摘要：MMP15、PICK1基因均是哺乳動(dòng)物性腺組織中影響性腺生理功能正常發(fā)揮的重要影響因子，但它們?cè)谇甭檠虿G丸組織中的表達(dá)規(guī)律尚不明晰。為研究黔北麻羊不同月齡的睪丸中MMP15、PICK1基因的表達(dá)情況，本試驗(yàn)以黔北麻羊?yàn)檠芯繉?duì)象，通過qRT-PCR技術(shù)分別檢測MMP15與PICK1基因在1、3、6、9、12月齡的黔北麻羊睪丸中的表達(dá)水平并建立基因表達(dá)的標(biāo)準(zhǔn)曲線。結(jié)果顯示：MMP15、PICK1基因在黔北麻羊不同月齡睪丸組織中均有表達(dá)；MMP15基因在黔北麻羊不同月齡睪丸中的表達(dá)量從高到低排列為：12月齡＞1月齡＞9月齡＞3月齡＞6月齡；12月齡與1月齡的表達(dá)差異不顯著（Pgt;0.05），二者表達(dá)量均極顯著高于3月齡、6月齡、9月齡（Plt;0.01）；9月齡表達(dá)顯著高于3月齡（Plt;0.05），極顯著高于6月齡（Plt;0.01）；3月齡表達(dá)極顯著高于6月齡（Plt;0.01）。PICK1基因在黔北麻羊不同月齡睪丸中的表達(dá)量從高到低排列分別是：3月齡＞6月齡＞12月齡＞9月齡＞1月齡；3、6月齡其表達(dá)量極顯著高于9、12月齡（Plt;0.01）；1月齡與其他幾個(gè)月齡相比，其表達(dá)量均極顯著低于其他月齡（Plt;0.01）。結(jié)合黔北麻羊的生理機(jī)能發(fā)育情況，黔北麻羊在6月齡時(shí)已經(jīng)基本達(dá)到性成熟，所以此時(shí)睪丸內(nèi)細(xì)胞活動(dòng)增強(qiáng)，睪丸機(jī)能活躍。本次試驗(yàn)結(jié)果表明，黔北麻羊睪丸生精功能的正常發(fā)揮或與MMP15及PICK1基因的表達(dá)量有關(guān)。

關(guān)鍵詞：黔北麻羊；MMP15；PICK1；相對(duì)表達(dá)量；睪丸

中圖分類號(hào)：S827

文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼：A

文章編號(hào)：1008－0457（2023）04－0018－08

國際DOI編碼：10.15958/j.cnki.sdnyswxb.2023.04.003

黔北麻羊（Caprahircus）是極具有貴州本土特色的地方山羊品種，具有肉質(zhì)細(xì)嫩味美、耐粗飼、繁殖力高等優(yōu)良特性［1］。在繁殖性能表現(xiàn)方面，黔北麻羊性成熟較早，公母羊4月齡基本性成熟，公羊6月齡配種，母羊8月齡左右配種，全年可發(fā)情［2］。有研究發(fā)現(xiàn)，黔北麻羊公羊一年四季均可配種，但其精液品質(zhì)在很大程度上受環(huán)境影響［3］。

