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        基于體外發(fā)酵模型分析植物多糖對(duì)T2DM患者腸道菌群及代謝的影響

        2023-02-07 06:48:42賈麗娜王新月葛艷艷何紅鵬羅學(xué)剛朱立穎賈衛(wèi)國郝力壯
        食品科學(xué) 2023年2期
        關(guān)鍵詞:玄參烏梅蒼術(shù)

        賈麗娜,馬 倩,王新月,葛艷艷,王 楠,何紅鵬,羅學(xué)剛,朱立穎,賈衛(wèi)國,郝力壯,齊 威,

        (1.天津科技大學(xué)生物工程學(xué)院,天津 300457;2.浙江省農(nóng)業(yè)科學(xué)院,浙江 杭州 310021;3.四川省第五人民醫(yī)院,四川 成都 610014;4.青海省高原放牧家畜動(dòng)物營養(yǎng)與飼料科學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,青海省牦牛工程技術(shù)研究中心,青海大學(xué)畜牧獸醫(yī)科學(xué)院,青海 西寧 810016)

        2型糖尿病(type 2 diabetes mellitus,T2DM)占糖尿病患者的90%~95%,是一種發(fā)病率和患病率都呈現(xiàn)快速增長的全球性流行病[1]。2019年全球糖尿病地圖(第9版)報(bào)告指出,2019年全球約有4.63億20~79 歲的成人患糖尿病。其中,中國糖尿病患者數(shù)量排在了印度和美國前面,位居第一,達(dá)1.164億[2]。T2DM的發(fā)病是環(huán)境和遺傳因素相互作用的結(jié)果,環(huán)境因素的影響大于遺傳因素。大量研究證明,腸道微生物失調(diào)作為一個(gè)重要的環(huán)境因素,在糖尿病發(fā)展中起著重要作用[1]。T2DM現(xiàn)在已成為第一個(gè)被定義腸道菌群特征的人類慢性疾病[3],因此,靶向調(diào)節(jié)腸道微生物可能是改善T2DM的有效策略[4]。

        多糖是重要的天然高分子化合物,廣泛存在于藥食同源植物中,也是中藥水煎液的關(guān)鍵生物活性成分,具有降血糖、抗氧化、免疫調(diào)節(jié)等生理作用,在改善T2DM等疾病方面發(fā)揮著重要作用[5]。由于人類基因組編碼的消化酶有限,多糖攝入人體后經(jīng)口、胃、小腸等器官通常不被消化,最終進(jìn)入結(jié)腸并被不同腸道微生物降解產(chǎn)生許多不同鏈長、結(jié)構(gòu)構(gòu)象和分支數(shù)量的低聚糖,這些低聚糖可以促進(jìn)有益菌的生長,如雙歧桿菌和擬桿菌[6]。同時(shí),這些低聚糖還能夠被腸道菌群代謝形成多種生物活性物質(zhì),如短鏈脂肪酸(shortchain fatty acid,SCFA)、乳酸、氫和二氧化碳等,進(jìn)而影響宿主的生理狀態(tài)[7]。

        大量研究報(bào)道植物多糖具有降血糖活性,雖然不同植物多糖的降糖機(jī)制存在差異,但其主要是在促進(jìn)胰島素分泌、抑制胰島細(xì)胞凋亡、增強(qiáng)胰島素敏感性、降低胰島素抵抗、提高抗氧化應(yīng)激能力、調(diào)節(jié)相關(guān)信號(hào)通路、調(diào)節(jié)腸道菌群等方面發(fā)揮作用,因此植物多糖可作為抗糖尿病的潛在藥物[8]。腸道菌群影響T2DM患者代謝的潛在機(jī)制主要有以下幾個(gè)方面[9]:一是調(diào)節(jié)炎癥,總的來說T2DM與促炎細(xì)胞因子、趨化因子和炎性蛋白水平有關(guān),一些腸道微生物及其代謝物可以通過促進(jìn)抗炎細(xì)胞因子和趨化因子分泌,同時(shí)抑制促炎細(xì)胞因子的分泌預(yù)防和改善機(jī)體的炎癥反應(yīng);二是降低腸道通透性,腸道通透性增加是T2DM的一個(gè)特征,它會(huì)導(dǎo)致腸道菌群代謝物易位進(jìn)入血液并引起代謝性內(nèi)毒素血癥,據(jù)報(bào)道,兩種對(duì)T2DM可能有益的擬桿菌(Bacteroides vulgatus和B.dorei)可通過調(diào)節(jié)結(jié)腸中緊密連接基因的表達(dá),降低腸道通透性,減少脂多糖的生成,改善小鼠的內(nèi)毒素血癥[10];三是葡萄糖代謝,腸道菌群可以通過調(diào)節(jié)肝臟等主要代謝器官中的胰島素抵抗和葡萄糖穩(wěn)態(tài),以及腸道中的消化和控糖激素的產(chǎn)生影響T2DM,例如一種潛在益生菌(Bifidobacterium lactis)可以增加糖原合成并降低肝臟糖異生相關(guān)基因的表達(dá)[11];四是脂肪酸氧化、合成和能量消耗,增加脂肪酸氧化和能量消耗并減少脂肪酸合成可改善肥胖和T2DM,據(jù)報(bào)道,Akkermansia muciniphila、B.acidifaciens、Lactobacillus gasseri和SCFA會(huì)增加脂肪組織中的脂肪酸氧化[12];五是細(xì)菌間的綜合作用,一些微生物可以通過增加其他潛在的有益微生物或通過交叉喂養(yǎng)影響宿主生理,如Bifodobacterium的幾個(gè)菌種與其他菌群(如Faecalibacterium和Roseburia)具有交叉喂養(yǎng)作用[13],L.rhamnosus可以增加大鼠盲腸中Bifidobacterium的豐度[14],L.casei可以增加產(chǎn)丁酸細(xì)菌的豐度[15]。

