王立芹 陳紅營 隋 英 賈榮軍 沈 亮 (德州市人民醫(yī)院兒科,德州 253000)
小兒哮喘是臨床常見的一種疾病類型,由支氣管上皮細胞損傷與功能障礙導致,在外界刺激性物質(zhì)作用下支氣管上皮細胞結(jié)構(gòu)及功能被破壞而產(chǎn)生炎癥因子,炎癥因子大量釋放與細胞凋亡數(shù)量增加是引起哮喘患兒支氣管上皮細胞損傷的重要原因,目前人支氣管上皮細胞損傷的分子機制尚未完全闡明[1-2]。研究表明長鏈非編碼RNA(long noncoding RNA,lncRNA)在重癥哮喘患者中表達異常,并可能參與哮喘的形成機制,還可調(diào)節(jié)支氣管上皮細胞凋亡、炎癥等生物學過程[3-4]。lncRNA OIP5-AS1在屋塵螨誘導的人支氣管上皮細胞中表達升高, 并可通過miR-143-3p/HMGB1 軸促進屋塵螨誘導 的人支氣管上皮細胞炎癥反應[5]。本研究通過生物信息學預測發(fā)現(xiàn)OIP5-AS1 與miR-7-5p 存在結(jié)合位點。本研究采用脂多糖(lipopolysaccharide,LPS)誘導人支氣管上皮細胞建立細胞損傷模型,探討OIP5-AS1/miR-7-5p 分子軸在人支氣管上皮細胞損傷發(fā)生過程中的作用機制。
1.1 材料 人支氣管上皮細胞16HBE 購自武漢普諾賽生命科技有限公司;LPS 購自美國Sigma 公司;凋亡試劑購自江蘇凱基生物技術(shù)股份有限公司; Lipofectamine2000 購自美國Invitrogen 公司;si-NC、si-OIP5-AS1、miR-NC、miR-7-5p mimics、anti-miRNC、anti-miR-7-5p 購自廣州銳博生物科技有限公司;Trizol 試劑購自北京全式金生物;反轉(zhuǎn)錄與熒光定量檢測試劑購自北京天根;IL-6、IL-8 檢測試劑盒購自美國R&D;MTT 試劑購自上海信帆生物;一抗購自美國Santa Cruz;二抗購自美國Abcam。
1.2 方法
1.2.1 實驗分組 16HBE 細胞接種于含100 ng/ml LPS 的培養(yǎng)液內(nèi)培養(yǎng)24 h,設為LPS 組[6]。同時將正常培養(yǎng)的16HBE 細胞設為Con 組。分別將si-NC、 si-OIP5-AS1、miR-NC、miR-7-5p mimics、si-OIP5-AS1與anti-miR-NC、si-OIP5-AS1 與anti-miR-7-5p 轉(zhuǎn)染至16HBE 細胞后加入含100 ng/ml LPS 的培養(yǎng)液內(nèi)培養(yǎng)24 h,分別設為LPS+si-NC組、LPS+si-OIP5-AS1組、LPS+miR-NC 組、LPS+miR-7-5p 組、LPS+si-OIP5-AS1+anti-miR-NC組、LPS+si-OIP5-AS1+anti-miR-7-5p組。
1.2.2 qRT-PCR 檢測細胞中OIP5-AS1、miR-7-5p表達水平 采用Trizol 法提取各組16HBE 細胞總RNA 后檢測其濃度,按照反轉(zhuǎn)錄試劑盒說明書將RNA 逆轉(zhuǎn)錄合成cDNA,根據(jù)熒光定量PCR 試劑盒說明書檢測OIP5-AS1、miR-7-5p相對表達量。
1.2.3 ELISA 法檢測IL-6、IL-8 水平 收集各組細胞培養(yǎng)上清液,采用ELISA 試劑盒檢測IL-6、IL-8 的表達水平,嚴格按照試劑盒說明書操作。
1.2.4 MTT 檢測細胞增殖 收集各組16HBE 細胞接種于96 孔板(100 μl/孔),每孔加入20 μl MTT 溶液,繼續(xù)培養(yǎng)4 h 后棄上清,每孔加入150 μl DMSO,室溫避光振蕩孵育5 min后檢測OD值。
1.2.5 流式細胞術(shù)檢測細胞凋亡率 收集各組16HBE 細胞加入預冷PBS 洗滌后棄上清,向細胞沉淀中加入500 μl 結(jié)合緩沖液,按照凋亡試劑盒說明書檢測細胞凋亡率。
1.2.6 雙熒光素酶報告基因檢測OIP5-AS1與miR-7-5p 的靶向關系 構(gòu)建含結(jié)合位點的野生型載體WT-OIP5-AS1 與含突變位點的突變型載體MUTOIP5-AS1,miR-NC、miR-7-5p mimics 分 別 與WTOIP5-AS1、MUT-OIP5-AS1 共轉(zhuǎn)染至16HBE 細胞后繼續(xù)培養(yǎng)48 h,收集細胞,檢測熒光素酶活性。