基質(zhì)金屬蛋白酶（matrixmetalloproteinases，MMPs）是一類需要在金屬離子的輔助下才能正常發(fā)揮生理作用的蛋白酶，細(xì)胞外基質(zhì)（ECM）中的各種蛋白成分幾乎都能被MMPs降解［4］。在早期研究中，基質(zhì)金屬蛋白酶15基因（matrixmetalloproteinases15，MMP15）即MT2-MMP，作為MMPs家族中第二個(gè)被發(fā)現(xiàn)的成員，首次是在人類肺的cDNA文庫中被發(fā)現(xiàn)；其表達(dá)產(chǎn)物由669個(gè)氨基酸組成，不同于在多種組織中呈現(xiàn)低表達(dá)，它在腫瘤組織中呈高表達(dá)水平，不僅參與細(xì)胞外基質(zhì)的降解，控制著細(xì)胞外基質(zhì)的連接，還可以通過激活MMP-2參與腫瘤細(xì)胞對(duì)周圍正常細(xì)胞的侵襲和腫瘤細(xì)胞的轉(zhuǎn)移［5］，且MMP15基因的高表達(dá)還與疾病發(fā)展晚期或病變的侵襲性具有強(qiáng)相關(guān)性［6］。Tao等［7］研究發(fā)現(xiàn)，具有催化活性的MMP15促進(jìn)了細(xì)胞的運(yùn)動(dòng)而不是轉(zhuǎn)化；Fortunato等［8］研究發(fā)現(xiàn)，人類羊絨毛膜有一個(gè)完整的MMP系統(tǒng)，內(nèi)源性基質(zhì)金屬蛋白酶在人胎膜中被激活有助于膜弱化并導(dǎo)致胎膜破裂。MMP15在哺乳動(dòng)物性腺中也呈現(xiàn)高表達(dá)，它是參與卵泡破裂過程的蛋白酶中的唯一LH（促黃體素）誘導(dǎo)蛋白酶［9］。目前有關(guān)MMP15基因在山羊方面的研究還未見報(bào)道，在其不同年齡階段睪丸的表達(dá)情況尚不明確。

蛋白激酶C相互作用蛋白1基因（proteinthatinteractswithCkinase1，PICK1）在哺乳動(dòng)物各種組織內(nèi)均有表達(dá)，其作為一種外周膜蛋白基因，特別在大腦、睪丸等組織中有著較高水平的表達(dá)，PICK1蛋白上有一個(gè)PDZ結(jié)構(gòu)域，Xu等［10］經(jīng)過研究已經(jīng)證實(shí)，該結(jié)構(gòu)有著與配體蛋白結(jié)合力強(qiáng)的特點(diǎn)，具有能特異性結(jié)合脂質(zhì)分子以及促進(jìn)精子頂體的正常形成等功能。有研究表明，雄性PICK1基因敲除的小鼠是完全不育的，其表現(xiàn)類型類似于人類疾病球形精子癥［11］。同時(shí)，He等［12］已經(jīng)證實(shí)，PICK1在精子細(xì)胞中缺乏會(huì)導(dǎo)致異常高爾基體囊泡轉(zhuǎn)移到頂體，破壞頂體的正常形成導(dǎo)致畸形精子，使雄性動(dòng)物不育。也有研究表明，PICK1基因在睪丸組織中下調(diào)可能是導(dǎo)致雄性生精功能障礙的重要原因之一［13］。此外，PICK1蛋白可以作為一個(gè)錨定蛋白，與各種膜蛋白受體的亞基結(jié)合并且使該受體磷酸化［14］。如果能夠充分利用PICK1蛋白的這些特性，將PICK1蛋白PDZ結(jié)構(gòu)域上的靶點(diǎn)用生物小分子搶先占領(lǐng)，就可以達(dá)到阻礙其與配體蛋白結(jié)合的效果，達(dá)到阻止PICK1蛋白發(fā)揮作用的目的，從而發(fā)揮藥物治療疾病的作用［15-16］。由此可知PICK1基因是很有前景的疾病治療及雄性繁殖障礙治療的靶基因，極具研究意義。但現(xiàn)有關(guān)PICK1基因在山羊睪丸中的表達(dá)情況還未見報(bào)道，故以黔北麻羊?yàn)檠芯繉?duì)象，探究MMP15、PICK1基因在黔北麻羊不同月齡睪丸組織中的表達(dá)規(guī)律，以期為研究山羊繁殖力提供基礎(chǔ)數(shù)據(jù)。

1材料與方法

1.1試驗(yàn)動(dòng)物

黔北麻羊公羊睪丸組織由貴州省習(xí)水縣富興畜牧業(yè)開發(fā)公司提供，閹割后迅速采集1、3、6、9、12月齡各3只羊的睪丸組織，置于液氮中運(yùn)回實(shí)驗(yàn)室于-80℃冰箱妥善保存。

