劉 瑾,張朝正,趙 華
(天津科技大學(xué) 生物工程學(xué)院 工業(yè)發(fā)酵微生物教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室 天津市工業(yè)微生物重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,天津 300457)
鐮刀菌屬(Fusarium),世界十大植物病原真菌之一[2],其中,尖孢鐮刀菌(Fusarium oxysporum)是引起150多種植物枯萎病和根腐病的一種土傳性病害病原菌,屬于半知菌類(lèi)鐮刀菌屬真菌[1]?;诩怄哏牭毒鷮?duì)作物有嚴(yán)重的破壞性,防控尖孢鐮刀菌,對(duì)植物枯萎病和根腐病的防治具有非常重要的意義[3]。微生物菌劑以安全綠色、抗病抗逆、改善土壤微生態(tài)、提高品質(zhì)和產(chǎn)量的優(yōu)勢(shì)成為主要的防治手段[4-7]。目前,應(yīng)用于生物防治的菌株主要為生防真菌、生防細(xì)菌、生防放線菌三大類(lèi),例如假單胞菌屬(Pseudomonas)、芽孢桿菌屬(Bacillus)、淡紫擬青霉屬(Paecilomyceslilacinus(Thom.)Samson)、叢枝根菌(Arbuscular mycorrhiza)、木霉屬(Trichodermaspp.)等。
貝萊斯芽孢桿菌(Bacillus velezensis)是由GARCIA R等新命名的一種生防菌[8-9],其產(chǎn)生的次級(jí)代謝產(chǎn)物可以促進(jìn)植物生長(zhǎng),抑制病原菌,在飼料、醫(yī)藥、食品、植物保護(hù)、污水處理和生物防控等領(lǐng)域被廣泛研究和應(yīng)用[10-13]。作為生物防治菌株,貝萊斯芽孢桿菌分泌的某些膠原蛋白類(lèi)物質(zhì)與生物膜形成有密切關(guān)系,使菌株的拮抗效果更好,植物根際定殖是生防菌株能力的體現(xiàn)[14-17]。目前,已有關(guān)于芽孢桿菌發(fā)酵條件優(yōu)化的研究報(bào)道,但不同菌株最佳發(fā)酵條件存在較大差異。黎燕珊等[18]優(yōu)化貝萊斯芽孢桿菌(Bacillus velezensis)HC-8的發(fā)酵培養(yǎng)基及發(fā)酵條件,提高了該菌株的發(fā)酵產(chǎn)量,增強(qiáng)對(duì)尖孢鐮刀菌、煙草疫霉和輪狀鐮刀菌的拮抗效果。楊可等[19]利用響應(yīng)面法優(yōu)化貝萊斯芽孢桿菌TSC001的發(fā)酵培養(yǎng)基及發(fā)酵條件,提高了發(fā)酵液的抑菌活性,增強(qiáng)了對(duì)黃瓜灰霉病的拮抗效果。貝萊斯芽孢桿菌的發(fā)酵液中除了含有少量的發(fā)酵代謝物質(zhì)外,還含有大量培養(yǎng)雜質(zhì),其抑菌活性受到培養(yǎng)基中化合物的種類(lèi)、比例及發(fā)酵培養(yǎng)條件參數(shù)的影響。因此,對(duì)貝萊斯芽孢桿菌的發(fā)酵培養(yǎng)基以及發(fā)酵條件的優(yōu)化決定抑菌活性物質(zhì)含量的多少,可為其鑒定活性物質(zhì)及分離提純提供研究基礎(chǔ)。
本研究以對(duì)尖孢鐮刀菌具有拮抗作用的貝萊斯芽孢桿菌P9為研究對(duì)象,以其發(fā)酵液的抑菌效果為考察指標(biāo),采用單因素試驗(yàn)及響應(yīng)面法對(duì)其培養(yǎng)基配方和發(fā)酵條件進(jìn)行優(yōu)化,以期為尖孢鐮刀菌的綠色防控提供理論依據(jù),為微生物農(nóng)藥的開(kāi)發(fā)提供微生物資源。
1.1.1 菌株