        本研究采用體外發(fā)酵模型,分析黃芪多糖、蒼術(shù)多糖、玄參多糖、紅棗多糖和烏梅多糖5 種植物多糖對(duì)T2DM患者糞便微生物及其產(chǎn)氣情況、SCFA和代謝物質(zhì)的影響,探究5 種多糖潛在的益生作用,以期為植物多糖與腸道菌群的相互作用研究提供參考。

        1 材料與方法

        1.1 材料與試劑

        黃芪購買自甘肅岷縣,蒼術(shù)購買自內(nèi)蒙古自治區(qū),玄參、烏梅購買自云南大理,紅棗購買自新疆和田地區(qū)。

        無水乙醇 天津市江天化工技術(shù)股份有限公司;核糖醇、N-甲基-N-(三甲基硅烷)三氟乙酰胺(N-methyl-N-(trimethylsilyl)trifluoroacetamide,MSTFA)、甲氧胺鹽酸鹽 美國Sigma公司;乙酸、丙酸、丁酸、戊酸、異丁酸、異戊酸 上海麥克林生化科技有限公司。

        1.2 儀器與設(shè)備

        -80 ℃冰箱 浙江捷盛低溫設(shè)備有限公司;超凈工作臺(tái) 蘇州凈化設(shè)備有限公司;離心機(jī) 湖南湘儀離心機(jī)儀器有限公司;電子天平 美國康州電子科技有限公司;7890B-5977B氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用儀 美國Agilent公司;快速冷凍干燥機(jī) 德國Christ公司;旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀 瑞士Büchi公司;GC9720 plus氣相色譜儀 浙江福立分析儀器股份有限公司;HL-QT01體外發(fā)酵氣體分析儀 蘇州海路生物技術(shù)有限公司。

        1.3 方法

        1.3.1 多糖提取及成分測(cè)定

        原料用粉碎機(jī)粉碎置于錐形瓶中,按1∶8(g/mL)加入蒸餾水,混合均勻后于90 ℃條件下水浴6~7 h,用3 層紗布過濾后6000 r/min離心10 min得粗多糖提取液。用旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀低于65 ℃濃縮粗多糖提取液,之后緩慢加入5 倍量(V/V)的95%乙醇溶液,過夜沉降,8000 r/min離心10 min,收集沉淀,靜置揮發(fā)殘留乙醇,-80 ℃預(yù)凍多糖溶液24 h以上后冷凍干燥,收集備用。黃芪多糖、蒼術(shù)多糖、玄參多糖、紅棗多糖和烏梅多糖得率分別為9.48%、27.80%、5.62%、3.82%和10.40%。

        對(duì)5 種多糖進(jìn)行簡單的成分測(cè)定:采用苯酚-硫酸法測(cè)得黃芪多糖、蒼術(shù)多糖、玄參多糖、紅棗多糖和烏梅多糖總糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)分別為65.73%、91.13%、87.35%、25.60%、81.90%;采用Bradford法測(cè)得黃芪多糖、蒼術(shù)多糖、玄參多糖、紅棗多糖和烏梅多糖蛋白質(zhì)質(zhì)量分?jǐn)?shù)分別為0.79%、1.58%、2.19%、0.35%、2.59%。

        1.3.2 糞便樣本采集及體外發(fā)酵

        本實(shí)驗(yàn)召集6 名志愿者,2 男4 女,年齡階段20~70 歲。實(shí)驗(yàn)分為2 組:NC組,3 名正常人;T2DM組,3 名糖尿病人。所有志愿者近3 個(gè)月正常飲食,在這3 個(gè)月內(nèi)沒有服用抗生素或益生菌等。研究人員對(duì)所有志愿者進(jìn)行了全面解釋,并獲得了書面同意。并經(jīng)四川大學(xué)華西醫(yī)院生物醫(yī)學(xué)倫理委員會(huì)審核通過,批準(zhǔn)號(hào)為2018(286)。

        使用自動(dòng)糞便處理儀將新鮮糞便(0.8±0.02)g加入到8 mL 0.1 mol/L磷酸鹽緩沖液(pH 7.0)中,處理成10 g/100 mL的糞便懸濁液。吸取500 μL懸浮液分別接種于酵母浸粉-水解酪蛋白-脂肪酸(yeast extract-casein hydrolysate-fatty acids,YCFA)培養(yǎng)基和添加5‰多糖的YCFA培養(yǎng)基中,37 ℃厭氧培養(yǎng)24 h。

        1.3.3 16S rRNA基因測(cè)序

        取發(fā)酵液4 ℃、12000 r/min離心10 min,菌體沉淀送至上海美吉生物醫(yī)藥科技有限公司,完成16S rRNA基因測(cè)序。

        1.3.4 代謝組分析

        取發(fā)酵液4 ℃、12000 r/min離心10 min,取200 μL上清液,加入20 μL核糖醇(內(nèi)標(biāo)),真空冷凍干燥。凍干樣品中加入50 μL含甲氧胺鹽酸鹽(20 mg/mL)的吡啶溶液,在40 ℃水浴肟化反應(yīng)90 min,加入80 μL的MSTFA,在37 ℃水浴硅烷化反應(yīng)30 min,經(jīng)0.22 μm有機(jī)微孔濾膜過濾溶液除去雜質(zhì)后,進(jìn)行氣相色譜-質(zhì)譜檢測(cè)[16]。利用NIST05譜庫初步鑒定成分,結(jié)合化學(xué)成分的實(shí)際成分和保留時(shí)間等進(jìn)行定性。采用面積歸一化法進(jìn)行相對(duì)定量。