1.2試驗(yàn)試劑

TRIzol@Reagent試劑盒（貴州綠盟英創(chuàng)生物科技有限公司）；熒光定量試劑2×SYBRPremixExTaqTMq-PCRMix（擎科生物科技有限公司）；StarScriptII逆轉(zhuǎn)錄試劑盒（Genstar）（貴州西寶生物有限公司）。DEPC水、丙三醇（貴州艾瑞特生物有限公司）。

1.3試驗(yàn)儀器

移液槍由德國Eppendprf公司購入；超微量分光光度計(jì)（NANODROP2000型）采購自美國ThermoFisher公司；水平電泳儀（DYCP-31C）購自北京六一儀器廠；PCR擴(kuò)增儀（C1000TouchTM）、實(shí)時(shí)熒光定量PCR儀（型號(hào)為CFX96RealTimeSystem）、凝膠成像系統(tǒng)（UniversalHoodⅡ）均從美國BIO-RAD有限公司購入。高溫高壓滅菌鍋（HRLM-80）購自青島海爾集團(tuán)；超凈工作臺(tái)（SW-CJ-2D）購自蘇州江東精密儀器有限公司。

1.4試驗(yàn)方法

1.4.1引物設(shè)計(jì)

根據(jù)GenBank公布的山羊MMP15基因序列（登錄號(hào)：XM_018062063.1）以及PICK1基因的基因序列（登錄號(hào)：XM_018048745.1），利用PrimerPremier5.0軟件進(jìn)行引物設(shè)計(jì)，以β-actin作為內(nèi)參基因，設(shè)計(jì)引物后交由上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)股份有限公司合成。引物基本信息見表1。

1.4.2RNA的提取及cDNA第一鏈合成

使用TRIzo1@Reagent試劑盒分別提取黔北麻羊不同月齡（1、3、6、9、12月齡）睪丸組織中的RNA。使用超微量分光光度計(jì)測定其濃度與純度并記錄數(shù)值，將峰圖單一、曲線平滑、OD260/OD280比值在1.8～2.1間的RNA使用TranscriptorFirstStrandcDNASynthesisKit逆轉(zhuǎn)錄試劑盒逆轉(zhuǎn)錄合成cDNA第一鏈。將不同月齡睪丸提取的RNA分別定量為1000ng/μL，反轉(zhuǎn)錄體系為20μL：dNTPmix（2.5mmol/LEach）4μL，Primermix2μL，RNA模板2μL，5xRTBuffer4μL，DTT（0.1mol/L）2μL，HiFiScript1μL，RNase-FreeddH2O5μL。PCR程序：42℃孵育50min，85℃孵育5min，4℃保存產(chǎn)物。程序結(jié)束后將其產(chǎn)物于-20℃冰箱保存以備后續(xù)試驗(yàn)使用。

1.4.3qRT-PCR檢測睪丸組織中PICK1、MMP15表達(dá)情況

以β-actin為內(nèi)參基因，檢測PICK1、MMP15基因在不同月齡黔北麻羊睪丸組織中的表達(dá)量。qRT-PCR反應(yīng)體系為（10μL）：cDNA模板0.5μL，2×SYBRPremixExTaqTM酶5μL，上、下游引物（10pmol/μL）各0.4μL，ddH2O3.7μL。qRT-PCR反應(yīng)程序：95℃預(yù)變性2min，95℃變性15s，退火30s，72℃延伸30s，40個(gè)循環(huán)，熔解曲線由機(jī)器自動(dòng)設(shè)置，每個(gè)試驗(yàn)設(shè)置3個(gè)重復(fù)。

1.4.4建立基因標(biāo)準(zhǔn)曲線

1.4.4.1熒光產(chǎn)物凝膠回收

將收集得到的qRT-PCR產(chǎn)物，按照qRT-PCR產(chǎn)物∶DNALoadingBuffer=5∶1的體積比進(jìn)行混合，再將混合物以120V的電壓進(jìn)行凝膠電泳35min。根據(jù)膠回收試劑盒說明書進(jìn)行目的基因片段大小部分凝膠的回收，使用超微量分光光度計(jì)測定其濃度與純度并記錄數(shù)值，并將回收得到的目的DNA片段置于-20℃冰箱保存以備使用。