尖孢鐮刀菌(Fusarium oxysporum):天津科技大學(xué)菌種保藏中心;貝萊斯芽孢桿菌(Bacillus velezensis)P9:由本實(shí)驗(yàn)室提供。
1.1.2 試劑
酵母浸粉、牛肉膏、胰蛋白胨、蛋白胨、氯化鈉、葡萄糖、磷酸氫二鉀、磷酸二氫鉀、硫酸鎂、氯化錳、氯化鈣、氯化鈣、可溶性淀粉、果糖、蔗糖、麥芽糖、大豆蛋白胨、瓊脂粉、硫酸銨、硫酸銅、硫酸鋅:青島高科技工業(yè)園海博生物技術(shù)有限公司。試驗(yàn)所用試劑均為國(guó)產(chǎn)分析純或生化試劑。
1.1.3 培養(yǎng)基
LB液體培養(yǎng)基:酵母浸粉5.0 g/L、蛋白胨10.0 g/L、氯化鈉10.0 g/L,pH7.0。LB固體培養(yǎng)基:在LB液體培養(yǎng)基中添加瓊脂20.0 g/L,121 ℃滅菌20 min。
基礎(chǔ)發(fā)酵培養(yǎng)基:葡萄糖5.0 g/L、酵母浸粉5.0 g/L、K2HPO41.4 g/L、KH2PO40.6 g/L、MgSO4·7H2O 0.5 g/L、FeCl20.5 g/L,pH 7.0,115 ℃滅菌30 min。
馬鈴薯葡萄糖瓊脂(potato dextrose agar,PDA)培養(yǎng)基:青島海博生物技術(shù)有限公司。
H1815高速離心機(jī):湘儀離心儀器有限公司;HPX-9162MBE電熱恒溫恒濕培養(yǎng)箱:上海博訊實(shí)業(yè)有限公司醫(yī)療設(shè)備廠;SY.45-NJB牛津杯(6 mm×8 mm×10 mm):北京先驅(qū)威鋒技術(shù)開(kāi)發(fā)公司;ME204電子天平:瑞士METTLER TOLEDO公司;DELTA320 pH計(jì):多利斯科學(xué)儀器(北京)有限公司;HNY-200B控溫?fù)u床:上海智能分析儀器制造有限公司;YS-40A干熱滅菌箱:天津天宇機(jī)電有限公司。
1.3.1 貝萊斯芽孢桿菌P9生長(zhǎng)曲線的測(cè)定
取保藏的貝萊斯芽孢桿菌P9于LB液體培養(yǎng)基中,30 ℃、160 r/min條件下培養(yǎng)36 h得到種子液。將貝萊斯芽孢桿菌P9種子液以3%的接種量接種于LB液體培養(yǎng)基,在30 ℃,160 r/min條件下培養(yǎng)36 h,每隔3 h取樣,測(cè)定其OD600nm值,繪制貝萊斯芽孢桿菌P9的生長(zhǎng)曲線。
1.3.2 貝萊斯芽孢桿菌P9抑菌發(fā)酵液及無(wú)菌濾液的制備
將貝萊斯芽孢桿菌P9種子液以3%的接種量接種于LB液體培養(yǎng)基,在30 ℃,160 r/min條件下培養(yǎng)72 h后,5 000 r/min離心10 min去除菌體,取上清液過(guò)一次性使用無(wú)菌濾膜0.22 μm,得無(wú)菌發(fā)酵濾液。
1.3.3 貝萊斯芽孢桿菌P9抑菌活性的測(cè)定
采用牛津杯法測(cè)定貝萊斯芽孢桿菌P9發(fā)酵液的抑菌活性,在PDA平板活化培養(yǎng)尖孢鐮刀菌,30 ℃條件下培養(yǎng)5 d,使其鋪滿(mǎn)平板,然后將滅菌牛津杯均勻擺放于平板上,吸取200 μL貝萊斯芽孢桿菌P9無(wú)菌發(fā)酵濾液加入到牛津杯內(nèi),30 ℃條件下培養(yǎng)72 h,通過(guò)十字交叉法[20]測(cè)量抑菌圈直徑。
1.3.4 發(fā)酵培養(yǎng)基優(yōu)化單因素試驗(yàn)
