貞菌質(zhì)總黃酮提取液的質(zhì)量濃度（g/mL）；V為樣品定容體積（mL）；N為測定時樣液的稀釋倍數(shù)；M為黃貞菌質(zhì)粉末的質(zhì)量（g）。

1.3.3.2 黃貞菌質(zhì)多糖得率的測定

參考文獻(xiàn)[16]的方法測定黃貞菌質(zhì)多糖得率。以葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)品繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線，按苯酚-硫酸法測定吸光度，得回歸方程為Y=5.821 4X+0.092 5，R2=0.991；計(jì)算黃貞菌質(zhì)多糖得率。

式中：c為黃貞菌質(zhì)多糖濃度（g/mL）；V為黃貞菌質(zhì)多糖溶液體積（mL）；N為稀釋倍數(shù)；M為黃貞菌質(zhì)粉末質(zhì)量（g）。

1.3.4 單因素試驗(yàn)

以乙酸乙酯和純凈水為提取溶劑，根據(jù)不同上相液料比（3、6、9、12、15、18 mL/g）、下相液料比（5、10、15、20、25 mL/g）、超聲功率（40、50、60、70、80、90 W）、超聲溫度（30、35、40、45、50、55 ℃）和超聲時間（15、25、35、45、55、65 min）考察對黃貞菌質(zhì)總黃酮和多糖得率的影響，選擇最佳工藝條件，各試驗(yàn)重復(fù)3次。

1.3.5 響應(yīng)面CCD法優(yōu)化提取工藝設(shè)計(jì)

根據(jù)單因素試驗(yàn)結(jié)果，以上相液料比、下相液料比、超聲功率、超聲溫度和超聲時間為自變量，以黃貞菌質(zhì)總黃酮和多糖得率為響應(yīng)值設(shè)計(jì)試驗(yàn)，并采用響應(yīng)面CCD 法分析各因素之間的交互作用，以確定獲得較高黃貞菌質(zhì)總黃酮和多糖得率的最佳工藝條件。響應(yīng)面試驗(yàn)因素和水平見表1。

表1 響應(yīng)面試驗(yàn)的因素與水平

1.3.6 黃貞菌質(zhì)總黃酮與多糖的體外抗氧化活性

經(jīng)優(yōu)化提取獲得的黃貞菌質(zhì)總黃酮和多糖分別配成濃度為0.1、0.2、0.4、0.8、1.4、2.0 g/L的待測液，配制相同濃度的維生素C（VC）溶液為對照，分別測定黃貞菌質(zhì)總黃酮與多糖對DPPH和ABTS的清除率及還原力。

1.3.6.1 黃貞菌質(zhì)總黃酮與多糖的DPPH自由基清除能力

參考文獻(xiàn)[17]的方法，稍作改進(jìn)。天平稱取DPPH試劑1 mg用10 mL的無水乙醇溶解，得到濃度為0.1 g/L的DPPH 工作液，搖勻，取100 μL DPPH 工作液和100 μL不同濃度的待測樣品于酶標(biāo)板中充分混合，靜置30 min，于酶標(biāo)儀中517 nm 測定其吸光度，以VC 作為對照組。重復(fù)操作3次，求出清除率。

式中：A0為100 μL 無水乙醇加100 μL DPPH 的吸光度；A1為100 μL 樣品溶液加100 μL DPPH 的吸光度；A2為100 μL樣品溶液加100 μL無水乙醇的吸光度。

1.3.6.2 黃貞菌質(zhì)總黃酮與多糖的ABTS自由基清除能力

參考文獻(xiàn)[17]的方法，稍作改進(jìn)。準(zhǔn)確稱取3.841 mg的ABTS 溶于1 mL 純水中，配置成7 mmol/L 的ABTS 儲備液。準(zhǔn)確稱取過硫酸鉀0.672 3 mg 溶于1 mL 水中，配制2.45 mmol/L 過硫酸鉀儲備液。取上述兩種儲備液各0.2 mL 混合，于暗處室溫下反應(yīng)12～16 h。反應(yīng)結(jié)束后，將混合液用蒸餾水稀釋至A734nm處值為（0.70±0.02），形成ABTS+工作液（約稀釋45～55倍）。