1.4.4.2目的基因的連接與轉(zhuǎn)化

在超凈工作臺(tái)內(nèi)，使用T克隆試劑盒，將回收得到的純化DNA片段先進(jìn)行T載體的連接。將連接液短暫離心充分混勻后于金屬浴16℃過夜連接，再將連接好的載體轉(zhuǎn)化進(jìn)入感受態(tài)細(xì)胞。轉(zhuǎn)化體系為10μL：膠回收產(chǎn)物5.7μL，PTOPO-TⅡVector（20ng/μL）1μL，10×Enhancer1μL，sterilizedddH2O2.3μL；陽性對(duì)照組組分為：800bpControl（20ng/μL）1μL，PTOPO-TⅡVector（20ng/μL）1μL，10×Enhancer1μL，sterilizedddH2O7μL。

1.4.4.3單菌落的培養(yǎng)與擴(kuò)繁

將培養(yǎng)得到的菌落平板進(jìn)行單菌落的繼續(xù)培養(yǎng)，每個(gè)離心管中組分為：3μL氨芐青霉素、3mL液體培養(yǎng)基及單個(gè)菌落，37℃震蕩培養(yǎng)12h后進(jìn)行菌液PCR驗(yàn)證；將驗(yàn)證的陽性菌液在50mL離心管內(nèi)再次擴(kuò)繁，其體系為：20mL液體培養(yǎng)基、菌液20μL、氨芐青霉素20μL，37℃震蕩培養(yǎng)12h。培養(yǎng)完成后再次做菌液PCR，確定為擴(kuò)繁的目的基因菌液。

1.4.4.4目的基因質(zhì)粒提取

使用Endo-freePlasmidMiniKitⅡ試劑盒說明書提取陽性菌液質(zhì)粒，測其濃度記錄數(shù)據(jù)，將得到的質(zhì)粒置于-20℃冰箱保存。

1.4.4.5基因的標(biāo)準(zhǔn)曲線建立

將陽性質(zhì)粒稀釋為6個(gè)不同濃度梯度，每一個(gè)濃度梯度濃度值與上一個(gè)梯度濃度相差10倍。將不同梯度濃度進(jìn)行標(biāo)準(zhǔn)曲線qRT-PCR檢測，反應(yīng)體系為（10μL）：2×SYBRPremixExTaqTM酶5μL，上、下游引物各（10pmol/μL）0.4μL，不同濃度的質(zhì)粒0.5μL，ddH2O3.7μL。各基因退火溫度見表1，qRT-PCR程序與實(shí)時(shí)熒光定量檢測基因表達(dá)量一致。

1.4.5數(shù)據(jù)分析

利用2-△△Ct相對(duì)定量計(jì)算目的基因的相對(duì)表達(dá)量。使用SPSS20.0軟件中One-WayANOVA進(jìn)行單因素方差分析，使用LSD法進(jìn)行差異顯著性檢驗(yàn)，試驗(yàn)結(jié)果采用平均值±標(biāo)準(zhǔn)差來表示，以Plt;0.05作為差異顯著性判斷標(biāo)準(zhǔn)，Plt;0.01作為差異極顯著性的判斷標(biāo)準(zhǔn)。

2結(jié)果與分析

2.1MMP15、PICK1基因在各組織中PCR擴(kuò)增產(chǎn)物的檢測

以反轉(zhuǎn)錄得到的cDNA為模板進(jìn)行普通PCR擴(kuò)增，再用1.5％的瓊脂糖凝膠電泳檢測擴(kuò)增的DNA片段，結(jié)果如圖1所示。MMP15基因片段大小為168bp，PICK1基因片段大小為127bp，與預(yù)測擴(kuò)增片段大小一致，且擴(kuò)增目的基因產(chǎn)物條帶清晰，特異性較強(qiáng)，引物特異性良好，可用于進(jìn)行下一步試驗(yàn)。