固定發(fā)酵條件為種子液接種量3%(V/V),30 ℃、160 r/min培養(yǎng)72 h。在基礎(chǔ)發(fā)酵培養(yǎng)基的基礎(chǔ)上,分別對(duì)培養(yǎng)基配方的碳源種類(lèi)(葡萄糖、蔗糖、果糖、可溶性淀粉、麥芽糖)及最佳碳源添加量(0、5 g/L、10 g/L、15 g/L、20 g/L)、氮源種類(lèi)(牛肉膏、蛋白胨、酵母浸粉、胰蛋白胨、硫酸銨)及最佳氮源添加量(0、5 g/L、10 g/L、15 g/L、20 g/L)、無(wú)機(jī)鹽種類(lèi)(NaCl、KCl、CaCl2、MnCl2)及無(wú)機(jī)鹽添加量(0、0.5 g/L、1.0 g/L、1.5 g/L、2.0 g/L)[21]進(jìn)行優(yōu)化,并測(cè)量?jī)?yōu)化后抑菌圈直徑。
1.3.5 發(fā)酵培養(yǎng)基優(yōu)化響應(yīng)面試驗(yàn)
在單因素試驗(yàn)的基礎(chǔ)上,以抑菌圈直徑(Y)為響應(yīng)值,選取3個(gè)影響最大的因素可溶性淀粉含量(A)、酵母浸粉含量(B)、氯化錳含量(C),采用Design-Expert10.0.8軟件進(jìn)行Box-Behnken試驗(yàn)設(shè)計(jì),確定最佳發(fā)酵培養(yǎng)基組成[22-25]。響應(yīng)面試驗(yàn)設(shè)計(jì)因素與水平見(jiàn)表1。
表1 發(fā)酵培養(yǎng)基優(yōu)化Box-Behnken試驗(yàn)設(shè)計(jì)因素與水平Table 1 Factors and levels of Box-Behnken tests design for fermentation medium optimization
1.3.6 發(fā)酵條件的優(yōu)化
固定基本發(fā)酵條件為:初始pH值為7、接種量3%、發(fā)酵溫度30 ℃、轉(zhuǎn)速160 r/min、發(fā)酵時(shí)間72 h,以抑菌圈直徑為考察指標(biāo),分別考察初始pH值(5、6、7、8、9)、接種量(1.5%、3.0%、4.5%、6.0%)、發(fā)酵時(shí)間(24 h、48 h、72 h、84 h)、轉(zhuǎn)速(80 r/min、160 r/min、240 r/min、320 r/min)、發(fā)酵溫度(25 ℃、30 ℃、35 ℃、40 ℃)對(duì)抑菌效果的影響。
貝萊斯芽孢桿菌P9的生長(zhǎng)曲線見(jiàn)圖1。由圖1可知,Bacillus velezensisP9在培養(yǎng)6 h后進(jìn)入對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期,在培養(yǎng)15 h時(shí),進(jìn)入穩(wěn)定期,菌體的OD600nm值達(dá)到最大,并基本保持穩(wěn)定,培養(yǎng)26 h后菌體進(jìn)入衰亡期,OD600nm值迅速下降。因此,確定貝萊斯芽孢桿菌P9最佳轉(zhuǎn)接時(shí)間為9 h。
圖1 貝萊斯芽孢桿菌P9的生長(zhǎng)曲線Fig.1 Growth curve of Bacillus velezensis P9
2.2.1 碳源及最佳碳源添加量的確定
碳源對(duì)于Bacillus velezensisP9發(fā)酵液抑菌性能的影響見(jiàn)圖2。
圖2 碳源種類(lèi)(a)及可溶性淀粉添加量(b)對(duì)菌株P(guān)9發(fā)酵液抑菌性能的影響Fig.2 Effect of carbon source types(a)and soluble starch addition(b)on bacteriostatic performance of strain P9 fermentation broth
