羅 陽，田唯嘉，，何 芳，浣 成，劉伯承，張佰忠，宋 武，楊 青，易康樂

（1.湖南省畜牧獸醫(yī)研究所，湖南 長沙 410131；2.湖南農業(yè)大學 動物醫(yī)學院，湖南 長沙 410125）

肺炎克雷伯菌（Klebsiella pneumoniae）屬于條件性致病菌，在家畜、野生動物、水產動物以及人類的消化道、呼吸道等系統(tǒng)中均能生存，具有分布廣、發(fā)病率高、耐藥性強等特點[1-3]。病原菌控制一直是牛奶生產中的工作重點，而保持奶牛乳房健康是牛奶品質安全的關鍵。肺炎克雷伯菌作為常見的奶牛乳房炎致病性革蘭氏陰性菌之一[4]，在臨床上常被誤診為大腸桿菌，并采用抗生素進行治療，由于不同致病菌耐藥性有差異，近年來，肺炎克雷伯菌高毒力菌株以及多重抗藥現(xiàn)象不斷出現(xiàn)，對奶牛場造成巨大的經(jīng)濟損失[5-8]。因此，肺炎克雷伯菌導致的奶牛乳房炎及其防治受到越來越多畜牧工作者的關注。

核酸檢測相對傳統(tǒng)純培養(yǎng)法具有速度快、操作簡單、準確度高等特點，在病原菌臨床鑒定研究中有著廣泛的應用。不同種屬微生物有著固有看家基因和保守序列，經(jīng)常作為微生物鑒定的關鍵靶點。ITS（Internal transcribed spacer）序列是16S-23S rDNA 內部轉錄間隔層一段基因片段，具有較16S rDNA 和23S rDNA 更高的遺傳變異性和物種特異性。前人利用ITS 序列已經(jīng)成功設計了阪崎腸桿菌、沙門氏菌和單核李斯特菌等病原體鑒定的引物和探針，解決了食品安全中微生物鑒定的技術瓶頸[9-11]。UreD基因是肺炎克雷伯菌編碼脲酶的第一啟動子，對脲酶功能蛋白的表達和氮代謝過程發(fā)揮著至關重要的作用，而且同種克雷伯菌UreD基因具有高度保守性，與其他物種之間的差異性較大，可認定為肺炎克雷伯菌的特有基因[12-15]。目前，科研工作者針對人源或食品環(huán)境中的肺炎克雷伯菌開展了大量調查和深入研究[16-18]，但針對奶牛乳房炎來源的肺炎克雷伯菌的分析以及發(fā)病機制研究較少。因此，以ITS 序列和UreD基因作為靶基因來鑒定肺炎克雷伯菌引起的奶牛乳房炎，對病原菌快速鑒定體系的構建和乳房炎精準治療具有重要意義。

1 材料和方法

1.1 試驗材料

肺炎克雷伯菌、金黃色葡萄球菌、大腸桿菌、松鼠葡萄球菌分離自湖南省某規(guī)模化奶牛場乳房炎患病牛，并保存于-80 ℃冰箱。

2×FastTaq Premix 購自上海吐露港生物科技有限公司；基因擴增反應液（常溫擴增法）購自廣州雙螺旋基因技術有限公司；BHI 肉湯培養(yǎng)基購自杭州百思生物技術有限公司；核酸染料、DNA Marker 購自杭州博日科技有限公司；其余試劑均為分析純。

儀器設備：電子分析天平（AL204，梅特勒-托利多）；凝膠成像儀（ZF-288，上海嘉鵬）；LAMP動物疫病檢測儀（Dhelix-Q5，廣州雙螺旋）；PCR 儀（A200，杭州朗基）；核酸電泳儀（DYY-6D，北京六一）；超凈工作臺（SW-CJ-2FD，蘇州安泰）；高壓滅菌鍋（LDZF-50L-Ⅰ，上海博迅）。

1.2 基因組提取

采用三區(qū)劃線法將肺炎克雷伯菌接種于BHI肉湯固體培養(yǎng)基中，在恒溫培養(yǎng)箱中37 ℃過夜培養(yǎng)。挑取單菌落接種于5 mL BHI 肉湯液體培養(yǎng)基中，37 ℃、226 r/min 恒溫搖床培養(yǎng)12～16 h，將獲取的菌液12 000 r/min離心1 min，棄上清，用無菌水反復洗滌2 次，采用細菌DNA 提取試劑盒提取基因組，-20 ℃保存。