2.2qRT-PCR的擴(kuò)增曲線與熔解曲線

由圖2、圖3可知，在黔北麻羊不同月齡睪丸中，MMP15、PICK1基因的擴(kuò)增曲線均呈現(xiàn)出“S”型，曲線走勢一致。熔解曲線也均呈現(xiàn)單峰，條帶緊密且無雜帶、無雙峰的出現(xiàn)，無引物二聚體，特異性強(qiáng)。

2.3MMP15與PICK1基因在黔北麻羊不同月齡睪丸中的表達(dá)規(guī)律分析

2.3.1黔北麻羊不同月齡睪丸中MMP15基因的表達(dá)分析

如圖4所示，MMP15在黔北麻羊不同月齡睪丸中均有表達(dá)，且在5個(gè)不同月齡睪丸中表達(dá)量從高到低依次是：12月齡＞1月齡＞9月齡＞3月齡＞6月齡；其中MMP15基因在12月齡中表達(dá)量最高，12月齡與1月齡的表達(dá)不顯著（Pgt;0.05），二者表達(dá)量均極顯著高于3月齡、6月齡、9月齡（Plt;0.01）；9月齡顯著表達(dá)高于3月齡（Plt;0.05），極顯著表達(dá)高于6月齡（Plt;0.01）；3月齡極顯著表達(dá)高于6月齡（Plt;0.01）；在6月齡中表達(dá)量最低。

2.3.2黔北麻羊不同月齡睪丸組織中PICK1基因的表達(dá)量分析

如圖5所示，PICK1基因在黔北麻羊不同月齡睪丸中均有著不同程度的表達(dá)。在5個(gè)不同月齡睪丸中的表達(dá)量從高到低排列依次是：3月齡＞6月齡＞12月齡＞9月齡＞1月齡。其中3月齡表達(dá)量最高，1月齡表達(dá)量最低；3、6月齡其表達(dá)量極顯著高于9、12月齡（Plt;0.01）；1月齡表達(dá)量均極顯著低于其他月齡（Plt;0.01）。

2.3.3MMP15、PICK1、β-actin基因菌液PCR驗(yàn)證結(jié)果

將經(jīng)過qRT-PCR擴(kuò)增的MMP15、PICK1、β-actin基因產(chǎn)物進(jìn)行膠回收，回收后根據(jù)T克隆試劑盒進(jìn)行目的基因的連接、轉(zhuǎn)化，隨后挑取單菌落進(jìn)行擴(kuò)繁，將擴(kuò)繁的菌液進(jìn)行PCR驗(yàn)證（圖6）。凝膠條帶較清晰、干凈，重復(fù)孔條帶一致，菌液擴(kuò)繁成功，所得擴(kuò)繁菌液可用于質(zhì)粒提取，進(jìn)行下一步試驗(yàn)。

2.3.4成功建立MMP15、PICK1、β-actin基因標(biāo)準(zhǔn)曲線

由圖7、8、9可見，MMP15、PICK1、β-actin基因的質(zhì)粒經(jīng)過質(zhì)粒qRT-PCR后，得到了清晰、平滑的擴(kuò)增曲線及“S”型熔解曲線，其曲線平滑且僅有單一波峰，整體趨勢一致，擴(kuò)增性良好。其標(biāo)準(zhǔn)曲線平直，引物擴(kuò)增效率良好，提示各基因的標(biāo)準(zhǔn)曲線建立成功。

3結(jié)論與討論

本試驗(yàn)以黔北麻羊?yàn)檠芯繉?duì)象，利用qRT-PCR技術(shù)，圍繞黔北麻羊不同月齡睪丸中MMP15、PICK1基因的表達(dá)情況展開試驗(yàn)，結(jié)果顯示MMP15、PICK1基因在黔北麻羊5個(gè)不同月齡的睪丸中均有不同程度表達(dá)。通過對(duì)MMP15基因及PICK1基因在黔北麻羊不同月齡睪丸中的表達(dá)量進(jìn)行分析，發(fā)現(xiàn)MMP15基因在6月齡中表達(dá)量最低，1月齡與12月齡的表達(dá)量最高，MMP15基因的表達(dá)整體呈現(xiàn)先下降后提高的趨勢。PICK1基因在1月齡表達(dá)量最低，后出現(xiàn)上調(diào)，并在后面幾個(gè)月齡均保持高表達(dá)。

