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        過表達米曲霉AoNarmp1 基因?qū)γ浊股L和曲酸合成的影響

        2023-02-15 12:54:50鄧幫福范俊俠姚麗華
        關(guān)鍵詞:生長

        鄧幫福,范俊俠,姚麗華,張 哲

        (江西科技師范大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,江西 南昌 330013)

        1 前言

        生物體在進行生命活動時需要金屬離子作為蛋白質(zhì)的輔助因子[1]。Nramp 蛋白是一種具有典型多肽分子的膜轉(zhuǎn)運蛋白,其跨膜結(jié)構(gòu)域是Nramp 蛋白參與生物體跨膜運輸與金屬離子的轉(zhuǎn)運和利用的關(guān)鍵[2,3]。Nramp 轉(zhuǎn)運蛋白可以特異選擇一種或多種金屬來進行轉(zhuǎn)運。目前發(fā)現(xiàn)其可以轉(zhuǎn)運Mn2+、Fe2+、Zn2+、Cu2+、Cd2+、Co2+、As2+和Ni2+等離子。Nramp 蛋白在動物中被廣泛研究,主要探究了Nramp 蛋白抗侵染病原微生物作用機制[4]。Nramp 蛋白也廣泛存在于植物中,它對植物轉(zhuǎn)運金屬離子和維持離子平衡起著重要作用[5]。Nrmap 蛋白在微生物中也具有金屬轉(zhuǎn)運活性[6],釀酒酵母中有3 個編碼Nramp 家族蛋白的基因:SMF1、SMF2 和SMF3,它們在釀酒酵母中都參與金屬離子的轉(zhuǎn)運[7]。

        曲酸是一種主要由米曲霉合成的具有多種生物活性的有機酸,被廣泛用于食品、醫(yī)藥、農(nóng)業(yè)、美容等行業(yè)[8,9]。米曲霉曲酸的合成調(diào)控與轉(zhuǎn)運蛋白密切相關(guān)。轉(zhuǎn)運蛋白KojT 參與轉(zhuǎn)運曲酸到胞外[10]。進一步研究發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)運蛋白AoKap4 與KojT 協(xié)同參與曲酸的轉(zhuǎn)運[11]。此外,其他轉(zhuǎn)運蛋白,如AoKap1、AoKap2 和NrtA 也被發(fā)現(xiàn)參與曲酸合成[12,13,14]。米曲霉中Nramp 轉(zhuǎn)運蛋白基因AoNramp1 已被克隆[4],但AoNramp1 作為轉(zhuǎn)運蛋白是否也會影響曲酸合成,目前尚無報道。

        本研究首先利用米曲霉α 淀粉酶基因amyB 啟動子構(gòu)建了AoNramp1 過表達菌株,然后對比分析了其與野生型3.042 菌株在不同離子處理下的菌絲生長情況和孢子數(shù)目形態(tài)。同時,分析了其對米曲霉曲酸合成的影響,以期為全面理解米曲霉Nramp家族基因的功能提供參考。

        2 實驗部分

        2.1 菌株與培養(yǎng)基

        米曲霉3.042 菌株(CICC 40092)作為野生型菌株。Czapek-Dox(CD)培養(yǎng)基(2%可溶性淀粉、0.2%NaNO3、0.1% KH2PO4、0.05% MgSO4、0.05% KCl、0.05%NaCl、0.002% FeSO4,pH 5.5)作為表型觀察和曲酸發(fā)酵的培養(yǎng)基。

        2.2 過表達載體的構(gòu)建

        以米曲霉3.042 基因組DNA 為模板,使用引物pEX2B-AoNramp1-F/R,通過PCR 擴增獲得AoNarmp1片段。重組質(zhì)粒pEX2B-AoNramp1 是將該片段通過同源重組連接到線性化的pEX2B 載體[15]。該載體攜帶有米曲霉α 淀粉酶基因amyB 啟動子和trpC 終止子。PEG 原生質(zhì)體法可將測序后的質(zhì)粒轉(zhuǎn)化到米曲霉3.042 的ΔpyrG 菌株中。PCR 法可驗證AoNramp1過表達菌。

