陳義波,龍玲,范幸,林蓓蓓(長沙市婦幼保健院婦科,長沙 410007)
宮頸癌是最常見的女性生殖系統(tǒng)惡性腫瘤,據(jù)最新全球癌癥年報報道,我國2020年新發(fā)宮頸癌病例11萬例,其中死亡病例數(shù)近6萬例[1],嚴重危害女性健康。Wilms腫瘤1相關蛋白(Wilms'tumor 1 associating protein,WTAP)作為一種致癌分子,在基因表達調(diào)控中發(fā)揮重要作用[2]。研究表明WTAP在胰腺癌、卵巢癌等多種腫瘤細胞中異常高表達,具有腫瘤特異性和促癌效應[3-4],但其在宮頸癌中的作用尚未見明確報道。宮頸癌的發(fā)生發(fā)展過程極其復雜,細胞增殖失控在其中起重要作用[5]。絲氨酸/蘇氨酸蛋白激酶(AKT serine/threonine kinase,AKT)作為細胞存活和代謝過程的一種絲氨酸蘇氨酸激酶,在細胞增殖調(diào)控中發(fā)揮重要作用[6]。AKT信號通路的激活能夠調(diào)節(jié)大量下游靶分子,影響宮頸癌細胞增殖[7]。N6甲基腺嘌呤(N6-methyladenosine,m6A)修飾是最常見的RNA轉(zhuǎn)錄后修飾之一,影響RNA的剪接、翻譯和穩(wěn)定性[8]。m6A參與宮頸癌細胞增殖的調(diào)控,但作為m6A甲基轉(zhuǎn)移酶關鍵組分的WTAP在宮頸癌細胞增殖調(diào)控中的作用暫無報道。本研究旨在探討WTAP與宮頸癌預后的關系以及在宮頸癌HeLa細胞中的表達情況,并在HeLa細胞中敲低或過表達WTAP,觀察其對細胞增殖的影響及探討其可能的調(diào)控機制。
人正常宮頸上皮細胞HUCEC、宮頸癌SiHa細胞和HeLa細胞(武漢普諾賽生命科技有限公司),DMEM培養(yǎng)液、胎牛血清、胰蛋白酶、磷酸鹽緩沖液(美國Gibco公司),CCK8試劑盒和結晶紫染料(北京蘭杰柯科技有限公司)。靶向WTAP的siRNA和對照siRNA(NC siRNA)(廣州銳博生物公司),對照質(zhì)粒(empty vector)和WTAP過表達質(zhì)粒(WTAPOE vector)(武漢淼靈生物科技有限公司),轉(zhuǎn)染試劑Lipofectamine 3000(美國Invitrogen公司),抗WTAP、p-AKT、AKT和G蛋白信號調(diào)節(jié)物5(Regulator of G Protein Signaling 5,RGS5)抗體(美國Cell Signaling Technology公司),m6A抗體(美國Abcam公司),PrimeScript RT reagent Kit和TB Green Premix Ex Taq(日本Takara公司)。
通過OncoLnc數(shù)據(jù)庫(https://www.oncolnc.org)和Cancer RNA-Seq Nexus(CRN)數(shù)據(jù)庫(https://syslab4.nchu.edu.tw),采用COX回歸法進行WTAP表達高/低表達組的宮頸癌生存分析,數(shù)據(jù)庫中宮頸癌資料均來源于癌癥基因組圖譜(The Cancer Genome Atlas,TCGA)數(shù)據(jù)庫。
HUCEC、SiHa和HeLa細胞用含10%FBS的DMEM培養(yǎng)液,于37℃、5%CO2細胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。隔天換液、0.125%胰蛋白酶消化傳代,取對數(shù)生長期細胞用于實驗。
HeLa細胞按2×105個/孔接種于6孔板中,待密度達50%時進行細胞轉(zhuǎn)染操作,按Lipofectamine 3000說明書進行轉(zhuǎn)染細胞48 h,利用Western blot檢測WTAP蛋白表達水平,用于后續(xù)實驗。細胞分為對照siRNA組(NC siRNA)、WTAP-siRNA組(WTAPsiRNA)、對照質(zhì)粒組(Empty vector)、WTAP過表達質(zhì)粒組(WTAPOE vector)。
將HeLa細胞依照不同分組進行轉(zhuǎn)染處理48 h后,按5×103個/孔接種于96孔板中,每組6個復孔,48 h后每孔加入CCK8試劑10 μL,37℃孵育1 h后通過酶標儀測定450 nm的吸光度值[9],上述實驗重復3次。
將HeLa細胞依照不同分組進行轉(zhuǎn)染處理48 h后,按1×103個/孔接種于35 mm培養(yǎng)皿,每組3個復孔,每隔2~3 d換液,14 d后4%多聚甲醛固定30 min,0.1%結晶紫染色液體染色10 min后拍照,記錄克隆形成數(shù)量[10],上述實驗重復3次。
