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        反相高效液相色譜法測(cè)定發(fā)酵乳中赤蘚紅含量

        2023-03-20 11:19:52段國(guó)霞劉麗君李翠枝呂志勇
        關(guān)鍵詞:赤蘚小柱無(wú)水乙醇

        陳 靜,段國(guó)霞,劉麗君,李翠枝*,呂志勇

        (內(nèi)蒙古伊利實(shí)業(yè)集團(tuán)股份有限公司,內(nèi)蒙古 呼和浩特 010110)

        赤蘚紅,又名櫻桃紅,是一種人工合成著色劑,由熒光素碘化而成,其性質(zhì)穩(wěn)定、色彩鮮艷、成本低廉。目前,赤蘚紅的應(yīng)用很廣泛[1-4],其作為常見(jiàn)的人工食品添加劑已成為人們?nèi)粘O钠返囊徊糠諿5],可單獨(dú)使用或與其他食用色素復(fù)配使用,經(jīng)常添加于食品、藥品、化妝品中,也可以作為反應(yīng)劑[6]等應(yīng)用于各類(lèi)研究中。GB 2760—2014《食品安全國(guó)家標(biāo)準(zhǔn) 食品添加劑使用標(biāo)準(zhǔn)》[7]對(duì)其使用量有嚴(yán)格規(guī)定,并建立了相應(yīng)的國(guó)標(biāo)方法[8]進(jìn)行檢測(cè),但對(duì)于赤蘚紅的檢測(cè)方法為液-液萃取法,操作方法復(fù)雜,且方法適用基質(zhì)有限。根據(jù)現(xiàn)有文獻(xiàn)報(bào)道,赤蘚紅應(yīng)用的基質(zhì)很廣,食品類(lèi)包括:蛋糕[9]、酒類(lèi)[10]、飲料[11-12]、冷凍飲品[13]、肉制品[14]、罐頭[15]、糯米類(lèi)[16-17]、蜜餞[18]、辣椒粉[19]等;藥品包括:中藥類(lèi)[20-21]、西藥類(lèi)[22]、藥品包裝[23-24]等;其他類(lèi)包括:煙草類(lèi)[25-27]等。其檢測(cè)方法也有很多,如高效液相色譜法[28]、超高效液相色譜法[29]、高效液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用法[30-31]、共振瑞利散射法等其他方法[32-33]。但對(duì)發(fā)酵乳中赤蘚紅的測(cè)定還少有報(bào)道。發(fā)酵乳中一般不添加赤蘚紅,對(duì)于含有果醬、果泥、果粒等的果品發(fā)酵乳會(huì)有一定的帶入風(fēng)險(xiǎn),對(duì)產(chǎn)品質(zhì)量控制和風(fēng)險(xiǎn)控制產(chǎn)生潛在風(fēng)險(xiǎn)。

        本研究擬建立發(fā)酵乳中赤蘚紅的反相高效液相色譜檢測(cè)方法。采用酶法水解蛋白,無(wú)水乙醇提取,堿性條件下固相萃取小柱凈化富集,經(jīng)反相C18柱分離,紫外可見(jiàn)檢測(cè)器檢測(cè),保留時(shí)間定性,外標(biāo)法定量。

        1 材料與方法

        1.1 材料與試劑

        發(fā)酵乳 市售。

        甲醇(色譜純)(諾爾施) 成都市科隆化學(xué)品有限公司;無(wú)水乙醇(色譜純) 福晨(天津)化學(xué)試劑有限公司;氨水(優(yōu)級(jí)純) 天津市富宇精細(xì)化工有限公司;乙酸銨(優(yōu)級(jí)純) 天津市光復(fù)精細(xì)化工研究所;氫氧化鈉(分析純) 天津市風(fēng)船化學(xué)試劑科技有限公司;實(shí)驗(yàn)用水為Milli-Q超純水;赤蘚紅標(biāo)準(zhǔn)品(純度85.7%) 德國(guó)Dr.Ehrensorfer公司;木瓜蛋白酶(酶活力2 000 U/mg) 上海泰坦科技股份有限公司;HLB固相萃取小柱(3 cc,60 mg) 美國(guó)Waters公司。