        2.3 聚乙二醇(PEG)介導(dǎo)的原生質(zhì)體轉(zhuǎn)化法

        米曲霉轉(zhuǎn)化采用改進的PEG 介導(dǎo)的原生質(zhì)體轉(zhuǎn)化法[16]。首先用DPY 培養(yǎng)基(2%葡萄糖、1%蛋白胨、0.5%酵母抽提物、0.5% KH2PO4、0.05% MgSO4·7H2O,pH 5.5)培養(yǎng)米曲霉,30°C 培養(yǎng)20 h 后收集菌絲,用含有50 mM 馬來酸(pH 5.5)和0.6 M(NH4)2SO4的溶液洗滌2 次,瀝干;然后用過濾除菌的酶解溶液(50 mM 馬來酸、1%Yatalase、0.5%Lysing enzymes、0.6 M(NH4)2SO4,pH 5.5)與菌絲混合,60~70 rpm 攪拌,30°C 避光裂解3 h 后,加入等體積的轉(zhuǎn)化溶液(1.2 M sorbitol、50 mM CaCl2·2H2O、35 mM NaCl、10 mM pH=7.5 的Tris-HCl 溶液)搖晃幾次,將上述酶液通過滅菌的雙層擦鏡紙過濾,用圓底管收集過濾液,4° C 離心收集原生質(zhì)體。用轉(zhuǎn)化溶液洗滌原生質(zhì)體一次,再離心收集,放在冰上,備用。將備好的質(zhì)粒(10 μg)與該原生質(zhì)體(200 μL)混勻。冰浴30 min,然后分3 次分別加入250 μL、250 μL、850 μL PEG溶 液(60%PEG 4000、50 mM CaCl2·2H2O、10 mM pH=7.5 的Tris-HCl 溶液)混勻后避光放置20 min。隨后用適量轉(zhuǎn)化溶液終止反應(yīng);離心收集原生質(zhì)體,倒入適量的Top MM 培養(yǎng)基(0.2%NH4Cl、0.1%(NH4)2SO4、0.05% KCl、0.05% NaCl、0.1% KH2PO4、0.05%MgSO4·7H2O、0.002% FeSO4·7H2O、2% glucose、0.15% methionine、l.2 M sorbitol、0.8% agar,pH 5.5)混勻,最后將上述Top MM 培養(yǎng)基平鋪在MM 培養(yǎng)基上,培養(yǎng)3~5 天。

        2.4 表型分析

        菌株孢子液接種到CD 培養(yǎng)基上,在30 °C 培養(yǎng)3 天后進行表型分析。在CD 培養(yǎng)基中分別加入200 μM ZnSO4、200 μM FeSO4、200 μM MnSO4、200 μM CuSO4用作不同金屬離子處理米曲霉。十字交叉法用于測定菌絲生長直徑。洗孢液(0.025%Tween 80、0.8%NaCl)被用于收集菌落孢子,并通過血球計數(shù)板計算孢子數(shù)目。每個實驗都進行了三個生物學(xué)重復(fù)。

        2.5 RNA 的提取

        收集的菌絲樣品經(jīng)液氮處理后研磨成粉末。按照真菌總RNA 提取試劑盒(Omega,R6840)說明書提取總RNA。

        2.6 表達量分析

        提取的RNA 用gDNA Eraser(TaKaRa)去除基因組DNA,然后按照反轉(zhuǎn)錄試劑盒(TaKaRa)進行反轉(zhuǎn)錄獲得cDNA。利用CFX96 Real-Time PCR Detection System(Bio-Rad)進行qPCR,使用的定量試劑盒是SYBR Green PCR Kit(TaKaRa)。米曲霉Histone H1基因(AO090012000496)作為內(nèi)參基因。所有實驗均重復(fù)三次。

        2.7 曲酸含量的測定

        將100 μL 米曲霉菌株的分生孢子懸浮液(108個/mL)接種到含有40 mL 改良CD 液體培養(yǎng)基的錐形瓶中;在30°C 下培養(yǎng)7 天后,收集上清液,用FeCl3顯色法[4]測定曲酸的濃度(mg/mL);取0.5 mL 發(fā)酵液,與1 mL FeCl3-HCl 溶液(0.06 M FeCl3、0.27 M HCl)混合,然后加0.5 mL 雙蒸水混勻后,使用酶標(biāo)儀(Thermo Scientific)在500 nm 處測定混合液的吸光度;用雙蒸水代替曲酸發(fā)酵液作為對照組;依據(jù)上述顯色反應(yīng)體系繪制曲酸的標(biāo)準(zhǔn)曲線(0~0.4 mg/ml);利用測定的混合液吸光度和曲酸標(biāo)準(zhǔn)曲線即可計算出曲酸的濃度。同時,收集培養(yǎng)7 天后菌絲體,并在65 °C 下干燥至恒重,曲酸的含量(mg/mL·g)等于曲酸的濃度除以生物量。

        3 結(jié)果與討論

        3.1 過表達AoNramp1 對米曲霉生長的影響

        為了研究AoNramp1 在米曲霉生長中的作用,本文利用米曲霉α 淀粉酶基因amyB 啟動子構(gòu)建了2 株AoNramp1 過表達菌株:OE-1 和OE-8(圖1AC)?;虮磉_分析顯示,相對于野生型,OE-1 和OE-8 中AoNramp1 的表達提高了28 倍(圖1B)。為了探究在金屬離子處理下過表達AoNramp1 對米曲霉生長的影響,本文選用200 μM ZnSO4、200 μM FeSO4、200 μM MnSO4、200 μM CuSO4分別處理了野生型WT、OE-1 和OE-8 菌株。相比之下,過表達AoNramp1菌株比野生型菌株的的菌絲生長直徑明顯變?。▓D1C,D);而且過表達AoNramp1 菌株的濕重比野生型菌株的?。▓D1E)。Zn2+處理增加野生菌株的濕重,而Zn2+對過表達AoNramp1 菌株的濕重?zé)o明顯促進作用,表明AoNramp1 基因與Zn2+相關(guān)。而Cu2+對野生型菌株和過表達AoNramp1 菌株的濕重都有明顯抑制作用。這些結(jié)果表明,過表達AoNramp1 抑制了米曲霉菌絲生長,而Zn2+促進了米曲霉菌絲生長,且AoNramp1 與Zn2+有關(guān)。