1.2.7 Western blot 檢測Bcl-2、Bax 蛋白表達 提取各組16HBE 細胞總蛋白,SDS-PAGE 分離蛋白,轉(zhuǎn)膜后室溫封閉2 h,加入一抗稀釋液(1∶1 000) 4 ℃ 孵育過夜,加入二抗稀釋液(1∶2 000)室溫孵育1 h,應用Image J軟件分析各條帶灰度值。
1.3 統(tǒng)計學處理 應用SPSS21.0統(tǒng)計學軟件分析數(shù)據(jù),計量資料以±s表示且均符合正態(tài)分布,兩組間比較采用獨立樣本t檢驗,多組間比較采用單因素方差分析,以P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
2.1 LPS 誘導的人支氣管上皮細胞中OIP5-AS1 與miR-7-5p 表達量 與Con 組相比,LPS 組OIP5-AS1表達水平升高(P<0.05),miR-7-5p 表達水平降低 (P<0.05,表1)。
表1 LPS 誘導 的16HBE 細胞中OIP5-AS1 與miR-7-5p 的表達(±s,n=9)Tab.1 Expressions of OIP5-AS1 and miR-7-5p in 16HBE cells induced by LPS (±s,n=9)
表1 LPS 誘導 的16HBE 細胞中OIP5-AS1 與miR-7-5p 的表達(±s,n=9)Tab.1 Expressions of OIP5-AS1 and miR-7-5p in 16HBE cells induced by LPS (±s,n=9)
Note:Compared with Con group, 1)P<0.05.
2.2 干擾OIP5-AS1 對LPS 誘導的人支氣管上皮細胞炎癥損傷的影響 與Con 組相比,LPS 組IL-6、 IL-8水平升高(P<0.05);與LPS+si-NC組相比,LPS+si-OIP5-AS1組IL-6、IL-8水平降低(P<0.05,表2)。
表2 干擾OIP5-AS1對LPS誘導的16HBE細胞炎癥損傷的影響(±s,n=9,pg/ml)Tab.2 Effect of OIP5-AS1 interference on LPS-induced inflammatory injury of 16HBE cells(±s,n=9, pg/ml)
表2 干擾OIP5-AS1對LPS誘導的16HBE細胞炎癥損傷的影響(±s,n=9,pg/ml)Tab.2 Effect of OIP5-AS1 interference on LPS-induced inflammatory injury of 16HBE cells(±s,n=9, pg/ml)
Note:Compared with Con group, 1)P<0.05; compared with LPS+si-NC group, 2)P<0.05.
2.3 干擾OIP5-AS1 對LPS 誘導的人支氣管上皮細胞增殖及凋亡的影響 與Con 組相比,LPS 組細胞活力降低,凋亡率升高,Bax 蛋白水平升高,Bcl-2 蛋白水平降低(P均<0.05);與LPS+si-NC 組相比,LPS+si-OIP5-AS1組細胞活力升高,凋亡率降低,Bax蛋白水平降低,Bcl-2 蛋白水平升高(P均<0.05, 圖1、表3)。
表3 干擾OIP5-AS1對LPS誘導的16HBE細胞增殖及凋亡的影響(±s,n=9)Tab.3 Effect of OIP5-AS1 interference on proliferation and apoptosis of 16HBE cells induced by LPS (±s,n=9)
表3 干擾OIP5-AS1對LPS誘導的16HBE細胞增殖及凋亡的影響(±s,n=9)Tab.3 Effect of OIP5-AS1 interference on proliferation and apoptosis of 16HBE cells induced by LPS (±s,n=9)
Note:Compared with Con group, 1)P<0.05; compared with LPS+si-NC group, 2)P<0.05.