取40 μL 不同濃度樣品溶液和160 μL ABTS+工作液，混勻后，于室溫下靜置6 min，在A734nm處測吸光值，以抗壞血酸作為對照組。重復(fù)操作3次，求出清除率。

式中：A0為40 μL 蒸餾水加160 μL ABTS+吸光度；A1為40 μL樣品溶液加160 μL ABTS+吸光度。1.3.6.3 黃貞菌質(zhì)總黃酮與多糖還原力的測定

吸取0.5 mL 不同濃度的樣品溶液于5 mL 離心管中，依次加入0.2 mol/L 磷酸緩沖液（pH 值6.6）1.0 mL，1%鐵氰化鉀溶液1.0 mL，在50 ℃水浴反應(yīng)30 min 后冷卻。再加入10%三氯乙酸溶液1.0 mL，混勻后，4 000 r/min離心15 min。吸取離心后的上清0.5 mL 于2 mL 離心管中，加入等體積蒸餾水和0.1%三氯化鐵溶液100 μL，避光反應(yīng)30 min，于700 nm 下測定吸光值。其總還原力與吸光值的大小成正比。重復(fù)操作3次。

1.4 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)與分析

試驗(yàn)數(shù)據(jù)采用SPSS 19.0軟件和GP 6.0軟件進(jìn)行分析和處理，DE 8.0 響應(yīng)面軟件分析試驗(yàn)結(jié)果。P＜0.05 表示差異顯著。

2 結(jié)果與分析

2.1 單因素試驗(yàn)結(jié)果

2.1.1 上相液料比對黃貞菌質(zhì)總黃酮與多糖得率的影響（見圖1）

圖1 上相液料比對黃貞菌質(zhì)總黃酮與多糖得率的影響

由圖1 可知，黃貞菌質(zhì)總黃酮與多糖得率隨著上相液料比的降低先增加后降低，當(dāng)液料比為12 mL/g時，黃貞菌質(zhì)總黃酮得率達(dá)最高；當(dāng)液料比為9 mL/g 時，黃貞菌質(zhì)多糖得率達(dá)最高。原因可能是當(dāng)上相液料比較高時，提取系統(tǒng)黏度較大，不利于目標(biāo)物遷移，從而造成得率較低；而提取溶劑的量增加有利于目標(biāo)物溶出，導(dǎo)致得率增加。但當(dāng)提取溶劑繼續(xù)增加到一定值后，目標(biāo)物已基本提取完畢，若提取溶劑用量繼續(xù)增加會造成單位提取液中目標(biāo)物濃度的降低，也會造成提取試劑浪費(fèi)和能耗增加，同時增加了后續(xù)溶液處理難度，影響得率。此外，由于上相液料比為12 mL/g 時多糖得率與9 mL/g 時差異不大，選擇上相液料比12 mL/g用于后續(xù)試驗(yàn)。

2.1.2 下相液料比對黃貞菌質(zhì)總黃酮與多糖得率的影響（見圖2）

圖2 下相液料比對黃貞菌質(zhì)總黃酮與多糖得率的影響

由圖2 可知，黃貞菌質(zhì)總黃酮得率隨下相液料比的降低呈先增高后降低，在液料比為20 mL/g 時得率最高；黃貞菌質(zhì)多糖得率隨下相液料比的降低呈先增加后趨于平穩(wěn)。原因可能是隨著下相液料比的降低，提取溶劑量增加，目標(biāo)物溶出量增加，得率增加。但由于乙酸乙酯微溶于水，所以隨著水相（下相）增加，乙酸乙酯（上相）實(shí)際用于提取的量減少，從而導(dǎo)致黃貞菌質(zhì)總黃酮得率降低；而對于黃貞菌質(zhì)多糖，當(dāng)水相量達(dá)到一定值時多糖全部溶出，即使水相再增加對多糖得率也無明顯影響。因此，選擇下相液料比20 mL/g用于后續(xù)試驗(yàn)。