        1.2 儀器與設(shè)備

        1260高效液相色譜儀(配備紫外檢測(cè)器) 美國(guó)安捷倫公司;AL204分析天平、PE20K pH計(jì) 瑞士Mettler-Toledo公司;SHA-B水浴恒溫振蕩器 常州市凱航儀器有限公司;KQ-600DB數(shù)控超聲清洗器 昆山市超聲儀器有限公司;3K30高速離心機(jī) 德國(guó)Sigma公司;TurboVap LV氮?dú)鉂饪s裝置 美國(guó)Biotage公司;0.45 μm微孔過(guò)濾器 上海安譜實(shí)驗(yàn)科技股份有限公司。

        1.3 方法

        1.3.1 流動(dòng)相溶液配制

        乙酸銨溶液(20 mmol/L,pH 6.5):稱(chēng)取1.542 g乙酸銨于800 mL超純水中,用冰乙酸調(diào)節(jié)pH值至6.5,用超純水定容至1 000 mL。

        體積分?jǐn)?shù)5%氨化甲醇溶液:量取甲醇95 mL、氨水5 mL混勻。

        氫氧化鈉溶液(20 g/L):稱(chēng)取2 g氫氧化鈉,加水至100 mL,溶解混勻。

        1.3.2 標(biāo)準(zhǔn)溶液配制及標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制

        赤蘚紅標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液(1.00 mg/mL):準(zhǔn)確稱(chēng)取按其純度折算為100%質(zhì)量的赤蘚紅標(biāo)準(zhǔn)品0.100 g,置于100 mL容量瓶中,用水定容至刻度。

        赤蘚紅標(biāo)準(zhǔn)中間液(100 μg/mL):準(zhǔn)確移取赤蘚紅標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液1.0 mL于10 mL容量瓶中,用水定容至刻度。

        赤蘚紅標(biāo)準(zhǔn)工作液:上述混合中間液用水分別稀釋成質(zhì)量濃度為0.05、0.10、0.20、0.50、1.00、5.00、10.00、20.00 μg/mL的工作液?,F(xiàn)用現(xiàn)配。

        標(biāo)準(zhǔn)曲線制作:將混合標(biāo)準(zhǔn)工作液進(jìn)行色譜測(cè)定,記錄各組分的色譜峰面積,以質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo)(x),峰面積為縱坐標(biāo)(y),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。

        1.3.3 樣品處理

        準(zhǔn)確稱(chēng)取試樣1.0 g(精確至0.000 1 g)于10 mL容量瓶,加入0.04 U木瓜蛋白酶,加水至約3 mL,60 ℃水浴30 min[34]。酶解后的試樣自然冷卻至室溫,使用無(wú)水乙醇定容至10 mL,振蕩搖勻,超聲30 min,于4 ℃、8 000 r/min離心5 min。取上清液5 mL,使用20 g/L氫氧化鈉溶液調(diào)節(jié)pH 7.5~7.7。上述前處理溶液加入活化好的HLB小柱(分別使用5 mL甲醇、5 mL水活化),速率為1 滴/s,待液體全部留出,用水洗滌,然后用6 mL 5%氨化甲醇溶液洗脫,收集洗脫液,于氮吹濃縮儀上60 ℃吹干,加入1.0 mL水溶解,搖勻后上機(jī)。

        1.3.4 色譜條件

        色譜柱:月旭-AQ C18柱(250 mm×4.6 mm,5 μm);流動(dòng)相:20 mmol/L乙酸銨緩沖鹽(pH 6.5)-甲醇體系,梯度洗脫程序如表1所示;檢測(cè)器波長(zhǎng)520 nm;進(jìn)樣量30 μL;柱溫40 ℃;流速1 mL/min。

        表1 流動(dòng)相梯度洗脫程序Table 1 Mobile phase gradient elution procedure

        1.3.5 結(jié)果計(jì)算

        將試樣溶液進(jìn)行色譜測(cè)定,記錄各組分的色譜峰面積。按照下式計(jì)算樣品中赤蘚紅的含量。

        式中:X為樣品中赤蘚紅含量/(mg/kg);ρ為由標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算得出的試樣中赤蘚紅質(zhì)量濃度/(μg/mL);V為定容體積/mL;n為稀釋倍數(shù);m為樣品質(zhì)量/g。