        圖1 過表達AoNramp1 對米曲霉生長的影響:(A)利用米曲霉α 淀粉酶基因amyB 啟動子過表達AoNramp1 基因的示意圖;野生型(WT)與AoNramp1 過表達菌株(OE-1 和OE-8)中的AoNramp1基因表達水平(B),在不同金屬處理下的菌絲生長情況(C)和生長直徑(D)及菌絲濕重(E)

        3.2 過表達AoNramp1 對米曲霉孢子生長的影響

        在與上文同樣的實驗條件下,本文研究發(fā)現(xiàn)過表達AoNramp1 菌株的孢子數(shù)顯著少于野生型菌株(圖2A,B),但不同金屬離子對孢子形成的影響是不一樣的。Cu2+會抑制米曲霉孢子的形成,而Zn2+、Fe2+、Mn2+則能促進米曲霉孢子的形成,其中Mn2+顯著促進野生型菌株產(chǎn)孢子,而Fe2+顯著促進過表達AoNramp1 菌株產(chǎn)孢子(圖2A,B),這說明過表達AoNramp1 影響Fe2+、Mn2+對米曲霉孢子形成。孢子大小測試結(jié)果顯示過表達AoNramp1 菌株顯著大于野生型菌株的孢子直徑(圖2C)。

        圖2 過表達AoNramp1 對米曲霉孢子形成的影響:不同金屬處理后的野生型菌株(WT)與AoNramp1 過表達菌株(OE-1 和OE-8)的孢子顯微形貌(A)、孢子數(shù)量(B)、孢子直徑(C)

        3.3 過表達AoNramp1 對米曲霉菌球生長的影響

        在與上文同樣的實驗條件下,本文研究發(fā)現(xiàn)過表達AoNramp1 菌株的菌球直徑顯著大于野生型菌株(圖3 A,B),其中Fe2+、Cu2+對過表達AoNramp1菌株的菌球直徑增大效果較為顯著。菌球的干重分析結(jié)果顯示過表達AoNramp1 與野生型菌株無顯著性差異(圖3C)。這些結(jié)果表明,過表達AoNramp1增加了米曲霉在液體培養(yǎng)基中的菌球直徑,且Fe2+、Cu2+的促進效果最為明顯,但沒有影響米曲霉的生物量。

        3.4 過表達AoNramp1 對米曲霉曲酸合成的影響

        為了研究AoNramp1 對米曲霉曲酸合成的影響,本文將WT、OE-1 和OE-8 的孢子液接種在液體CD 曲酸發(fā)酵培養(yǎng)基中,30 °C 培養(yǎng)7 天。曲酸能夠與Fe3+發(fā)生顯色反應(yīng)生成紅色復(fù)合物,從而定性分析菌株的曲酸合成情況。研究結(jié)果顯示AoNramp1過表達菌株比野生型菌株的顯色明顯較淺(圖4A),這表明過表達AoNramp1 抑制了曲酸的合成。AoNramp1 過表達菌株比野生型菌株的曲酸合成量顯著減少(圖4B)。曲酸合成相關(guān)基因kojA、kojR、kojT的表達分析表明,相對于野生型,過表達AoNramp1菌株中的基因表達量都顯著下調(diào)(圖4C-E)。這些結(jié)果表明,AoNramp1 可能是通過抑制曲酸合成相關(guān)基因的表達來抑制米曲霉曲酸的合成。這種抑制作用可能來自Zn2+的影響[17-19]。

        圖4 過表達AoNramp1 對米曲霉曲酸合成的影響:野生型菌株(WT)與AoNramp1過表達菌株(OE-1 和OE-8)所產(chǎn)的曲酸顯色反應(yīng)(A),曲酸含量(B);野生型與AoNramp1過表達菌株中曲酸合成相關(guān)基因kojA(C)、kojR(D)和kojT(E)的表達水平

        4 結(jié)論

        總之,本文研究表明過表達AoNramp1 會抑制米曲霉菌絲的生長,而Zn2+會促進米曲霉菌絲的生長,且AoNramp1 與Zn2+有關(guān);過表達AoNramp1 使得米曲霉孢子數(shù)減少、孢子直徑增大,且Cu2+作用最為明顯;過表達AoNramp1 增加了米曲霉在液體培養(yǎng)基中的菌球直徑,且Fe2+、Cu2+的促進效果最為明顯,但不影響米曲霉的生物量;AoNramp1 可能是通過抑制曲酸合成相關(guān)基因kojA、kojR、kojT 的表達來抑制米曲霉曲酸的合成。本研究為理解Nramp 蛋白在米曲霉生長和曲酸合成中的作用提供了一定的參考。

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