        1.3.5 SCFA檢測(cè)

        取500 μL發(fā)酵液加入100 μL巴豆酸偏磷酸溶液,振蕩混勻后-30 ℃酸化反應(yīng)24 h,隨后將樣品于4 ℃、10000 r/min離心3 min,上清液過0.22 μm濾膜,使用氣相色譜儀分析乙酸、丙酸、丁酸、異丁酸、異戊酸和戊酸。利用外標(biāo)法進(jìn)行絕對(duì)定量。

        1.3.6 氣體成分測(cè)定

        利用氣體分析儀檢測(cè)發(fā)酵后樣品小瓶中CO2、CH4、H2、H2S氣體的體積。

        1.4 數(shù)據(jù)處理與分析

        所有樣品的測(cè)定均重復(fù)3 次。利用SPSS Statistics 22.0軟件對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行顯著性分析(P<0.05),采用GraphPrism 8軟件繪圖,利用SIMCA 14.1軟件和Metaboanalyst 5.0網(wǎng)站(http://www.metaboanalyst.ca)進(jìn)行代謝通路分析。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 植物多糖對(duì)腸道菌群產(chǎn)氣情況的影響

        人體腸道氣體圖譜在很大程度上取決于微生物組成和底物[17],因此,利用體外發(fā)酵技術(shù)評(píng)估腸道微生物利用植物多糖產(chǎn)生的氣體情況。相較于正常人,T2DM患者腸道菌群發(fā)酵多糖產(chǎn)氣體積有所減少,CO2、H2、CH4、H2S含量也減少(表1)。不同植物多糖對(duì)腸道菌群代謝產(chǎn)氣作用有差異,烏梅多糖降低了各組的產(chǎn)氣體積和H2S產(chǎn)量,其余多糖組的產(chǎn)氣量均有增加。5 種多糖均能降低NC組的H2S含量。5 種多糖均能提高T2DM組的CO2和CH4含量,降低H2S含量,紅棗多糖能夠提高T2DM組H2含量。T2DM患者腸道微生物發(fā)酵蒼術(shù)多糖產(chǎn)生的CO2含量最高,發(fā)酵紅棗多糖產(chǎn)生CH4、H2和H2S含量最高。結(jié)果表明添加植物多糖能夠影響腸道菌群產(chǎn)氣情況,因此,植物多糖可能通過調(diào)節(jié)腸道中細(xì)菌產(chǎn)生的氣體成分及含量對(duì)宿主產(chǎn)生影響。

        表1 植物多糖對(duì)腸道菌群體外發(fā)酵產(chǎn)氣的影響Table 1 Effects of plant polysaccharides on gas production by fermentation of intestinal bacteria in vitro

        2.2 植物多糖對(duì)腸道菌群產(chǎn)生SCFA的影響

        T2DM患者腸道菌群體外發(fā)酵產(chǎn)生SCFA水平顯著低于正常人(表2)。5 種植物多糖均能夠提高T2DM組的SCFA總量、丁酸、戊酸、異丁酸和異戊酸含量,尤其是以黃芪多糖、蒼術(shù)多糖和玄參多糖效果顯著。紅棗多糖、蒼術(shù)多糖對(duì)T2DM組乙酸具有一定的調(diào)節(jié)作用,分別提高了20.29%、75.01%。紅棗多糖、黃芪多糖、蒼術(shù)多糖和玄參多糖對(duì)T2DM組丙酸具有一定的調(diào)節(jié)作用,分別提升了130.80%、259.06%、185.33%和248.01%。SCFA作為腸道細(xì)菌產(chǎn)生的代謝物,介導(dǎo)人體和腸道微生物之間的相互作用。SCFA是腸道菌群與宿主之間信號(hào)傳遞的重要物質(zhì),能夠增強(qiáng)屏障功能、維持免疫系統(tǒng)健康和降低腸腔內(nèi)的氧含量等功能,對(duì)糖尿病具有益處[18]。植物多糖能夠影響腸道菌群代謝乙酸、丙酸、丁酸、戊酸等含量,且可能通過調(diào)節(jié)腸道中細(xì)菌產(chǎn)生的SCFA成分及含量對(duì)宿主產(chǎn)生影響。

        表2 植物多糖對(duì)SCFA濃度的影響Table 2 Effects of plant polysaccharides on SCFA contents μmol/mL

        2.3 植物多糖對(duì)腸道菌群代謝組的影響

        利用氣相色譜-質(zhì)譜代謝組學(xué)技術(shù)對(duì)所有樣品的代謝物進(jìn)行分析,共檢測(cè)到105 種代謝產(chǎn)物,其中包括有機(jī)酸類(39 種)、氨基酸類(23 種)、糖類(2 種)、醇類(12 種)、酯類(2 種)、酚類(1 種)、核酸類(3 種)、胺類(9 種)。應(yīng)用正交偏最小二乘判別分析方法,結(jié)果顯示樣品能明顯區(qū)分,說明不同處理組的代謝物有差異,菌群的代謝情況發(fā)生改變(圖1)。