有研究表明，許多哺乳動(dòng)物，如大鼠的生精上皮中能夠產(chǎn)生調(diào)節(jié)血睪屏障的生物活性肽；如F5多肽，它是一種能夠調(diào)控頂端胞外特化結(jié)構(gòu)（apicalectoplasmicspecialization，apicalES）連接蛋白的物質(zhì)，它在基質(zhì)金屬蛋白酶的作用下水解產(chǎn)生；正常生理狀態(tài)下F5多肽能夠誘導(dǎo)血睪屏障的重塑，增加屏障的滲透性，以此促進(jìn)前細(xì)線期精子細(xì)胞跨越血睪屏障進(jìn)入近腔室，進(jìn)而促進(jìn)精子的成熟［17］。已有研究證實(shí)，基質(zhì)金屬蛋白酶基因通過切割多種細(xì)胞外基質(zhì)（ECM）和非ECM靶點(diǎn)，對(duì)胚胎、睪丸等器官組織發(fā)育進(jìn)程發(fā)揮重要作用［4］。此外，在敲除PICK1基因的小鼠模型中發(fā)現(xiàn)與人圓頭精子癥相似的表型，因缺乏頂體而無法與卵子相結(jié)合而導(dǎo)致不孕；并首次將PICK1基因作為圓頭精子癥候選基因，證實(shí)了PICK1基因?qū)S持睪丸精子正常發(fā)育有著重要影響［18］。Xiao等［19］也發(fā)現(xiàn)PICK1基因敲除的小鼠表現(xiàn)出不育、睪丸縮小、精子數(shù)量下降、死精子增多、精子形態(tài)表現(xiàn)為圓頭精子癥等癥狀；更嚴(yán)重的還出現(xiàn)生精小管加速凋亡及精子活力嚴(yán)重下降的現(xiàn)象，故此推測PICK1基因不僅影響精子頂體的正常形成，還可能作用于其他途徑從而影響精子的發(fā)生［20］。雄性動(dòng)物的睪丸發(fā)育狀況能夠直接影響雄性動(dòng)物的性成熟時(shí)間及其精液品質(zhì)，同時(shí)決定著其繁殖性能的發(fā)揮［21］。山羊睪丸曲精細(xì)管的橫截面細(xì)胞總數(shù)隨年齡增長而增多，且6月齡顯著高于1、3月齡［22］，且有研究表明，睪丸生精小管的橫截面積決定了睪丸的生精效率［23］，這都表明，睪丸發(fā)育越好，其生精效率越高，與器官發(fā)育有關(guān)的MMP15基因以及與生精活動(dòng)有關(guān)的PICK1基因在山羊睪丸中的表達(dá)應(yīng)該隨山羊年齡的增長而呈現(xiàn)出不同的表達(dá)水平。