        1.3.6 回收率和精密度測(cè)定

        回收率測(cè)定:在空白發(fā)酵乳中分別添加不同量的赤蘚紅,進(jìn)行加標(biāo)回收實(shí)驗(yàn),分別平行測(cè)定6 次,并計(jì)算相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(relative standard deviation,RSD)。

        精密度測(cè)定:對(duì)發(fā)酵乳加標(biāo)樣品分別進(jìn)行6 次重復(fù)測(cè)定,并計(jì)算RSD。

        1.4 數(shù)據(jù)處理

        使用Excel軟件進(jìn)行處理及分析。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 前處理方法優(yōu)化

        2.1.1 加酶量的選擇

        一般合成著色劑與蛋白質(zhì)的相互作用力通常被認(rèn)為是非共價(jià)鍵作用,包括氫鍵、范德華力、疏水及靜電作用等[35],使用木瓜蛋白酶對(duì)蛋白質(zhì)進(jìn)行酶解,生成小分子的肽[36-37],破壞了蛋白質(zhì)的結(jié)構(gòu),減少了非共價(jià)鍵作用,從而可以使合成著色劑更易使用無(wú)水乙醇提取。發(fā)酵乳的pH值一般為4.6~5.2,均為酸性,蛋白質(zhì)處于緊密結(jié)合的狀態(tài),使用單一有機(jī)溶劑不能完全提取發(fā)酵乳中的赤蘚紅,需要分解蛋白質(zhì)后再進(jìn)行提取。

        分解樣品中蛋白質(zhì)所需木瓜蛋白酶量與樣品蛋白質(zhì)含量相關(guān),即與樣品稱(chēng)樣量相關(guān)。確定樣品稱(chēng)樣量為1 g,使用赤蘚紅添加量為1.0 mg/kg的發(fā)酵乳試樣進(jìn)行不同加酶量實(shí)驗(yàn)。由圖1可知,當(dāng)樣品稱(chēng)樣量為1 g,加酶量大于0.03 U時(shí),赤蘚紅回收率均大于90%,而加酶量為0.04 U時(shí)回收率大于95%。使用Minitab軟件對(duì)赤蘚紅回收率結(jié)果進(jìn)行單因子方差分析,表明在95%置信度下,不同加酶量的回收率有顯著差異??悸实矫赋杀竞透呋厥章试瓌t等因素,確定加酶量為0.04 U作為后續(xù)實(shí)驗(yàn)最佳條件。

        圖1 不同加酶量與赤蘚紅回收率結(jié)果箱線圖(nn==33)Fig.1 Effect of papain dosage on the recovery of erythrosine (n = 3)

        2.1.2 提取溶劑的選擇

        一般合成著色劑的提取溶劑有氨水-無(wú)水乙醇體系等有機(jī)溶劑和水相溶劑。因氨水具有高揮發(fā)性和強(qiáng)刺激性,對(duì)人體有一定的危害。分別采用無(wú)水乙醇、甲醇、水作為提取溶劑,對(duì)赤蘚紅添加量為1.0 mg/kg的發(fā)酵乳試樣進(jìn)行實(shí)驗(yàn),平行測(cè)定3 次。由圖2可知,在95%置信度下,不同提取溶劑的回收率結(jié)果有顯著差異。使用水作為提取溶劑,因受發(fā)酵乳溶液pH值的影響,赤蘚紅與蛋白質(zhì)的結(jié)合比較緊密,其提取回收率較低;使用有機(jī)溶劑提取時(shí),同樣條件下無(wú)水乙醇的提取回收率比甲醇高。綜上所述,選擇無(wú)水乙醇作為提取溶劑。

        圖2 不同提取溶劑與赤蘚紅回收率結(jié)果箱線圖(nn==33)Fig.2 Effect of extraction solvents on the recovery of erythrosine (nn = 3)