由圖2a可知,不同的碳源對(duì)貝萊斯芽孢桿菌P9所產(chǎn)的拮抗物質(zhì)均有影響,當(dāng)以蔗糖或果糖作為碳源時(shí),分泌的拮抗物質(zhì)較少,對(duì)尖孢鐮刀菌的抑制能力較低;葡萄糖、麥芽糖作為碳源時(shí),抑菌圈直徑略有提高;而以可溶性淀粉作為碳源時(shí),抑菌圈直徑可達(dá)到9.0 mm,究其原因可能是,可溶性淀粉作為遲效碳源,避免了葡萄糖、果糖等單糖作為碳源時(shí)所產(chǎn)生的分解代謝阻遏效應(yīng)[26-28]。因此,確定最佳碳源為可溶性淀粉。由圖2b可知,隨著可溶性淀粉添加量在0~5 g/L范圍內(nèi)的增加,抑菌圈直徑逐漸增加;當(dāng)可溶性淀粉添加量達(dá)到5 g/L時(shí),抑菌圈直徑達(dá)到最大值,為10 mm;當(dāng)可溶性淀粉添加量>5 g/L時(shí),抑菌圈直徑開(kāi)始下降。因此,確定最適可溶性淀粉添加量為5 g/L。
2.2.2 氮源及最佳氮源添加量的確定
氮源對(duì)于貝萊斯芽孢桿菌P9發(fā)酵液抑菌性能的影響見(jiàn)圖3。
圖3 氮源種類(lèi)(a)及酵母浸粉添加量(b)對(duì)菌株P(guān)9發(fā)酵液抑菌性能的影響Fig.3 Effect of nitrogen source types(a)and yeast extract addition(b)on bacteriostatic performance of strain P9 fermentation broth
由圖3a可知,以硫酸銨為氮源時(shí),菌株P(guān)9的OD600nm值較低,所產(chǎn)的拮抗物質(zhì)極少,抑菌圈直徑最?。划?dāng)以胰蛋白胨、牛肉膏、蛋白胨為氮源時(shí),抑菌圈直徑有所增加;酵母浸粉作為氮源時(shí),抑菌圈直徑可達(dá)最大值,為9.4 mm。因此,確定最適氮源為酵母浸粉。由圖3b可知,當(dāng)酵母浸粉添加量在0~5 g/L范圍內(nèi)增加時(shí),幾乎無(wú)抑菌圈產(chǎn)生;當(dāng)酵母浸粉添加量>5 g/L,抑菌圈的直徑逐漸增加;當(dāng)酵母浸粉添加量為15 g/L時(shí),抑菌圈直徑達(dá)到最大值,為9.3 mm;當(dāng)酵母浸粉添加量>15 g/L時(shí),抑菌圈直徑逐漸減小。因此,確定最適酵母浸粉添加量為15 g/L。
2.2.3 無(wú)機(jī)鹽種類(lèi)及最佳無(wú)機(jī)鹽添加量的確定
無(wú)機(jī)鹽對(duì)于貝萊斯芽孢桿菌P9發(fā)酵液抑菌性能的影響見(jiàn)圖4。
圖4 無(wú)機(jī)鹽種類(lèi)(a)及MnCl2添加量(b)對(duì)菌株P(guān)9發(fā)酵液抑菌性能的影響Fig.4 Effect of inorganic salts types(a) and MnCl2 addition (b) on bacteriostasis of strain P9 fermentation broth
由圖4a可知,與基礎(chǔ)發(fā)酵培養(yǎng)基相比,添加NaCl、KCl、CaCl2、MnCl2均有抑菌效果,但MnCl2在4種無(wú)機(jī)鹽中效果最明顯,此時(shí)抑菌圈直徑達(dá)到11.59 mm。由圖4b可知,當(dāng)MnCl2添加量在1.0 g/L范圍內(nèi)增加時(shí),抑菌圈直徑逐漸增加,表明MnCl2對(duì)菌株分泌拮抗物質(zhì)具有一定的促進(jìn)作用;當(dāng)MnCl2添加量為1.0 g/L時(shí),抑菌圈直徑達(dá)到最大值,為15.5 mm;當(dāng)MnCl2添加量>1.0 g/L時(shí),抑菌圈直徑逐漸減小,這表明菌株產(chǎn)生的拮抗物質(zhì)有所抑制??赡苁怯捎诘蜐舛鹊腗nCl2刺激了Bacillus velezensisP9對(duì)碳源的利用,使得Bacillus velezensisP9分泌更多的拮抗物質(zhì),但是氯化錳添加量過(guò)高導(dǎo)致拮抗物質(zhì)與MnCl2產(chǎn)生反應(yīng),拮抗效果逐漸降低[29]。因此,發(fā)酵培養(yǎng)基中最佳MnCl2添加量為1.0 g/L。