1.3 ITS序列PCR擴增與引物特異性檢測

利用肺炎克雷伯菌16S-23S rDNA ITS 序列，按照YIN 等[19]的方法合成特異性引物，ITS-F：5′-ATTTGAAGAGGTTGCAAACGAT-3′ ，ITS-R：5′-CCGAAGATGTTTCACTTCTGATT-3′，引物由杭州擎科生物科技有限公司合成。PCR 反應體系為25 μL：2×Mix 12.5 μL，上游和下游引物各1 μL，細菌DNA 模板2 μL，滅菌超純水8.5 μL；反應條件：95 ℃，預變性5 min；隨后擴增30 個循環(huán)（95 ℃，變性45 s；55 ℃，退火40 s；72 ℃，延伸45 s）；最后72 ℃，延伸10 min。反應結束后用1.5%瓊脂糖凝膠進行電泳檢測，PCR 產物送至杭州擎科生物科技有限公司進行測序，結果與GenBank 數(shù)據(jù)庫比對確認。將實驗室保存的乳房炎型金黃色葡萄球菌、大腸桿菌、松鼠葡萄球菌的基因組DNA，按照上述反應體系和方法進行引物特異性驗證。

1.4 ITS序列PCR敏感性檢測

將提取的肺炎克雷伯菌基因組DNA 進行質量濃度測定，按照10 倍梯度稀釋成500、50、5、5×10-1、5×10-2、5×10-3、5×10-4、5×10-5、5×10-6、5×10-7ng/μL，按照1.3中的方法和反應程序進行敏感性檢測。

1.5 UreD基因LAMP引物設計

參照COLLINS 等[15]的方法，在NCBI 上獲取肺炎克雷伯菌脲酶UreD基因序列（GenBank 登錄號：L07039.1），應用在線軟件Primer Explorer V5（http：//primerexplorer.jp/e/）進行LAMP 特異性引物設計，共3組，分別包含內引物（UreD-FIP：5′-TCATCACCGCCGACGATGCCGTTTTACCCGGAAGAAG-3′，UreDBIP：5′-TGACAATTAGCGCGCACCTTGCGGTAAAACTTGCTGG-3′）、環(huán)引物（UreD-LF：5′-GAAGCAGATAGAGGTGACAGG-3′，UreD-LB：5′-CTGCCATACGCTGATAACCA-3′）、外引物（UreD-F3：5′-GATCTCCGCTTTCAGCAG-3′，UreD-B3：5′-CAACTGCTGGCGAACTAG-3′），引物由杭州擎科生物科技有限公司合成。

1.6 UreD基因LAMP法的建立

將FIP/BIP 內引物、LF/LB 環(huán)引物、F3/B3外引物按照8∶4∶1 配制成工作液，構建25 μL 反應體系：12.5 μL 反應液、0.5 μL 熒光染料、1 μL Bst 聚合酶、2 μL 細 菌DNA 模 板、1 μL 引 物 工 作 液 和8 μL ddH2O，反應前加入20 μL 礦物油進行封閉。利用LAMP 儀以1 ℃為反應梯度，設定60～65 ℃6 個反應條件進行對比，確定最佳反應溫度，反應結束后查看擴增曲線，陽性為S形曲線，陰性則為直線。將實驗室保存的奶牛乳房炎源金黃色葡萄球菌、大腸桿菌、松鼠葡萄球菌的基因組DNA，在最佳反應溫度下進行引物特異性驗證。

1.7 LAMP法敏感性檢測

將1.4 中不同質量濃度的肺炎克雷伯菌基因組DNA，在最佳反應條件下進行敏感性檢測。

2 結果與分析

2.1 肺炎克雷伯菌ITS序列PCR擴增與引物特異性檢測

肺炎克雷伯菌基因組DNA 經(jīng)特異性引物PCR擴增后，獲得260 bp左右的基因片段（圖1），與肺炎克雷伯菌16S-23S rDNA ITS 序列相似性為100%。以金黃色葡萄球菌、大腸桿菌、松鼠葡萄球菌基因組DNA 為模板進行擴增，未能獲得目的基因片段（圖2），說明本研究所用的引物特異性較好，能準確鑒定肺炎克雷伯菌。

2.2 肺炎克雷伯菌ITS序列PCR敏感性檢測

當肺炎克雷伯菌DNA 質量濃度高于5×10-2ng/μL時，擴增出的條帶明亮清晰；當DNA質量濃度為5×10-3ng/μL 時，條帶開始模糊發(fā)暗，穩(wěn)定性不好；質量濃度低于5×10-4ng/μL 時，泳道中目的基因條帶難以區(qū)分（圖3）。說明利用PCR 技術檢測肺炎克雷伯菌ITS 基因所需的最低DNA 質量濃度為5×10-2ng/μL。

圖3 肺炎克雷伯菌ITS序列PCR敏感性檢測結果Fig.3 PCR sensitivity detection results of Klebsiella pneumoniae ITS sequences