        圖1 正交偏最小二乘判別分析圖Fig.1 Orthogonal partial least squares-discriminant analysis

        與NC組相比,T2DM患者腸道菌群體外發(fā)酵組17 種代謝物發(fā)生了顯著變化:木糖醇、亮氨酸、丙氨酸、纈氨酸、谷氨酸、異亮氨酸、尸胺、焦谷氨酸、苯丙氨酸、甘氨酸、鳥氨酸、D-焦谷氨酸、酪氨酸、脯氨酸、苯丙氨酸、乳酸、5-氨基戊酸。其中前16 種代謝物相對(duì)于NC組顯著上調(diào),5-氨基戊酸顯著下調(diào)。顯著性差異代謝物主要與氨基酸代謝通路相關(guān),包括谷胱甘肽代謝,精氨酸和脯氨酸代謝,精氨酸生物合成,丙氨酸、天冬氨酸和谷氨酸代謝,苯丙氨酸、酪氨酸和色氨酸的生物合成,谷氨酰胺和谷氨酸代謝,甘氨酸、絲氨酸和蘇氨酸代謝,酪氨酸代謝,乙醛酸和二羧酸代謝,戊糖和葡萄糖醛酸的相互轉(zhuǎn)化。

        多糖處理能夠改變T2DM患者菌群體外發(fā)酵的代謝圖譜。烏梅多糖、紅棗多糖、玄參多糖、黃芪多糖和蒼術(shù)多糖處理組都顯著上調(diào)了乳酸、D-焦谷氨酸,下調(diào)了尸胺。值得注意的是,不同多糖對(duì)代謝的影響存在差異性。黃芪多糖組上調(diào)了丙氨酸、亮氨酸、甘氨酸,下調(diào)了尸胺;蒼術(shù)多糖組上調(diào)了甘氨酸、亮氨酸,下調(diào)了脯氨酸、纈氨酸、異亮氨酸、尸胺;玄參多糖組下調(diào)了纈氨酸、脯氨酸、亮氨酸、異亮氨酸、苯丙氨酸;烏梅多糖組上調(diào)了木糖醇,下調(diào)了纈氨酸、脯氨酸、亮氨酸、丙氨酸;紅棗多糖組上調(diào)了甘氨酸、丙氨酸、苯丙氨酸,下調(diào)了苯丙氨酸、脯氨酸。

        2.4 植物多糖對(duì)腸道菌群結(jié)構(gòu)的影響

        2.4.1 多樣性分析

        如圖2所示,曲線平緩顯示測(cè)序的數(shù)據(jù)準(zhǔn)確可靠。α多樣性分析常用Chao指數(shù)和ACE指數(shù)衡量群落豐富度,這兩個(gè)指數(shù)越高表明微生物的豐度越高。如圖3所示,T2DM組與NC組間的α多樣性指數(shù)無顯著差異,這與已報(bào)道的研究結(jié)果一致[19];經(jīng)過多糖處理后,α多樣性指數(shù)也無明顯差異。如圖4所示,β多樣性分析顯示不同處理組樣品兩兩分離,說明不同處理組的微生物組成存在差異性,腸道菌群組成發(fā)生了一定程度的改變。

        圖2 稀釋曲線Fig.2 Rarefaction curves

        圖3 α多樣性分析Fig.3 α Diversity analysis

        圖4 主坐標(biāo)分析Fig.4 PCoA analysis

        2.4.2 腸道微生物組成分析

        Venn圖是統(tǒng)計(jì)多個(gè)組別中所共有和獨(dú)有的物種數(shù)目,可以比較直觀地看出不同環(huán)境樣本中物種組成情況。腸道菌群在屬水平上分布的結(jié)果見圖5,NC組共152 個(gè)屬、T2DM組含有108 個(gè)屬,黃芪多糖+NC組含有122 個(gè)屬(特有屬5 個(gè))、黃芪多糖+T2DM組102 個(gè)屬(特有屬11 個(gè)),烏梅多糖+NC組含有180 個(gè)屬(特有屬27 個(gè))、烏梅多糖+T2DM組含有138 個(gè)屬(特有屬18 個(gè)),蒼術(shù)多糖+NC組含有128 個(gè)屬(特有屬4 個(gè))、蒼術(shù)多糖+T2DM組含有93 個(gè)屬(特有屬7 個(gè)),紅棗多糖+NC組含有128 個(gè)屬(特有屬10 個(gè))、紅棗多糖+T2DM組含有93 個(gè)屬(特有屬2 個(gè)),玄參多糖+NC組含有129 個(gè)屬(特有屬4 個(gè))、玄參多糖+T2DM組含有102 個(gè)屬(特有屬7 個(gè))。

        圖5 Venn圖分析Fig.5 Venn diagram analysis

        腸道菌群在種水平上分布的結(jié)果顯示,NC組共252 個(gè)種、T2DM組含有171 個(gè)種、黃芪多糖+NC組含有207 個(gè)種(特有種12 個(gè))、黃芪多糖+T2DM組167 個(gè)種(特有種18 個(gè)),烏梅多糖+NC組含有298 個(gè)種(特有種49 個(gè))、烏梅多糖+T2DM組含有212 個(gè)種(特有種29 個(gè)),蒼術(shù)多糖+NC組含有219 個(gè)種(特有種11 個(gè))、蒼術(shù)多糖+T2DM組含有154 個(gè)種(特有種9 個(gè)),紅棗多糖+NC組含有217 個(gè)種(特有種17 個(gè))、紅棗多糖+T2DM組含有157 個(gè)種(特有種8 個(gè)),玄參多糖+NC組含有230 個(gè)種(特有種4 個(gè))、玄參多糖+T2DM組含有167 個(gè)種(特有種7 個(gè))。不同多糖處理組樣品間微生物組成存在差異,植物多糖發(fā)酵可能對(duì)微生物菌落結(jié)構(gòu)和物種組成有影響。