2.1.3 超聲功率對黃貞菌質(zhì)總黃酮與多糖得率的影響（見圖3）

圖3 超聲功率對黃貞菌質(zhì)總黃酮與多糖得率的影響

由圖3 可知，黃貞菌質(zhì)總黃酮與多糖得率隨著超聲功率的增大先增高后降低，當(dāng)超聲功率達(dá)60 W時，黃貞菌質(zhì)總黃酮與多糖得率達(dá)最高。原因可能是超聲功率的增大導(dǎo)致空化效應(yīng)增強(qiáng)，黃酮和多糖大量溶出，但當(dāng)超聲功率過高時，過強(qiáng)的空化效應(yīng)導(dǎo)致黃酮和多糖活性物質(zhì)發(fā)生降解引起得率減少。綜合各因素考慮，選擇超聲功率60 W用于后續(xù)試驗(yàn)。

2.1.4 超聲溫度對黃貞菌質(zhì)總黃酮與多糖得率的影響（見圖4）

圖4 超聲溫度對黃貞菌質(zhì)總黃酮與多糖得率的影響

由圖4 可知，黃貞菌質(zhì)總黃酮與多糖得率隨著超聲溫度升高呈先增高后降低，當(dāng)超聲溫度為45 ℃時黃貞菌質(zhì)總黃酮與多糖得率達(dá)到最高。原因可能是隨著超聲溫度的升高，水中的小氣泡（空化核）增多，對產(chǎn)生空化作用有利，黃貞菌質(zhì)細(xì)胞破裂加速，胞內(nèi)總黃酮和多糖大量溶出；但當(dāng)超聲溫度過高時，氣泡中的蒸氣壓太高，將增強(qiáng)氣泡閉合時的緩沖作用，導(dǎo)致空化作用減弱，黃貞菌質(zhì)總黃酮與多糖得率減少。綜合各因素考慮，選擇超聲溫度45 ℃用于后續(xù)試驗(yàn)。

2.1.5 超聲時間對黃貞菌質(zhì)總黃酮與多糖得率的影響（見圖5）

圖5 超聲時間對黃貞菌質(zhì)總黃酮與多糖得率的影響

由圖5 可知，黃貞菌質(zhì)總黃酮與多糖得率均隨著超聲時間延長先增高后降低，黃貞菌質(zhì)總黃酮得率在超聲時間為45 min 時達(dá)最大值，黃貞菌質(zhì)多糖得率在超聲時間為55 min時達(dá)最大值。原因可能是剛開始超聲處理時，由于超聲波的機(jī)械效應(yīng)、空化效應(yīng)和熱效應(yīng)使黃貞菌質(zhì)細(xì)胞總黃酮和多糖快速溶出，而超聲時間過長可能會導(dǎo)致總黃酮和多糖被破壞，影響得率。此外，超聲時間過長增加耗能，提高成本。綜合各因素考慮，選擇超聲時間45 min用于后續(xù)試驗(yàn)。

2.2 響應(yīng)面試驗(yàn)結(jié)果

2.2.1 黃貞菌質(zhì)總黃酮與多糖得率模型建立與分析

響應(yīng)面試驗(yàn)設(shè)計(jì)與結(jié)果見表2，運(yùn)用DE 8.0軟件進(jìn)行多元回歸擬合，建立以黃貞菌質(zhì)總黃酮與多糖得率的響應(yīng)面二次回歸模型的回歸系數(shù)和方差分析（見表3、表4），得黃貞菌質(zhì)總黃酮（Y1）與多糖（Y2）的多元回歸分析方程。