圖1 干擾OIP5-AS1對LPS誘導的16HBE細胞凋亡的影響Fig.1 Effect of interference with OIP5-AS1 on 16HBE cell apoptosis induced by LPS
2.4 OIP5-AS1 靶向調(diào)控miR-7-5p starBase 預測結(jié)果顯示OIP5-AS1與miR-7-5p存在結(jié)合位點(圖2)。miR-7-5p 過表達可明顯降低野生型載體WT-OIP5-AS1 的熒光素酶活性(P<0.05),而對突變型載體MUT-OIP5-AS1 的熒光素酶活性無明顯影響(表4)。與si-NC 組相比,si-OIP5-AS1 組miR-7-5p 表達水平升高(P<0.05,表5)。
表4 雙熒光素酶報告基因?qū)嶒灒ā纒,n=9)Tab.4 Double luciferase reporter gene experiment (±s, n=9)
表4 雙熒光素酶報告基因?qū)嶒灒ā纒,n=9)Tab.4 Double luciferase reporter gene experiment (±s, n=9)
Note:Compared with miR-NC group, 1)P<0.05.
表5 OIP5-AS1靶向調(diào)控miR-7-5p表達(±s,n=9)Tab.5 OIP5-AS1 could target and regulate expression of miR-7-5p (±s,n=9)
表5 OIP5-AS1靶向調(diào)控miR-7-5p表達(±s,n=9)Tab.5 OIP5-AS1 could target and regulate expression of miR-7-5p (±s,n=9)
Note:Compared with si-NC group, 1)P<0.05.
圖2 OIP5-AS1序列中含有與miR-7-5p互補的核苷酸序列Fig.2 Sequence of OIP5-AS1 contains a nucleotide sequence complementary to miR-7-5p
2.5 miR-7-5p 過表達對LPS 誘導的人支氣管上皮細胞炎癥、增殖及凋亡的影響 與LPS+miR-NC 組相比,LPS+miR-7-5p 組IL-6、IL-8 水平降低,細胞活力升高,凋亡率降低,Bax 蛋白水平降低,Bcl-2 蛋白水平升高(P均<0.05),見圖3、表6。
表6 miR-7-5p過表達對LPS誘導的16HBE細胞炎癥、增殖及凋亡的影響(±s,n=9)Tab.6 Effects of miR-7-5p overexpression on LPS-induced inflammation, proliferation and apoptosis of 16HBE cells (±s,n=9)
表6 miR-7-5p過表達對LPS誘導的16HBE細胞炎癥、增殖及凋亡的影響(±s,n=9)Tab.6 Effects of miR-7-5p overexpression on LPS-induced inflammation, proliferation and apoptosis of 16HBE cells (±s,n=9)
Note:Compared with LPS+miR-NC group, 1)P<0.05.