        2.1.3 提取溶劑添加量的選擇

        提取溶劑的提取能力是影響回收率結(jié)果的關(guān)鍵,一般情況下,有機(jī)溶劑與水相的比例會(huì)影響目標(biāo)物的提取,即酶解水相與提取溶劑體積比會(huì)影響回收率。對(duì)赤蘚紅添加量為1.0 mg/kg的發(fā)酵乳試樣,采用酶解水相與無(wú)水乙醇體積比分別為2∶8、3∶7、4∶6、5∶5、6∶4進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。由圖3可知,在95%置信度下,不同體積比對(duì)回收率結(jié)果有顯著影響。體積比2∶8、3∶7、4∶6的回收率均在90%以上,符合GB/T 27404《實(shí)驗(yàn)室質(zhì)量控制規(guī)范 食品理化檢測(cè)》關(guān)于回收率的要求。實(shí)驗(yàn)使用體積比4∶6提取,樣液離心后,溶液仍不澄清,不利于過(guò)柱;體積比2∶8和3∶7條件下回收率較高,均大于95%。在95%置信度下,體積比2∶8和3∶7對(duì)回收率結(jié)果無(wú)顯著影響,但體積比2∶8條件下操作時(shí),2 mL的水不易完全溶解樣品,尤其是黏稠的發(fā)酵乳樣品,影響樣品酶解及測(cè)定值的準(zhǔn)確性,故確定酶解水相與無(wú)水乙醇體積比3∶7作為提取溶劑的最佳比例。

        圖3 不同酶解水相與無(wú)水乙醇體積比與赤蘚紅回收率結(jié)果箱線圖(nn==33)Fig.3 Effect of volume ratio between enzymatic hydrolysate and anhydrous ethanol on the recovery of erythrosine (nn = 3)

        2.1.4 超聲時(shí)間的選擇

        分別使用超聲時(shí)間10、20、30、40 min進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。由圖4可知,在95%置信度下,不同的超聲時(shí)間對(duì)回收率結(jié)果有影響。超聲時(shí)間10、20、30、40 min條件下的回收率均在90%以上,符合GB/T 27404關(guān)于回收率的要求。而超聲時(shí)間30、40 min的回收率均大于95%,考慮到高回收率和時(shí)間節(jié)約原則,選擇超聲時(shí)間為30 min。

        圖4 不同超聲時(shí)間與赤蘚紅回收率結(jié)果箱線圖(nn==33)Fig.4 Effect of ultrasonic time on the recovery of erythrosine (nn = 3)

        2.2 過(guò)柱條件的選擇

        目前文獻(xiàn)方法中使用的固相萃取小柱有聚酰胺小柱、HLB小柱等。聚酰胺小柱的一般上柱方式是酸性上柱、淋洗,堿性洗脫,赤蘚紅色素耐酸堿性較差,故本研究選擇HLB固相萃取小柱進(jìn)行凈化富集,并對(duì)樣液過(guò)柱pH值進(jìn)行研究。分別調(diào)節(jié)樣液pH值為4.6、5.0、6.5、7.0、7.5、8.0、8.5進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。由圖5可知,pH值7.5時(shí)的回收率大于90%,且回收率穩(wěn)定,在95%置信度下,不同的過(guò)柱pH值對(duì)回收率結(jié)果有顯著影響。需要進(jìn)一步選擇pH值范圍,細(xì)化pH值為7.4、7.5、7.6、7.7、7.8,由圖6可知,pH值7.4~7.7時(shí)的回收率均大于90%且穩(wěn)定,符合GB/T 27404關(guān)于回收率的要求,在95%置信度下,不同的過(guò)柱pH值對(duì)回收率有顯著影響,pH值為7.4和7.8時(shí)的回收率均小于95%,pH值為7.5、7.6、7.7時(shí)回收率均大于95%。由圖7可知,進(jìn)一步分析發(fā)現(xiàn),pH值為7.5~7.7條件下,在95%置信度下,不同的過(guò)柱pH值對(duì)回收率無(wú)顯著影響??紤]高回收率原則,選擇過(guò)柱pH值為7.5~7.7。

        圖5 不同上柱pH值(4.6、5.0、6.5、7.0、7.5、8.0、8.5)與赤蘚紅回收率結(jié)果箱線圖(nn==33)Fig.5 Effect of sample pH (4.6, 5.0, 6.5, 7.0, 7.5, 8.0, and 8.5) on the recovery of erythrosine (nn = 3)