山羊出生后睪丸發(fā)育過程就是器官由生長發(fā)育到生精階段，薄東東［24］對(duì)山羊睪丸發(fā)育階段的研究發(fā)現(xiàn)，山羊睪丸發(fā)育的高峰期有兩個(gè)，分別是出生前后及初情期；還發(fā)現(xiàn)山羊睪丸組織發(fā)育在120～180d時(shí)由睪丸發(fā)育期進(jìn)入睪丸生精期。根據(jù)MMP15基因及PICK1基因的生理作用，再結(jié)合山羊睪丸的發(fā)育規(guī)律及性成熟時(shí)期來看，在出生前山羊睪丸進(jìn)入第一次發(fā)育期，器官發(fā)育速度提高，與器官發(fā)育有關(guān)的MMP15基因呈現(xiàn)高表達(dá)，而與生精功能緊密相關(guān)的PICK1基因的表達(dá)量并不高，與本試驗(yàn)結(jié)果基本一致。睪丸發(fā)育后期，睪丸逐步進(jìn)入精子發(fā)生期，此階段，與器官生長相關(guān)基因的表達(dá)量會(huì)出現(xiàn)降低趨勢，與生精相關(guān)基因表達(dá)量呈上調(diào)趨勢［25］。這反向證明了山羊在6月齡左右MMP15基因的表達(dá)應(yīng)該呈現(xiàn)下降趨勢，而PICK1基因的表達(dá)應(yīng)該出現(xiàn)上調(diào)。在6月齡之后，山羊睪丸會(huì)逐漸進(jìn)入第二次快速發(fā)育期，精子細(xì)胞活動(dòng)增強(qiáng)，逐漸從生精小管上皮細(xì)胞向管腔移動(dòng)，而基質(zhì)金屬蛋白酶能促進(jìn)細(xì)胞遷移［26］，所以MMP15基因在山羊的睪丸兩次快速發(fā)育期時(shí)表達(dá)量應(yīng)呈現(xiàn)高水平。PICK1基因是參與調(diào)控精子頂體形成的重要基因，因此在睪丸生精機(jī)能活躍時(shí)應(yīng)呈現(xiàn)較高水平的表達(dá)，即在6月齡及6月齡后都維持高水平的表達(dá)。本試驗(yàn)結(jié)果與前人的研究結(jié)論相一致，提示MMP15、PICK1基因可能也是影響黔北麻羊睪丸發(fā)育及生精功能正常發(fā)揮的重要影響因子。

本次試驗(yàn)結(jié)果顯示，MMP15、PICK1基因在不同月齡黔北麻羊公羊睪丸組織中均有表達(dá)，MMP15在1～3月齡（睪丸發(fā)育期）及9～12月齡（精子發(fā)生期）表達(dá)相對(duì)較高，在性成熟初期表達(dá)量最低；PICK1在1月齡表達(dá)量最低，在3～6月齡表達(dá)量高，并在9～12月齡表達(dá)較高且趨于穩(wěn)定，故表明MMP15、PICK1基因可能對(duì)維持睪丸正常的生長發(fā)育及精子生成均有著重要作用，本次結(jié)果可為后續(xù)研究山羊的高繁殖性能提供基礎(chǔ)數(shù)據(jù)，但MMP15、PICK1基因影響黔北麻羊睪丸功能的具體機(jī)制還有待深入研究。

（責(zé)任編輯：胡吉鳳）

參考文獻(xiàn)：

[1]陳勇澤.貴州省畜禽品種志［M］.貴陽：貴州科技出版社，1993.

［2］曾瓊，史忠輝.貴州省黔北麻羊的形成及利用［J］.中國草食動(dòng)物，2011，31（4）：75-77.

［3］羅衛(wèi)星，史忠輝，劉貞德，等.黔北麻羊種質(zhì)特性研究初報(bào)［J］.山地農(nóng)業(yè)生物學(xué)報(bào)，2010，29（5）：466-470.

［4］QuickRE，DunlapJA，JessenJR.Expressionanalysisofzebrafishmembranetype-2matrixmetalloproteinasesduringembryonicdevelopment［J］.GeneExpressionPatterns，2012，12（7-8）：254-260.

［5］GregoliKD，JenkinsN，SalterR，etal.MicroRNA-24regulatesmacrophagebehaviorandretardsatherosclerosis［J］.ArteriosclerosisThrombosisandVascularBiology，2014，34（9）：1990-2000.

［6］PietrzakJ，DagmaraSK，WosiakA，etal.Changesintheexpressionofmembranetype-matrixmetalloproteinasesgenes（MMP14，MMP15，MMP16，MMP24）duringtreatmentandtheirpotentialimpactonthesurvivalofpatientswithnon-smallcelllungcancer（NSCLC）［J］.Biomedicineamp;Pharmacotherapy，2021，146：112559.

［7］TaoG，LevayAK，GridleyT，etal.Mmp15isadirecttargetofSnai1duringendothelialtomesenchymaltransformationandendocardialcushiondevelopment［J］.DevelopmentalBiology，2011，359（2）：209-221.