圖3 miR-7-5p 過表達對LPS 誘導的16HBE 細胞凋亡的 影響Fig.3 Effect of miR-7-5p overexpression on LPS-induced apoptosis of 16HBE cells
2.6 抑制miR-7-5p 表達可逆轉(zhuǎn)干擾OIP5-AS1 對LPS 誘導的人支氣管上皮細胞炎癥、增殖及凋亡的影響 與LPS+si-OIP5-AS1+anti-miR-NC 組相比,LPS+si-OIP5-AS1+anti-miR-7-5p 組IL-6、IL-8 水平升高,細胞活力降低,凋亡率升高,Bax 蛋白水平升高,Bcl-2蛋白水平降低(P均<0.05),見圖4、表7。
圖4 抑制miR-7-5p 表達可逆轉(zhuǎn)干擾OIP5-AS1 對LPS 誘導的16HBE細胞凋亡的影響Fig.4 Inhibition of miR-7-5p expression could reverse effect of interfering with OIP5-AS1 on LPS-induced apoptosis of 16HBE cells
表7 抑制miR-7-5p表達可逆轉(zhuǎn)干擾OIP5-AS1對LPS誘導的16HBE細胞炎癥、增殖及凋亡的影響(±s,n=9)Tab.7 Inhibition of miR-7-5p expression could reverse effect of interfering with OIP5-AS1 on LPS-induced inflammation, proliferation and apoptosis of 16HBE cells (±s,n=9)
表7 抑制miR-7-5p表達可逆轉(zhuǎn)干擾OIP5-AS1對LPS誘導的16HBE細胞炎癥、增殖及凋亡的影響(±s,n=9)Tab.7 Inhibition of miR-7-5p expression could reverse effect of interfering with OIP5-AS1 on LPS-induced inflammation, proliferation and apoptosis of 16HBE cells (±s,n=9)
Note:Compared with LPS+si-OIP5-AS1+anti-miR-NC group,1)P<0.05.
lncRNA 在支氣管上皮細胞損傷中表達異常并可發(fā)揮調(diào)控作用[6-8]。已有多篇文獻報道OIP5-AS1在ox-LDL 誘導的內(nèi)皮細胞損傷中發(fā)揮重要作用[9-11]。但OIP5-AS1 在LPS 誘導的支氣管上皮細胞損傷中的表達尚未可知。本研究結(jié)果顯示,LPS 誘導的16HBE 細胞中OIP5-AS1 表達水平升高。本研究發(fā)現(xiàn)LPS 誘導的16HBE 細胞中IL-6、IL-8 水平升高,與既往研究結(jié)果相似,提示支氣管上皮細胞損傷模型成功建立[12]。此外,干擾OIP5-AS1表達可明顯降低IL-6、IL-8 水平,提示干擾OIP5-AS1 表達可抑制LPS誘導的支氣管上皮細胞炎癥反應。本研究結(jié)果顯示,LPS誘導的16HBE細胞活力降低,凋亡率升高,而干擾OIP5-AS1 表達可明顯增強LPS 誘導的16HBE 細胞活力,降低凋亡率,Bax 蛋白水平降低,Bcl-2 蛋白水平升高,提示干擾OIP5-AS1 表達可促進LPS誘導的16HBE細胞增殖而抑制細胞凋亡。
本研究證實OIP5-AS1 可靶向結(jié)合miR-7-5p,并負向調(diào)控miR-7-5p 活性。此外,研究發(fā)現(xiàn)LPS 誘導的16HBE 細胞中miR-7-5p 表達水平降低,干擾OIP5-AS1 表達可明顯提高miR-7-5p 的表達水平。lncRNA ANRIL 通過靶向miR-7-5p/SIRT1 軸而減輕缺氧誘導的心肌細胞損傷[13]。本研究結(jié)果顯示,miR-7-5p 過表達可明顯降低IL-6、IL-8 水平,細胞活力升高,凋亡率降低。同時本研究采用抑制miR-7-5p表達與干擾OIP5-AS1 表達聯(lián)合處理LPS 誘導的16HBE 細胞,結(jié)果顯示IL-6、IL-8 水平升高,細胞活力降低,凋亡率升高,提示抑制miR-7-5p 表達可逆轉(zhuǎn)干擾OIP5-AS1 對LPS 誘導的人支氣管上皮細胞炎癥、增殖及凋亡的作用。
綜上所述,支氣管上皮細胞損傷模型中OIP5-AS1表達水平升高,而miR-7-5p表達水平降低,干擾OIP5-AS1 表達可通過上調(diào)miR-7-5p 表達抑制LPS誘導的支氣管上皮細胞炎癥反應、凋亡及促進細胞增殖,從而減輕細胞損傷,OIP5-AS1 可能通過靶向調(diào)控miR-7-5p 參與哮喘等呼吸道疾病的發(fā)生及發(fā)展過程,但其具體作用機制尚需進一步探究。