        圖6 不同上柱pH值(7.4、7.5、7.6、7.7、7.8)與赤蘚紅回收率結(jié)果箱線圖(nn==33)Fig.6 Effect of sample pH (7.4, 7.5, 7.6, 7.7 and 7.8) on the recovery of erythrosine (nn = 3)

        圖7 不同上柱pH值(7.5、7.6、7.7)與赤蘚紅回收率結(jié)果箱線圖(nn==33)Fig.7 Effect of sample pH (7.5, 7.6 and 7.7) on the recovery of erythrosine (nn = 3)

        2.3 方法學(xué)考察

        2.3.1 線性方程與相關(guān)系數(shù)

        將不同質(zhì)量濃度的赤蘚紅系列標(biāo)準(zhǔn)工作液在不同時(shí)間、上述洗脫條件下經(jīng)高效液相色譜儀測(cè)定,并計(jì)算線性回歸方程。由表2可知,配制3 d的標(biāo)準(zhǔn)工作液得到的標(biāo)準(zhǔn)工作曲線的相關(guān)系數(shù)均大于0.999,表明目標(biāo)物的線性關(guān)系良好。

        表2 赤蘚紅的線性回歸方程及相關(guān)系數(shù)Table 2 Linear regression equations and correlation coefficients for erythrosine standard solution stored for different time periods

        2.3.2 定量限與檢出限

        對(duì)赤蘚紅添加量為2 mg/kg的發(fā)酵乳試樣進(jìn)行測(cè)定,由圖8可知,色譜圖雜質(zhì)峰干擾小,分離度為2.56,符合《中國(guó)藥典》中關(guān)于分離度≥1.5的要求。

        圖8 發(fā)酵乳加標(biāo)樣品反相高效液相色譜圖Fig.8 Reversed-phase high performance liquid chromatogram of spiked fermented milk

        由表3可知,按照信噪比(RS/N)均滿(mǎn)足≥3的要求,赤蘚紅的檢出限為0.1 mg/kg,按照RS/N均滿(mǎn)足≥10的要求,赤蘚紅的定量限為0.2 mg/kg。

        表3 赤蘚紅的檢出限與定量限Table 3 LODs and LOQs of erythrosine

        2.3.3 方法的回收率與精密度

        測(cè)定發(fā)酵乳中添加定量限、2 倍定量限和10 倍定量限3 個(gè)不同添加量赤蘚紅的加標(biāo)回收率。由表4可知,赤蘚紅的加標(biāo)回收率為93.1%~105.6%,RSD為1.87%~2.21%,說(shuō)明該方法測(cè)定發(fā)酵乳中赤蘚紅具有很好的準(zhǔn)確度和精密度。

        表4 赤蘚紅的加標(biāo)回收率及精密度測(cè)定結(jié)果(nn==66)Table 4 Recoveries and precision (RSD) of erythrosine in spiked fermented milk (nn = 6)

        2.4 實(shí)際樣品測(cè)定

        根據(jù)本研究方法對(duì)市售7 款含果品發(fā)酵乳進(jìn)行測(cè)定,由表5可知,目前市售添加果泥、果粒等原料的發(fā)酵乳未檢出赤蘚紅。

        表5 樣品中赤蘚紅測(cè)定結(jié)果Table 5 Results of erythrosine detection in real samples

        3 結(jié) 論

        采用反相高效液相色譜法對(duì)發(fā)酵乳中赤蘚紅的含量進(jìn)行測(cè)定時(shí),樣品采用酶法水解蛋白、無(wú)水乙醇提取,堿性過(guò)柱凈化,采用C18色譜柱分離,應(yīng)用甲醇-乙酸銨緩沖溶液作為流動(dòng)相進(jìn)行梯度洗脫。結(jié)果表明,本方法準(zhǔn)確度滿(mǎn)足定量要求,方法精密度良好,回收率高,操作簡(jiǎn)便,適用于發(fā)酵乳中赤蘚紅含量的測(cè)定,可為發(fā)酵乳中赤蘚紅的檢測(cè)及風(fēng)險(xiǎn)監(jiān)控提供技術(shù)支持。

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