根據(jù)單因素試驗(yàn)結(jié)果,以抑菌圈直徑(Y)為響應(yīng)值,選取3個(gè)對(duì)貝萊斯芽孢桿菌P9產(chǎn)拮抗物質(zhì)影響較大的因素可溶性淀粉含量(A)、酵母浸粉含量(B)、氯化錳(MnCl2)含量(C)進(jìn)行響應(yīng)面試驗(yàn),Box-Behnken試驗(yàn)設(shè)計(jì)結(jié)果見(jiàn)表2,方差分析結(jié)果見(jiàn)表3。
表3 回歸模型方差分析Table 3 Variance analysis of regression model
利用Design Expert 10.0.8軟件對(duì)表2的數(shù)據(jù)進(jìn)行多元回歸分析,擬合得到的模型二次多項(xiàng)式方程為:
表2 發(fā)酵培養(yǎng)基優(yōu)化Box-Behnken試驗(yàn)設(shè)計(jì)結(jié)果及分析Table 2 Results and analysis of Box-Behnken tests design for fermentation medium optimization
由表3可知,該二次回歸模型極顯著(P值<0.01),失擬項(xiàng)不顯著(P值=0.651 5>0.05),說(shuō)明所建立的模型擬合度較好,模型的決定系數(shù)R2=0.979 6,調(diào)整決定系數(shù)R2adj=0.953 5,表明95.35%的響應(yīng)值變化能由該模型解釋?zhuān)儺愊禂?shù)(coefficient of variation,CV)為0.77%,說(shuō)明試驗(yàn)與模型建立的方程擬合度良好,能用于分析和預(yù)測(cè)發(fā)酵培養(yǎng)基成分優(yōu)化。由P值可知,一次項(xiàng)A、B、二次項(xiàng)A2、B2、C2對(duì)抑菌圈直徑影響極顯著(P<0.01),一次項(xiàng)C對(duì)抑菌圈直徑影響顯著(P<0.05),其他項(xiàng)影響均不顯著(P>0.05)。由F值可知,各因素對(duì)抑菌圈直徑影響程度為A>B>C。
綜合以上試驗(yàn)結(jié)果,獲得發(fā)酵培養(yǎng)基為:可溶性淀粉6.769 g/L,酵母浸粉18.088 g/L,氯化錳0.888 g/L。在此最佳發(fā)酵培養(yǎng)基條件下,抑菌圈直徑的預(yù)測(cè)值為12.79 mm。為便于實(shí)驗(yàn)操作,修正發(fā)酵培養(yǎng)基為:可溶性淀粉6.8 g/L,酵母浸粉18.1 g/L,氯化錳0.89 g/L。在此優(yōu)化條件下進(jìn)行驗(yàn)證試驗(yàn),測(cè)得抑菌圈直徑實(shí)際值為12.43 mm,基本符合模型預(yù)測(cè)值,說(shuō)明該模型準(zhǔn)確度良好。
不同培養(yǎng)條件對(duì)菌株貝萊斯芽孢桿菌P9發(fā)酵液抑菌性能的影響見(jiàn)圖5。
圖5 不同培養(yǎng)條件對(duì)菌株P(guān)9發(fā)酵上清液抑菌活性的影響Fig.5 Effect of different culture conditions on antibacterial performance of strain P9 fermentation supernatant