        2.4.3 腸道微生物相對(duì)豐度顯著差異的分析

        腸道菌群在門水平上組成主要有厚壁菌門(Firmicutes)、擬桿菌門(Bacteroidota)、變形菌門(Proteobacteria)和放線菌門(Actinobacteriota)。由圖6A可知,5 種植物多糖都提高了Firmicutes豐度、提高了NC組Bacteroidota豐度、降低了T2DM組Bacteroidota豐度。烏梅多糖顯著降低了Actinobacteriota豐度。5 種植物多糖降低Bacteroidota豐度,并增加Firmicutes豐度,與滇黃精中的總多糖作用類似,多糖可以在門水平上改善腸道的微生態(tài)環(huán)境[20]。

        由圖6 B 可知,與T2 DM 組相比,植物多糖+T2DM組均提高了Faecalibacterium、Roseburia的豐度,降低了Escherichia的豐度,表明5 種多糖能夠富集Faecalibacterium、Roseburia;同時(shí)除烏梅多糖外,其他多糖均能夠提高M(jìn)egamonas的豐度;黃芪多糖+T2DM組提高Bifidobacterium、Bacteroides、Akkermansia豐度,降低Ruminococcus豐度;玄參多糖+T2DM組提高Bacteroides豐度;紅棗多糖+T2DM組提高Bifidobacterium、Akkermansia豐度,降低Ruminococcus豐度;烏梅多糖+T2DM組提高Blautia的豐度;蒼術(shù)多糖+T2DM組提高Bifidobacterium、Akkermansia豐度。Escherichia coli能夠促進(jìn)糖尿病,而Akkermansia和Bifidobacterium對(duì)T2DM具有改善作用,B.longum、B.infantis、B.Animals、B.carinii、B.brevis等都顯示對(duì)糖耐量有所改善[3,21]。簡言之,植物多糖能夠改善菌群結(jié)構(gòu),促進(jìn)有益微生物的生長,抑制有害微生物的增長。

        圖6 群落組成分析Fig.6 Analysis of intestinal microbial composition

        2.4.4 腸道菌群功能預(yù)測(cè)

        對(duì)測(cè)序結(jié)果樣本中微生物群落的功能組成進(jìn)行預(yù)測(cè)(圖7),豐度較高的京都基因與基因組百科全書(Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes,KEGG)代謝通路包括氨基酸生物合成、氨基酸和核苷酸糖代謝、ABC轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白、碳代謝、次生代謝產(chǎn)物的生物合成、嘌呤代謝。此外,與T2DM組相比,紅棗多糖+T2DM、蒼術(shù)多糖+T2DM、烏梅多糖+T2DM組下調(diào)了苯丙氨酸代謝。黃芪+T2DM組下調(diào)了丙氨酸、天冬氨酸和谷氨酸代謝、氨基糖和核苷酸糖代謝等代謝通路。紅棗+T2DM組下調(diào)了丙氨酸、天冬氨酸和谷氨酸代謝、磷酸轉(zhuǎn)移酶系統(tǒng)等代謝通路。氨基酸代謝與糖尿病風(fēng)險(xiǎn)相關(guān)[22]。多糖可能通過影響腸道菌群的氨基酸代謝途徑,進(jìn)一步對(duì)宿主發(fā)揮作用。

        圖7 KEGG功能豐度統(tǒng)計(jì)Fig.7 KEGG functional abundance statistics

        2.5 多組學(xué)聯(lián)合分析

        應(yīng)用多組學(xué)聯(lián)合分析,對(duì)NC、T2DM和加糖實(shí)驗(yàn)組的腸道菌群與氣體成分、SCFA和差異性代謝物繪制熱圖(圖8)。玄參多糖組中甘氨酸與Ruminococcus呈正相關(guān);戊酸與Romboutsia、Clostridium_sensu_stricto_1、Oscillospiraceae_UCG-002呈正相關(guān);異丁酸與Alistipes呈正相關(guān);異戊酸與Phascolarctobacterium、Eggerthella、Escherichia-Shigella、Negativibacillus呈正相關(guān);5-氨基戊酸與Phascolarctobacterium、Bilophila呈正相關(guān);尸胺與Dorea呈正相關(guān);H2與Collinsella呈負(fù)相關(guān),與Subdoligranulum、Klebsiella呈正相關(guān);H2S與Dorea、Escherichia-Shigella、Enterococcus正相關(guān),與Bifidobacterium呈負(fù)相關(guān);丙酸與Desulfovibrio呈正相關(guān)。

        圖8 相關(guān)性熱圖分析Fig.8 Correlation heatmap

        黃芪多糖組中甘氨酸與Lactobacillus、Bifidobacterium呈正相關(guān),與E.coli、Escherichia-Shigella呈負(fù)相關(guān);乳酸與Phascolarctobacterium呈負(fù)相關(guān);丙氨酸與Desulfovibrionaceae呈負(fù)相關(guān);異丁酸與Oscillospiraceae_UCG-002呈正相關(guān);5-氨基戊酸與Lactobacillales、Megasphaera呈正相關(guān);戊酸與Clostridium_sensu_stricto_1、Oscillospiraceae_UCG-002、Romboutsia、Megasphaera、unclassified_o__Lactobacillales、Oscillospiraceae_UCG-002呈正相關(guān);丁酸與unclassified_o__Lactobacillales、Megasphaera、Oscillospiraceae_UCG-002呈正相關(guān);L-脯氨酸與Veillonella呈正相關(guān);尸胺與Eggerthella、Escherichia-Shigella、Dorea呈正相關(guān);H2與Subdoligranulum呈正相關(guān),與Lactobacillus呈負(fù)相關(guān);H2S與Lactobacillus呈負(fù)相關(guān),與Escherichia-Shigella呈正相關(guān)。