［8］FortunatoSJ，MenonR.Screeningofnovelmatrixmetalloproteinases（MMPs）inhumanfetalmembranes［J］.JournalofAssistedReproductionandGenetics，2002，19（10）：483-486.

［9］TakahashiT，HagiwaraA，OgiwaraK.Follicleruptureduringovulationwithanemphasisonrecentprogressinfishmodels［J］.Reproduction（Cambridge，England），2019，157（1）：R1-R13.

［10］XuJY，XiaJ.StructureandfunctionofPICK1［J］.Neuro-Signals，2007，15（4）：190-201.

［11］LiXM，MaoZ，WuM，etal.RescuinginfertilityofPick1knockoutmicebygeneratingtestis-specifictransgenicmiceviatesticularinfection［J］.ScientificReports，2013，3：2842.

［12］HeJ，XiaMY，TsangWH，etal.ICA1LformsBAR-domaincomplexeswithPICK1andiscrucialforacrosomeformationinspermiogenesis［J］.JournalofCellScience，2015，128（20）：3822-3836.

［13］王國賀.PICK1在睪丸組織中的表達(dá)及其與男性生育力關(guān)系的初步研究［D］.鄭州：鄭州大學(xué)，2011.

［14］金宇.Pick1參與調(diào)控芬太尼誘導(dǎo)的大鼠痛覺過敏機(jī)制的研究［D］.武漢：中南民族大學(xué)，2020.

［15］馮延瓊，石亞偉.以PDZ結(jié)構(gòu)域?yàn)榘袠?biāo)的中藥有機(jī)小分子配體篩選［C］.第三屆泛環(huán)渤海（七省二市）生物化學(xué)與分子生物學(xué)會(huì)，2012：78.

［16］段賢春，汪永忠，高家榮，等.PICK1蛋白生理功能及其作為藥物新靶點(diǎn)研究進(jìn)展［J］.國藥理學(xué)通報(bào)，2013，29（11）：1606-1610.

［17］蔣術(shù)一.Ⅳ型膠原蛋白NC1片段影響大鼠血睪屏障功能及精子發(fā)生過程的機(jī)制研究［D］.沈陽：中國醫(yī)科大學(xué)，2021.

［18］史秋雯.圓頭精子癥相關(guān)基因PICK1的初步功能研究［D］.長沙：中南大學(xué)，2008.

［19］XiaoN，KamC，ShenC，etal.PICK1deficiencycausesmaleinfertilityinmicebydisruptingacrosomeformation［J］.TheJournalofClinicalInvestigation，2009，119（4）：802-812.

［20］李蕊蕊.PICK1、ErbB2在精子中的表達(dá)及其與體外受精關(guān)系的初步研究［D］.鄭州：鄭州大學(xué)，2013.

［21］王琦，孟祥菲，馮永超，等.不同月齡山羊睪丸生精小管及固有層結(jié)構(gòu)分析［J］.畜牧與獸醫(yī)，2022，54（4）：53-60.

［22］韓聰.山羊生精細(xì)胞發(fā)育及睪丸組織lncRNA差異表達(dá)分析［D］.楊凌：西北農(nóng)林科技大學(xué)，2017.

［23］周銀濤，王鮮忠，周玉蘭，等.仔豬睪丸支持細(xì)胞的增殖與發(fā)育［J］.農(nóng)業(yè)生物技術(shù)學(xué)報(bào)，2011，19（1）：128-134.

［24］薄東東.山羊睪丸生長向精子發(fā)生階段過渡的分子遺傳機(jī)理［D］.武漢：華中農(nóng)業(yè)大學(xué)，2021.

［25］BoDD.Multipathwaysynergypromotestesticulartransitionfromgrowthtospermatogenesisinearly-pubertygoats［J］.BMCGenomics，2020，21（1）：372.

［26］肖文峰.DES通過MMP影響小鼠睪丸引帶細(xì)胞遷移［D］.汕頭：汕頭大學(xué)，2021.