2.3 肺炎克雷伯菌UreD基因LAMP引物特異性檢測

通過設定不同反應溫度對LAMP反應條件進行優(yōu)化，結果顯示（表1），60～65 ℃內均能擴增肺炎克雷伯菌UreD基因，但擴增時間和CT 值有所差異，反應溫度為62 ℃時，LAMP擴增所需時間最短（20 min），在63 ℃時，LAMP 反應獲得CT 值最高，按照達到CT值所需時間最短，確定最佳反應溫度。因此，確定LAMP法擴增UreD基因的最佳溫度為62 ℃。本試驗設計的LAMP引物在最適反應溫度下無法擴增出乳房炎來源的金黃色葡萄球菌、大腸桿菌和松鼠葡萄球菌，而肺炎克雷伯菌能穩(wěn)定擴增，呈現(xiàn)S 形曲線（圖4），說明LAMP 引物特異性良好，可用于后期試驗。

圖4 肺炎克雷伯菌UreD基因LAMP法擴增結果Fig4 Amplification results of Klebsiella pneumoniae UreD gene by LAMP

表1 肺炎克雷伯菌UreD基因不同反應溫度下LAMP擴增效率對比Tab.1 Comparison of LAMP amplification efficiency of Klebsiella pneumoniae UreD gene at different reaction temperatures

2.4 肺炎克雷伯菌UreD基因LAMP法敏感性檢測

在62 ℃反應條件下，對肺炎克雷伯菌500～5×10-7ng/μL 的DNA進行擴增（圖5）。結果顯示，利用LAMP 技術均能擴增肺炎克雷伯菌UreD基因，說明以UreD基因為靶基因，LAMP 擴增的靈敏度非常高。

圖5 肺炎克雷伯菌UreD基因LAMP敏感性檢測結果Fig.5 Sensitivity test results of Klebsiella pneumoniae UreD gene by LAMP

3 結論與討論

核酸檢測是當前疫情大流行的環(huán)境下重要防控手段之一，快速、準確檢測乳房炎病原菌對臨床診斷、治療以及預防交叉感染等環(huán)節(jié)具有重要意義。靶基因選擇是成功建立PCR 鑒定體系的關鍵因素，大量研究將耐藥基因作為肺炎克雷伯菌快速鑒定的靶點。張畢明等[20]利用耐藥基因KPC/CMY-2成功建立了肺炎克雷伯菌熒光定量PCR 檢測體系，并將時間控制在90 min 內。汪華學等[21]基于PCR技術建立了基質輔助激光解析/電離飛行時間質譜（MALDI-TOF MS）鑒定方法，對攜帶blaKPC-2基因型的肺炎克雷伯菌能實現(xiàn)快速鑒定，準確率高達92.90%。此外，還有針對高黏性表型（uge、ureA、allS、cf29a等）、莢膜血清型（K1、K2、K5、K20 等）肺炎克雷伯菌致病決定基因以及其他功能性蛋白質編碼基因（iucA、entB、fimH等）建立的PCR 鑒定體系[22-24]。本研究中，利用肺炎克雷伯菌16S-23S rDNA ITS序列，可在核酸質量濃度為5×10-2ng/μL的環(huán)境下實現(xiàn)穩(wěn)定擴增。YIN 等[19]利用ITS 序列也成功建立了嬰幼兒奶粉中肺炎克雷伯菌的快速鑒定方法，利用此方法從奶粉中檢測出肺炎克雷伯菌濃度可低至0.015 cfu/g，具備較高的特異性和靈敏度。

LAMP 技術是一種新型核酸快速擴增方法，由于等溫反應特性，在簡易環(huán)境下利用恒溫水浴鍋也能完成檢測，在采樣現(xiàn)場和移動性實驗室中被廣泛應用。LAMP 技術鑒定肺炎克雷伯菌同樣需要選擇合適的靶基因，纖維二糖PTS家族CelB基因[25]、碳青霉烯酶KPC 編碼基因[26]、莢膜多糖合成調控基因rcsA[27]、脲酶基因ureR_1[28]等相繼被選為肺炎克雷伯菌快速鑒定的靶基因。前人研究表明，LAMP 技術鑒定肺炎克雷伯菌的靈敏度普遍為PCR 技術的10～1 000倍[27，29-30]。在本研究中，以肺炎克雷伯菌脲酶UreD基因為靶點實現(xiàn)了LAMP 技術的穩(wěn)定擴增和快速鑒定，且在核酸質量濃度為5×10-7ng/μL 的條件下，依然能夠成功鑒定出肺炎克雷伯菌UreD基因，檢測靈敏度是普通PCR 方法的105倍，在奶牛乳房炎致病菌臨床鑒定上具有一定的應用前景。

綜上，本研究成功構建了PCR 和LAMP 技術快速鑒定奶牛乳房炎來源肺炎克雷伯菌的方法，2 種方法操作簡單、靈敏度高、特異性強，適合在實驗室和養(yǎng)殖現(xiàn)場推廣應用。