        蒼術(shù)多糖組中乳酸與Lachnospiraceae呈負(fù)相關(guān);丙酸與Monoglobus呈負(fù)相關(guān);H2與Lactobacillus呈負(fù)相關(guān),與Subdoligranulum、Klebsiella呈正相關(guān);H2S與Subdoligranulum呈正相關(guān);戊酸與Oscillospiraceae_UCG-005、Oscillospiraceae_UCG-002呈正相關(guān);異丁酸與Oscillospiraceae_UCG-002、Bilophila呈正相關(guān),異戊酸與Dorea、Escherichia-Shigella、Phascolarctobacterium、Bilophila、unclassified_f__Desulfovibrionaceae呈正相關(guān);5-氨基戊酸與Phascolarctobacterium、Bilophila、unclassified_f__Desulfovibrionaceae呈正相關(guān);L-酪氨酸與Megamonas呈負(fù)相關(guān);木糖醇與Escherichia-Shigella、Parabacteroides呈正相關(guān);尸胺與Dorea、Eggerthella呈正相關(guān);DL-苯丙氨酸與Streptococcus、Veillonella呈正相關(guān);纈氨酸與Intestinibacter呈正相關(guān);異亮氨酸與Eubacterium_hallii_group、Intestinibacter、Ruminococcus呈正相關(guān);甘氨酸與Monoglobus、Intestinibacter呈正相關(guān);D-焦谷氨酸與Streptococcus呈正相關(guān);鳥氨酸與Rombutzia、Oscillospiraceae_UCG-002呈負(fù)相關(guān)。

        烏梅多糖組中甘氨酸與Anaerostipes、Lactobacillus、Ruminococcus呈正相關(guān);谷氨酸與Bilophila呈負(fù)相關(guān),與Lachnospiraceae_ND3007_group呈正相關(guān);H2S與Enterococcus、Escherichia-Shigella、Parabacteroides呈正相關(guān),與Anaerostipes、Lactobacillus、Blautia、Lachnospira、Faecalibacterium、Lachnoclostridium、Lachnospiraceae_UCG-001 呈負(fù)相關(guān);丙酸與Agathobacter、Lachnospiraceae_UCG-001呈負(fù)相關(guān);L-脯氨酸與Enterococcus、Escherichia-Shigella呈正相關(guān),與Agathobacter、Faecalibacterium、Roseburia、Lachnoclostridium、Lachnospiraceae_UCG-001呈負(fù)相關(guān);尸胺與Escherichia-Shigella呈正相關(guān),與Lachnospiraceae_UCG-001呈負(fù)相關(guān);異丁酸與Bilophila呈正相關(guān);乙酸與Parabacteroides呈正相關(guān),與Lachnospiraceae_UCG-001呈負(fù)相關(guān);異戊酸與Bilophila、Phascolarctobacterium呈正相關(guān);5-氨基戊酸與Bilophila、Phascolarctobacterium呈正相關(guān);H2與Anaerostipes、Lachnospira呈負(fù)相關(guān);纈氨酸與Lachnospiraceae呈負(fù)相關(guān);苯丙氨酸與Lachnospiraceae、Sutterella呈負(fù)相關(guān);焦谷氨酸與Lachnospira、Faecalibacterium、Roseburia、norank_f__Ruminococcaceae呈負(fù)相關(guān),與Bifidobacterium呈正相關(guān);L-酪氨酸與Parabacteroides呈正相關(guān),與Faecalibacterium呈負(fù)相關(guān);戊酸與Oscillospiraceae_UCG-002呈正相關(guān);異亮氨酸與Sutterella呈負(fù)相關(guān)。

        紅棗多糖組中H2S與Dorea、Escherichia-Shigella呈正相關(guān);戊酸與Romboutsia、Ruminococcus、Oscillospiraceae_UCG-002、Megasphaera、unclassified_o__Lactobacillales呈正相關(guān);異丁酸與Oscillospiraceae_UCG-002呈正相關(guān);異戊酸與Phascolarctobacterium、Bilophila呈正相關(guān);尸胺與Dorea呈正相關(guān);5-氨基戊酸與Desulfovibrionaceae、Phascolarctobacterium、Bilophila呈正相關(guān);甘氨酸與Lactobacillus呈正相關(guān);乳酸與Lachnospiraceae、Faecalibacterium、Lachnospira、Ruminococcus_torques_group呈負(fù)相關(guān);谷氨酸與Sutterella呈負(fù)相關(guān)。

        3 討論

        腸道菌群被稱為“第二個(gè)人類基因組”,作為機(jī)體的一種內(nèi)部環(huán)境因素,它能調(diào)節(jié)人體內(nèi)的新陳代謝,起到多種作用[9]。正常生理狀態(tài)下,這些微生物與人體共生,相互依賴且相互制約,保持動(dòng)態(tài)平衡,以此維持人類身體健康。如果出現(xiàn)病理因素將這種平衡打破時(shí),就會(huì)引起糖尿病等諸多疾病。多糖作為腸道菌群的碳源,能夠促進(jìn)有益菌群生長,同時(shí)多糖能夠被腸道菌群碳水化合物活性酶分解后轉(zhuǎn)化為次生代謝物或發(fā)酵產(chǎn)物被機(jī)體吸收,進(jìn)而影響宿主細(xì)胞增殖和凋亡,調(diào)節(jié)免疫反應(yīng),改變宿主代謝[23]。腸道菌群對(duì)多糖的利用降解是多糖活性的基礎(chǔ),因此,以腸道菌群為媒介,探索多糖的作用機(jī)制是研究多糖功能的主要方向之一。