表2 響應(yīng)面試驗(yàn)結(jié)果分析

表3 黃貞菌質(zhì)總黃酮得率回歸模型方差分析

表4 黃貞菌質(zhì)多糖得率回歸模型方差分析

由表3、表4可知，黃貞菌質(zhì)總黃酮和多糖的相關(guān)系數(shù)R2分別為0.942 3和0.955 6，校正復(fù)相關(guān)系數(shù)RAdj2和預(yù)測復(fù)相關(guān)系數(shù)RPred2 分別為0.907 2、0.867 7 和0.912 0、0.882 9，且兩系數(shù)值均較為接近，表明總黃酮和多糖的實(shí)際值和預(yù)測值之間存在高度相關(guān)性。經(jīng)統(tǒng)計(jì)學(xué)分析發(fā)現(xiàn)，總黃酮和多糖的F值分別為15.08和21.71，兩者均具有極顯著性（P＜0.000 1），且失擬性P值均具有不顯著性（P＞0.05），表明該回歸模型精確性高。上述結(jié)果表明，Y1與Y2多元回歸分析方程可較好地預(yù)測與分析總黃酮和多糖的得率。此外，從5 個因素對總黃酮和多糖得率的影響來看，一次項(xiàng)中X1、X2、X3、X4、X5，二次項(xiàng)中，交互項(xiàng)中X1X3、X2X3、X2X4、X2X5對總黃酮得率影響顯著；一次項(xiàng)中X2、X4、X5，二次項(xiàng)中，交互項(xiàng)中X1X2、X1X4、X1X5、X2X3、X2X4、X2X5、X3X5、X4X5對多糖得率影響顯著。由F值可知，各因素對總黃酮和多糖得率的影響次序均為X2＞X5＞X4＞X1＞X3。

2.2.2 各因素對黃貞菌質(zhì)總黃酮與多糖得率的影響（見圖6、圖7）

圖6 兩因素交互作用對黃貞菌質(zhì)總黃酮得率的影響

圖7 兩因素交互作用對黃貞菌質(zhì)多糖的影響

由圖6 可知，上相液料比與超聲功率、超聲溫度、超聲時間以及超聲功率與超聲溫度的交互作用對黃貞菌質(zhì)總黃酮得率具有顯著影響（P＜0.05），其余交互作用無顯著影響，且上相液料比與超聲溫度、超聲時間的交互作用對黃貞菌質(zhì)多糖得率的影響表現(xiàn)出類似的趨勢。

由圖7可知，上相液料比與下相液料比、超聲溫度、超聲時間以及下相液料比與超聲功率、超聲溫度、超聲時間以及超聲時間與超聲功率、超聲溫度的交互作用對黃貞菌質(zhì)多糖得率具有顯著影響（P＜0.05），但上相液料比與超聲功率以及超聲功率與超聲溫度的交互作用對黃貞菌質(zhì)多糖的率影響不顯著（P＞0.05）；超聲功率與上相液料比以及超聲溫度的交互作用不是影響黃貞菌質(zhì)多糖得率主要因素。

2.2.3 黃貞菌質(zhì)總黃酮與多糖最佳提取工藝條件的確定和驗(yàn)證

根據(jù)二項(xiàng)回歸模型的預(yù)測，得出黃貞菌質(zhì)總黃酮與多糖最佳提取工藝條件為上相液料比10.71 mL/g、下相液料比15 mL/g、超聲功率68.7 W、超聲溫度48.5 ℃、超聲時間55 min?？紤]實(shí)際操作的便利性，修正黃貞菌質(zhì)總黃酮與多糖最佳提取工藝條件為上相液料比11 mL/g、下相液料比15 mL/g、超聲功率69 W、超聲溫度49 ℃、超聲時間55 min。

在此條件下，進(jìn)行3 次重復(fù)試驗(yàn)，黃貞菌質(zhì)總黃酮與多糖的實(shí)際得率為142.00 μg/g和26.12 mg/g，與預(yù)測得率143.98 μg/g 和25.34 mg/g 接近，表明該模型與實(shí)際情況擬合較好，能夠用于預(yù)測試驗(yàn)結(jié)果，可作為黃貞菌質(zhì)總黃酮與多糖同步提取工藝的回歸分析和參數(shù)優(yōu)化。