將細胞依照不同分組進行轉(zhuǎn)染處理48 h后,按2×105個/孔接種于6孔板中,48 h后用RIPA裂解細胞收集總蛋白并進行BCA定量,煮沸5 min蛋白變性。取20 μg總蛋白通過10%的SDSPAGE膠電泳分離,轉(zhuǎn)移至PVDF膜并用5%脫脂奶粉室溫封閉1 h,WTAP、p-AKT、AKT或RGS5一抗(1∶2000)4℃孵育過夜,洗膜5次,二抗(1∶5000)室溫孵育1 h,ECL化學發(fā)光采集圖像及灰度分析,以GAPDH作為內(nèi)參照,各組蛋白表達水平=各目的蛋白灰度值/GAPDH蛋白灰度值[11]。上述實驗重復3次。
將HeLa細胞依照不同分組進行轉(zhuǎn)染處理48 h后,按2×105個/孔接種于6孔板中,每組6個復孔,48 h后用Trizol裂解細胞收集總RNA并分為2份,分為用于Input和m6A抗體IP富集m6A修飾的RNA,再逆轉(zhuǎn)錄擴增成cDNA[12],qPCR檢測RGS5水平,程序為95℃ 10 s、60℃ 34 s、72℃30 s,共40個循環(huán)。RGS5引物由上海生工生物公司合成,根據(jù)RGS5 mRNA序列,在Primer3在線數(shù)據(jù)庫(https://bioinfo.ut.ee/primer3-0.4.0/)設計RGS5 mRNA的引物,序列為Forward primer(5'-GACATGGCCCAGAAAAGAATC-3')和Reverse primer(5'-CACAAAGCGAGGCAGAGAATC-3'),并進一步在Primer-BLAST(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/tools/primer-blast/)上比對證明其擴增產(chǎn)物的特異性。上述實驗重復3次。
采用Log-rank檢驗分析WTAP表達與宮頸癌生存的相關性。采用GraphPad Prism 8軟件處理數(shù)據(jù)及繪圖,用均數(shù)±標準差(±s)表示數(shù)據(jù),采用單因素方差分析(one-way ANOVA)進行多組間比較,其中兩兩比較采用Bonferroni校正的t檢驗,P<0.05代表差異有統(tǒng)計學意義。
通過OncoLnc數(shù)據(jù)庫和Cancer RNA-Seq Nexus(CRN)數(shù)據(jù)庫分別分析WTAP基因表達與宮頸癌患者預后的相關性,結果顯示,WTAP高表達組宮頸癌患者總生存期顯著低于WTAP低表達患者,Log-rank檢驗P=0.0412(OncoLnc)和0.078(CRN),見圖1。
圖1 WTAP基因表達與宮頸癌患者預后關系Fig 1 Relationship between WTAP gene expression and prognosis of patients with cervical cancer
通過Western blot實驗檢測正常宮頸上皮細胞HUCEC、宮頸癌SiHa和HeLa細胞的WTAP蛋白表達,結果顯示,與HUCEC相比,SiHa細胞和HeLa細胞WTAP蛋白表達顯著高表達(P<0.05),HeLa細胞中WTAP蛋白升高更顯著,用于后續(xù)實驗研究,見圖2。
圖2 正常宮頸上皮細胞(HUCEC)和宮頸癌細胞WTAP蛋白表達Fig 2 Expression of WTAP protein in HUCEC and cervical cancer cells
通過Western blot實驗檢測siRNA或質(zhì)粒轉(zhuǎn)染后48 h的HeLa細胞的WTAP蛋白表達,結果顯示,與對照siRNA(NC siRNA)組相比,WTAPsiRNA組WTAP蛋白表達顯著降低(P<0.05);與對照質(zhì)粒組相比,WTAP過表達質(zhì)粒組WTAP蛋白表達顯著升高(P<0.05),見圖3。
圖3 HeLa細胞中WTAP siRNA和過表達效果Fig 3 Effect of WTAP siRNA and its overexpression in HeLa cells
通過CCK8和克隆形成實驗檢測HeLa細胞增殖情況,結果顯示,與對照siRNA組相比,WTAPsiRNA組細胞CCK8的OD450nm值顯著降低、細胞克隆形成數(shù)量顯著減少(P<0.05);與對照質(zhì)粒組相比,WTAP過表達質(zhì)粒組細胞CCK8的OD450nm值顯著升高、細胞克隆形成數(shù)量顯著增多(P<0.05),見圖4。
圖4 WTAP對HeLa細胞增殖的影響Fig 4 Effect of WTAP on the proliferation of HeLa cells