        在本研究中,通過腸道菌群功能預(yù)測(cè)和代謝數(shù)據(jù)揭示了5 種植物多糖能夠調(diào)節(jié)微生物組成,進(jìn)一步影響產(chǎn)氣情況、氨基酸代謝和SCFA代謝通路,與之前有關(guān)報(bào)道一致[24]。盡管許多研究分析了不同人群的腸道菌群與T2DM的關(guān)系[25],但糖尿病人和健康人腸道菌群差異方面的研究結(jié)果不一致。Larsen等[26]發(fā)現(xiàn),T2DM患者中Firmicutes和梭菌類的比例顯著降低;而巴基斯坦的一項(xiàng)基于60 人的數(shù)據(jù)顯示,T2DM患者的Firmicutes、梭菌門和陰性菌門占主導(dǎo)地位[27]。同時(shí)有研究發(fā)現(xiàn)T2DM患者的Firmicutes和Actinobacteriota的相對(duì)豐度均有增加,而Bacteroidota相對(duì)豐度則有降低,條件致病菌和硫酸鹽還原菌富集,雙歧桿菌和擬桿菌等益生菌和丁酸鹽產(chǎn)生菌減少[28]。Le等[29]發(fā)現(xiàn),T2DM患者腸道內(nèi)雙歧桿菌數(shù)量明顯低于健康人,而糞腸球菌數(shù)量高于健康人。另一方面,Doumatey等[30]報(bào)道T2DM患者的豐富度顯著降低,β多樣性指標(biāo)的顯著差異,而Ahmad[27]和Chavez-Carbajal[25]等觀察到α多樣性指數(shù)沒有顯著差異。在本研究中,α多樣性分析T2DM患者菌群豐度與正常人相比無顯著變化,5 種植物多糖干預(yù)T2DM患者菌群豐度也無顯著差異;β多樣性分析5 種植物多糖干預(yù)正常人和T2DM患者的菌群組成在一定程度上有所改變,同時(shí)提高了兩組的Firmicutes豐度、降低了T2DM組Bacteroidota豐度,這些變化被認(rèn)為與通過幫助宿主消化多糖或激活A(yù)MP激活的蛋白激酶加速能量吸收和體重增加有關(guān)[31]。黃芪多糖+T2DM組提高Faecalibacterium、Roseburia、Megamonas、Bifidobacterium、Bacteroides、Akkermansia豐度,降低Ruminococcus豐度。玄參多糖+T2DM組提高Faecalibacterium、Roseburia、Megamonas、Bacteroides豐度。紅棗多糖+T2DM組提高Faecalibacterium、Roseburia、Megamonas、Bifidobacterium、Akkermansia的豐度,降低Ruminococcus豐度。烏梅多糖+T2DM組提高Faecalibacterium、Roseburia、Megamonas、Blautia菌的豐度。蒼術(shù)+T2DM組提高Faecalibacterium、Roseburia、Megamonas、Bifidobacterium、Akkermansia的豐度。Bifidobacterium、Bacteroides、Faecalibacterium為腸道益生菌,Roseburia和Faecalibacterium是丁酸產(chǎn)生菌 。Roseburia可以改善葡萄糖耐受性[33]。Roseburia、Faecalibacterium、Akkermansia和Blautia與T2DM呈負(fù)相關(guān),而Ruminococcu與T2DM呈正相關(guān)[9]。乳酸桿菌可能參與糖尿病發(fā)展中的慢性炎癥,與葡萄糖、糖化血紅蛋白呈顯著正相關(guān)[28]。Akkermansia可能是一種潛在的治療糖尿病的益生菌,由于其在黏蛋白降解過程中的特殊表現(xiàn),已成為腸道與宿主細(xì)胞之間的黏膜界面上的關(guān)鍵生物,與炎癥性腸病、肥胖、結(jié)腸炎、T2DM和其他代謝紊亂有關(guān)[21]。

        腸道菌群能夠通過代謝產(chǎn)生CO2、H2、CH4、H2S等氣體介質(zhì)對(duì)宿主健康產(chǎn)生影響。CO2和H2是微生物發(fā)酵碳水化合物過程中產(chǎn)生的主要?dú)怏w,CH4則是由大腸中古生菌代謝CO2和H2產(chǎn)生。H2S和含硫微量氣體是還原硫酸鹽和亞硫酸鹽的硫還原細(xì)菌發(fā)酵蛋白質(zhì)產(chǎn)生的[34]。腸道細(xì)菌代謝產(chǎn)生氣體的同時(shí)也會(huì)消耗氣體,H2主要被產(chǎn)甲烷菌、產(chǎn)乙酸菌和硫酸鹽還原菌所利用;H2和CO2被產(chǎn)乙酸細(xì)菌利用產(chǎn)生乙酸,還能夠被產(chǎn)甲烷菌利用產(chǎn)生CH4。H2是碳水化合物發(fā)酵的主要?dú)怏w標(biāo)記物,用于診斷碳水化合物吸收不良或小腸細(xì)菌過度生長,H2S也是蛋白質(zhì)發(fā)酵的一個(gè)潛在有用的生物標(biāo)志物。H2S可以直接通過中樞神經(jīng)調(diào)節(jié)腸道蠕動(dòng)。一般認(rèn)為,腸道微生物群產(chǎn)生的H2很容易通過飲食調(diào)節(jié),CH4的生成則更強(qiáng)烈地依賴于微生物群組成[17]。相比較于NC組,T2DM患者腸道菌群產(chǎn)氣體積減低,添加黃芪、蒼術(shù)、玄參、紅棗多糖能夠提高腸道菌群的產(chǎn)氣含量。烏梅多糖能夠降低各組的H2S產(chǎn)量,研究表明利用膳食纖維干預(yù)腸道菌群降解H2S有助于調(diào)節(jié)宿主糖代謝、改善T2DM 。