2.2.4 黃貞菌質(zhì)總黃酮與多糖體外抗氧化活性測定結(jié)果（見圖8）

圖8 黃貞菌質(zhì)總黃酮與多糖體外抗氧化活性測定結(jié)果

由圖8（a）、圖8（b）可知，隨著黃貞菌質(zhì)總黃酮與多糖濃度的升高，其對DPPH和ABTS自由基清除率不斷增強(qiáng)，當(dāng)濃度達(dá)2.0 g/L 時，黃貞菌質(zhì)總黃酮對DPPH、ABTS 的清除率分別為87.3%、80.3%；黃貞菌質(zhì)多糖對DPPH、ABTS的清除率分別為49.5%、43.3%。其中黃貞菌質(zhì)總黃酮對DPPH 和ABTS 的清除率高于黃貞菌質(zhì)多糖，接近抗壞血酸對DPPH 和ABTS 的清除率。結(jié)果表明，相對于黃貞菌質(zhì)多糖，黃貞菌質(zhì)總黃酮具有更好的體外抗氧化活性。

由圖8（c）可知，在對黃貞菌質(zhì)總黃酮與多糖還原力測試試驗(yàn)中發(fā)現(xiàn)，隨著二者濃度的增加，其還原力逐漸增強(qiáng)，在濃度為2.0 g/L時，二者的還原力分別為0.9和1.2。結(jié)果提示，相對于黃貞菌質(zhì)總黃酮，黃貞菌質(zhì)多糖具有較好的還原力。

3 討論

提取同一物質(zhì)中的不同目標(biāo)物常采用分批分次分溶劑提取，因此存在提取過程煩瑣[18]、效率低[19]、成本高[20]、費(fèi)時費(fèi)力[21]、提取不完全[22]等問題。Monteiro等[23]利用乙酸乙酯和乙醇雙相溶劑成功從黃桃中同時提取類胡蘿卜素和酚類物質(zhì)。Bu等[24]利用硫酸銨與純凈水雙相溶劑成功從黑醋栗中同時提取多酚和多糖。近年來，超聲波技術(shù)應(yīng)用于生物大分子的提取已成為一種新興的領(lǐng)域研究方向[25-26]。由超聲波產(chǎn)生的聲學(xué)效應(yīng)處理形成空化氣泡，氣泡破裂形成強(qiáng)大的沖擊波和強(qiáng)大的機(jī)械剪切力，進(jìn)而引起局部現(xiàn)象能量密度變化，加速溶劑和溶質(zhì)之間的傳質(zhì)[9,27]。

本研究采用ULDPM從黃貞菌質(zhì)中同步提取總黃酮和多糖，加之響應(yīng)面CCD 法優(yōu)化，形成了具有溶劑消耗少、操作簡單、提取時間短、提取效率高等優(yōu)點(diǎn)的創(chuàng)新提取方法。體外抗氧化研究表明，黃貞菌質(zhì)總黃酮與多糖具有較好的體外抗氧化活性和還原力，其中黃貞菌質(zhì)總黃酮具有更好的體外抗氧化活性，而黃貞菌質(zhì)多糖具有較好的還原力。因此，黃貞菌質(zhì)總黃酮和多糖可應(yīng)用于飼料添加劑以及天然活性抗氧化藥物的開發(fā)。

4 結(jié)論

采用ULDPM結(jié)合響應(yīng)面同步優(yōu)化提取黃貞菌質(zhì)中總黃酮和多糖能夠減少提取時間，簡化提取流程，提高提取效率。黃貞菌質(zhì)總黃酮與多糖較好的體外抗氧化活性可為進(jìn)一步開發(fā)黃貞菌質(zhì)類飼料添加劑奠定基礎(chǔ)。