通過Western blot實驗檢測HeLa細胞p-AKT、AKT和RGS5情況,結果顯示,與對照siRNA組相比,WTAP-siRNA組AKT磷酸化水平(p-AKT/AKT)顯著降低,RGS5表達顯著增多(P<0.05);與對照質(zhì)粒組相比,WTAP過表達質(zhì)粒組AKT磷酸化水平顯著升高,RGS5表達顯著降低(P<0.05),見圖5。
圖5 WTAP對HeLa細胞AKT磷酸化和RGS5表達的影響Fig 5 Effect of WTAP on AKT phosphorylation and RGS5 expression of HeLa cells
通過m6A-IP-qPCR實驗檢測HeLa細胞RGS5m6A水平,結果顯示,與對照siRNA組相比,WTAP-siRNA組RGS5m6A水平降低(P<0.05);與對照質(zhì)粒組相比,WTAP過表達質(zhì)粒組RGS5m6A水平升高(P<0.05),見圖6。
圖6 WTAP對HeLa細胞RGS5 m6A水平的影響Fig 6 Effect of WTAP on RGS5 m6A level of HeLa cells
宮頸癌發(fā)病率在我國女性惡性腫瘤中居第二位,僅次于乳腺癌,近年來,宮頸癌發(fā)病率上升,且呈現(xiàn)年輕化趨勢。盡管宮頸細胞學篩查在一定程度上能降低宮頸癌患者死亡率,但其在女性健康方面仍是一個巨大挑戰(zhàn)[13]。RNA修飾種類多達100多種,其中m6A修飾是真核生物中最為普遍的修飾形式,在組織發(fā)育、細胞更新和分化、損傷應答等生物學過程中發(fā)揮著重要的作用。m6A和癌癥發(fā)生發(fā)展的關系也十分密切[14]。WTAP作為一種重要的m6A甲基轉(zhuǎn)移酶,最初被鑒定為與Wilms腫瘤1蛋白結合的剪接因子[15],在許多腫瘤中發(fā)揮著重要的作用[16],研究報道顯示它能夠調(diào)節(jié)肝內(nèi)膽管癌細胞的遷移與侵襲,在急性白血病中也被認為是一種致癌基因,還能作為膠質(zhì)瘤耐預后不良的預測指標[17-18]。
本文首先通過腫瘤公共數(shù)據(jù)庫挖掘WTAP與宮頸癌患者生存期的關聯(lián),結果顯示W(wǎng)TAP高表達組宮頸癌患者總生存期明顯低于WTAP低表達患者。并進一步比較正常宮頸上皮細胞HUCEC、宮頸癌SiHa和HeLa細胞中WTAP蛋白的表達,結果顯示HeLa細胞中WTAP蛋白顯著升高,提示W(wǎng)TAP在宮頸癌中同樣高表達,且可能起致癌作用。本研究結果表明,利用siRNA敲低WTAP后,HeLa細胞增殖明顯受限;而過表達WTAP則顯著促進HeLa細胞的增殖,這與已有文獻報道敲低WTAP會抑制腎癌腫瘤細胞增殖的結果類似[19]。
AKT是細胞增殖調(diào)控的關鍵信號通路之一,針對AKT信號通路“關鍵點”的小分子抑制劑在抗腫瘤方面已取得明顯的應用效果[20]。研究報道顯示宮頸癌組織中p-AKT的表達顯著增高,且隨著疾病的進展表達逐漸增強,與宮頸癌的分化及分期相關[21]。本研究結果顯示,敲低WTAP抑制AKT活化,而過表達WTAP促進AKT活化,這與已有研究報道的WTAP能激活AKT通路促進胰腺癌細胞的結果類似[22]。
G蛋白偶聯(lián)受體的激活能夠調(diào)控AKT信號通路[23],RGS5作為GTP酶激活劑調(diào)節(jié)異源三聚體G蛋白,能夠鈍化AKT信號通路而影響細胞活力[24]。本研究結果顯示,敲低WTAP促進RGS5表達,而過表達WTAP抑制RGS5表達。考慮到WTAP作為一種m6A甲基轉(zhuǎn)移酶[25],Chen等[26]報道WTAP能夠通過m6A修飾HMBOX1而促進骨肉瘤發(fā)生。本文選用m6A-IP-qPCR進行WTAP是否調(diào)控RGS5的m6A修飾分析,m6A-IP-qPCR是一種利用m6A抗體富集m6A修飾的RNA并進行qPCR定量分析檢測方法,本文研究結果顯示敲低WTAP后RGS5的m6A修飾減少,而過表達WTAP則促進RGS5的m6A修飾,提示W(wǎng)TAP能影響RGS5的m6A修飾,但具體m6A修飾的位點和區(qū)域仍需要進一步的深入研究。
綜上所述,本研究利用腫瘤生物信息學網(wǎng)絡分析WTAP與宮頸癌患者預后的相關性情況,并在細胞水平證實宮頸癌細胞WTAP蛋白高表達,并進一步明確WTAP促進HeLa細胞增殖,其機制可能與調(diào)節(jié)RGS5的m6A修飾繼而影響AKT信號通路活化有關,這為以WTAP及其調(diào)控的通路作為潛在靶標治療宮頸癌提供了實驗依據(jù)。