        腸道菌群的改變可以調(diào)節(jié)SCFA和氨基酸的含量,改善腸道內(nèi)環(huán)境,預(yù)防和治療糖尿病[36]。乙酸、丙酸和丁酸是腸道菌群利用碳水化合物發(fā)酵產(chǎn)生的主要代謝產(chǎn)物,是腸上皮細(xì)胞的重要能量來源,而屬于支鏈SCFA的異丁酸和異戊酸主要由分支氨基酸和到達(dá)結(jié)腸時(shí)未被消化的蛋白質(zhì)被腸道微生物發(fā)酵利用所產(chǎn)生[37]。乙酸和丙酸主要由Bacteroidota產(chǎn)生,而大量的丁酸來自Firmicutes 。乙酸是含量最多的SCFA,作為能量來源參與機(jī)體代謝,它能到達(dá)外周組織,尤其是脂肪和肌肉,用于膽固醇代謝和脂肪合成,影響人體食欲。腸道微生物產(chǎn)生的丁酸可以改善機(jī)體的胰島素反應(yīng),進(jìn)一步促進(jìn)免疫調(diào)節(jié),具有抗炎和抗癌作用。丙酸能夠調(diào)節(jié)膽固醇的合成,但是丙酸異??赡軙?huì)增加T2DM的風(fēng)險(xiǎn),但是丙酸與糖尿病風(fēng)險(xiǎn)之間的因果關(guān)系仍需要進(jìn)一步的研究[33]。擬桿菌屬和雙歧桿菌屬能夠產(chǎn)生乙酸和丁酸,乙酸和丁酸與對(duì)應(yīng)的受體結(jié)合,并誘導(dǎo)下游的胰高血糖素樣肽-1、胰高血糖素樣肽-2、酪酪肽的分泌,通過對(duì)胰腺功能以及胰島素釋放的影響,最終發(fā)揮降低血糖的作用[39]。此外,本研究數(shù)據(jù)也與之前的研究相符合,SCFA與產(chǎn)氣之間可能存在某種平衡[17]。5 種多糖發(fā)酵導(dǎo)致較多還原性丁酸的產(chǎn)生,也導(dǎo)致較多的還原劑H2的產(chǎn)生,增加了總體產(chǎn)氣量。多糖體外發(fā)酵影響T2DM患者腸道菌群氨基酸通路,丙氨酸、精氨酸、異亮氨酸、脯氨酸、酪氨酸、纈氨酸和己糖水平與T2DM風(fēng)險(xiǎn)正相關(guān),并且T2DM可能會(huì)改變患者體內(nèi)的酪氨酸和丁酸水平,調(diào)節(jié)酪氨酸代謝和丁酸的產(chǎn)生可能是改善T2DM預(yù)防的一種潛在方法[40]。苯丙氨酸代謝與胰島素抵抗有關(guān),可能增加T2DM的風(fēng)險(xiǎn)[41]。在T2DM患者中,腸道菌群細(xì)胞膜對(duì)糖和支鏈氨基酸的轉(zhuǎn)運(yùn)更為活躍,但丁酸的合成減少,與促炎反應(yīng)直接相關(guān)的氧化應(yīng)激反應(yīng)激增。植物多糖可以通過糾正腸道菌群失調(diào)恢復(fù)腸道微生物生態(tài)、促進(jìn)產(chǎn)SCFA微生物的富集、提高SCFA水平 。黃芪多糖、蒼術(shù)多糖和玄參多糖提高了T2DM組的乙酸、丁酸、丙酸水平。

        4 結(jié)論

        基于T2DM患者腸道菌群和植物多糖體外發(fā)酵模型,分析5 種植物多糖對(duì)微生物群落結(jié)構(gòu)及其代謝圖譜的影響。本研究結(jié)果可以篩選得到更具有糖尿病功能食品潛力的植物多糖。在氣體成分方面,黃芪多糖、蒼術(shù)多糖、玄參多糖和紅棗多糖均能夠提高T2DM組的總氣體介質(zhì)含量以及CO2和CH4含量,降低H2S含量,而烏梅多糖降低了總氣體介質(zhì);在SCFA方面,黃芪多糖、蒼術(shù)多糖、玄參多糖調(diào)節(jié)T2DM組總酸的含量更為顯著;在代謝物質(zhì)方面,5 種多糖均能夠上調(diào)氨基酸等有益代謝物質(zhì);在腸道菌群方面,5 種多糖均能夠調(diào)節(jié)腸道菌群結(jié)構(gòu),增加有益菌的豐度。綜合結(jié)果來看,蒼術(shù)多糖、玄參多糖和黃芪多糖更具有發(fā)展為糖尿病功能食品的可能性。參照最新的藥食同源名錄,發(fā)現(xiàn)黃芪在特定的范圍和劑量內(nèi)可作為藥食兩用,蒼術(shù)和玄參也均在可用于保健食品的中藥名單中,因此這3 種植物多糖在功能性食品開發(fā)方面具有廣闊前景,但是否能夠真正開發(fā)為功能食品,還需進(jìn)一步進(jìn)行動(dòng)物實(shí)驗(yàn)及臨床實(shí)驗(yàn)。本研究為植物多糖對(duì)慢性代謝類疾病產(chǎn)品的開發(fā)和利用提供了理論基礎(chǔ)。

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