由圖5a可知,隨著初始pH值在5~7范圍內(nèi)的升高,抑菌圈直徑逐漸增加;當(dāng)初始pH值為7時(shí),抑菌圈直徑達(dá)到最大值,為11.9 mm;當(dāng)初始pH值>7時(shí),抑菌圈直徑下降。究其原因可能是,過(guò)高或過(guò)低的初始pH值均對(duì)菌株產(chǎn)拮抗物質(zhì)有抑制作用,可能是由于過(guò)酸或者過(guò)堿的環(huán)境影響了菌體的生長(zhǎng)及其生命活動(dòng)。因此,確定最佳的初始pH值為7。
由圖5b可知,隨著接種量在1.5%~4.5%范圍內(nèi)的增加,抑菌圈逐漸增加;當(dāng)接種量為4.5%時(shí),抑菌圈直徑為12.6 mm;當(dāng)接種量>4.5%時(shí),抑菌圈直徑趨于平緩。因此,確定最佳接種量為4.5%。
由圖5c可知,隨著發(fā)酵時(shí)間在24~48 h范圍內(nèi)的增加,發(fā)酵液中并未產(chǎn)生抑菌圈,可能是因?yàn)榫w處于富集階段,并未產(chǎn)生拮抗物質(zhì);隨著發(fā)酵時(shí)間的延長(zhǎng),抑菌圈直徑逐漸增加,表明發(fā)酵液中的拮抗物質(zhì)正在逐漸積累;發(fā)酵72 h后,抑菌圈直徑達(dá)到最大值,為14.7 mm,當(dāng)發(fā)酵時(shí)間>72 h,抑菌圈直徑趨于平穩(wěn)。因此,確定最佳發(fā)酵時(shí)間為72 h。
由圖5d可知,當(dāng)轉(zhuǎn)速在80~240 r/min范圍內(nèi)的增加,抑菌圈直徑逐漸增加,這是因?yàn)檗D(zhuǎn)速提高了發(fā)酵培養(yǎng)基中的溶氧量,為菌體生命活動(dòng)提供了充足的氧氣;當(dāng)轉(zhuǎn)速為240 r/min時(shí),抑菌圈直徑達(dá)到最大值,為14.9 mm;當(dāng)轉(zhuǎn)速>240 r/min,抑菌圈直徑迅速減小,其原因可能是,過(guò)高的轉(zhuǎn)速影響了菌體的正常生長(zhǎng)及生命活動(dòng),從而導(dǎo)致發(fā)酵液中拮抗物質(zhì)逐漸減少。因此,確定最佳轉(zhuǎn)速為240 r/min。
由圖5e可知,隨著發(fā)酵溫度在25~30 ℃范圍內(nèi)的增加,抑菌圈直徑逐漸增加;當(dāng)發(fā)酵溫度為30 ℃時(shí),抑菌圈直徑達(dá)到最大值,為15.0 mm;當(dāng)發(fā)酵溫度>30 ℃,抑菌圈直徑逐漸降低。因此,確定最佳發(fā)酵溫度為30 ℃。
本研究以抗尖孢鐮刀菌貝萊斯芽孢桿菌P9為試驗(yàn)菌株,其發(fā)酵液對(duì)尖孢鐮刀菌的抑菌效果為考察指標(biāo),對(duì)菌株P(guān)9的培養(yǎng)基及發(fā)酵條件進(jìn)行優(yōu)化。確定其產(chǎn)拮抗物質(zhì)最適的發(fā)酵培養(yǎng)基為:可溶性淀粉6.8 g/L、酵母浸粉18.1 g/L、MnCl20.89 g/L、FeCl20.5g/L、MgSO4·7H2O 0.5 g/L,K2HPO41.4 g/L,KH2PO40.6 g/L,pH 7.0;最佳發(fā)酵條件如下:接種量為4.5%,發(fā)酵溫度30 ℃,轉(zhuǎn)速240 r/min,發(fā)酵時(shí)間72 h。在此優(yōu)化條件下,抑菌圈直徑可達(dá)到15.0 mm左右,比初始抑菌圈直徑(9.0 mm)擴(kuò)大了1.7倍,為尖孢鐮刀菌的生物防治提供理論基礎(chǔ)。