張存環(huán), 劉 朗, 彭 雄, 郄杏桃, 陳茂華

(西北農林科技大學植物保護學院, 農業(yè)農村部西北黃土高原作物有害生物綜合治理重點實驗室,旱區(qū)作物逆境生物學國家重點實驗室, 陜西 楊凌 712100)

昆蟲電壓門控的鈉離子通道(voltage-gated sodium channel, VGSC)(簡稱“鈉通道”)是擬除蟲菊酯等殺蟲劑的作用靶標，鈉通道基因突變是導致昆蟲對擬除蟲菊酯產生抗性的主要原因(Lietal., 2013; Rinkevichetal., 2013; Dongetal., 2014)。脊椎動物鈉通道由1個α亞基和1個或者幾個β亞基組成，α亞基能夠獨立行使鈉通道的基本功能，因此，一般提到的鈉通道基因即指α亞基的編碼基因，β亞基為功能輔助性亞基，在調節(jié)鈉通道的功能中有輔助作用(Catterall, 2012)。以往的研究認為，昆蟲的鈉通道和其他真核生物鈉通道相似，由D-Ⅰ, D-Ⅱ, D-Ⅲ和D-Ⅳ 4個結構域組成，由1個基因編碼，4個結構域都由S1-S6 6個跨膜螺旋(transmembrane helix, TM)組成，即鈉通道為4×6 TM結構。本研究組研究發(fā)現(xiàn)，禾谷縊管蚜Rhopalosiphumpadi鈉通道與其他類群的昆蟲不同，其結構域D-Ⅱ和D-Ⅲ之間分開，形成2個獨立的基因(RpNavH1和RpNavH2)，即其鈉通道為2×6 TM+2×6 TM結構， RpNavH1的D-Ⅰ-D-Ⅱ結構域與黑腹果蠅Drosophilamelanogaster鈉通道的有約64%的氨基酸序列一致性，RpNavH2的D-Ⅲ-D-Ⅳ與黑腹果蠅鈉通道的有約63%的氨基酸序列一致性(Zuoetal., 2016a)。最新的研究發(fā)現(xiàn)，赤擬谷盜Triboliumcastaneum體內也存在兩個鈉離子通道基因，鈉離子通道基因不僅是擬除蟲菊酯類殺蟲劑的作用靶標，而且和昆蟲的發(fā)育相關(Qianetal., 2021)。因此，深入開展鈉離子通道相關的研究，對于害蟲的抗藥性治理和農藥新靶標的發(fā)現(xiàn)具有重要的意義。

昆蟲體內沒有鈉通道β亞基，但在昆蟲中發(fā)現(xiàn)了與β亞基功能相似的鈉通道輔助亞基TipE, TEH1, TEH2, TEH3和TEH4。關于昆蟲鈉通道輔助亞基功能研究較少，主要集中在黒腹果蠅(Derstetal., 2006; Wangetal., 2013)、美洲大蠊Periplanetaamericana(Bourdinetal., 2015)和西方蜜蜂Apismellifera(Gosselin-Badaroudineetal., 2015)等昆蟲。本研究組在前期的研究工作中克隆了禾谷縊管蚜的鈉通道輔助亞基基因RpTipE,RpTEH1,RpTEH2,RpTEH3和RpTEH4，發(fā)現(xiàn)亞致死劑量的擬除蟲菊酯能影響這5個鈉通道輔助亞基基因的表達，推測鈉通道輔助亞基在調節(jié)禾谷縊管蚜鈉通道門控中可能有重要作用(林芳菲, 2017)。

禾谷縊管蚜屬半翅目(Hemiptera)蚜科(Aphididae)，是重要的麥類作物害蟲(Blackman and Eastop, 2007)，每年給小麥生產造成重大經濟損失(Wangetal., 2020; Gongetal., 2021)。擬除蟲菊酯類殺蟲劑長期應用在禾谷縊管蚜的防治之中，禾谷縊管蚜對擬除蟲菊酯類殺蟲劑產生了高水平抗性(Wangetal., 2020; Gongetal., 2021)。禾谷縊管蚜鈉通道結構與果蠅鈉通道結構不同，其鈉通道輔助亞基與果蠅鈉通道輔助亞基序列差異較大(Zuoetal., 2016a; 林芳菲, 2017)，禾谷縊管蚜鈉通道輔助亞基的功能研究還未見報道。因此，本研究分析了禾谷縊管蚜鈉通道輔助亞基對鈉通道功能及高效氯氟氰菊酯敏感性的影響，研究結果對于闡明禾谷縊管蚜鈉通道結構的功能特性以及分析該蟲對擬除蟲菊酯類殺蟲劑的抗藥性機制具有重要意義。

1 材料與方法

1.1 供試材料

1.1.1供試動物：供試禾谷縊管蚜為實驗室內飼養(yǎng)的敏感種群，置于溫度22±1℃，相對濕度70%±5%，光周期16L∶8D的人工培養(yǎng)箱；供試性成熟的雌性非洲爪蟾Xenopuslaevis購于中國科學院生態(tài)環(huán)境研究中心。

1.1.2菌種、質粒、試驗動物及培養(yǎng)基：大腸桿菌EscherichiacoliStble3購自廣州易錦生物技術有限公司；攜帶果蠅鈉通道基因DmNav22和鈉通道輔助亞基基因DmTipE編碼序列的質粒由西北農林科技大學胡兆農教授惠贈，表達載體為pGH19；大腸桿菌培養(yǎng)基為LB液體或固體培養(yǎng)基。

1.2 主要試劑及儀器

實驗用主要試劑包括Trizol-RNA抽提試劑盒(天根生化科技有限公司)、反轉錄cDNA合成試劑盒(Promega公司)、實時熒光定量PCR試劑盒(Roche公司)、凝膠膠回收試劑盒和質粒小提試劑盒(Omega公司)、T7 RiboMAXTMExpress RNAi System 試劑盒(Promega公司)、限制性內切酶(NotⅠ,NheⅠ,KpnⅠ,BamHⅠ,EcoRⅠ和XbaⅠ)(TaKaRa公司)、Message Machine?Kit試劑盒(Ambion公司)、96%高效氯氟氰菊酯原藥(中國鹽城農博生物技術有限公司)。試驗用ND-96膠原處理和沖洗溶液、ND-96細胞培養(yǎng)液、ND-96細胞記錄液培養(yǎng)液的配制參照文獻(Qieetal., 2022)。爪蟾卵母細胞使用ND-96培養(yǎng)液培養(yǎng)，其組分(1 L)為：NaCl (96 mmol/L) 5.610 g, KCl (2.0 mmol/L) 0.149 g, MgCl2(1.0 mmol/L) 0.203 g, CaCl2(1.8 mmol/L) 0.265 g, HEPES (5.0 mmol/L) 1.192 g, Na-pyruvate (2.5 mmol/L) 0.275 g, Theophyline (0.5 mmol/L) 0.090 g溶解于滅菌的ddH2O，定容至1 L。溶解后入2 mol/L NaOH調節(jié)pH至7.5，過0.22 μm濾膜除菌，并加入100 mg/L慶大霉素4℃保存。

主要儀器包括Bio-Rad iQ5熒光定量PCR儀(美國Bio-Rad公司)、Nanoject II Autu-Nanoliter Injector 顯微注射儀(美國WPI公司)、微電極拉制儀(型號：P-97, 美國Sutter公司)cRNA顯微注射儀(型號：Nanoliter2000, 美國Sutter公司)、微電極放大器和數(shù)模轉換器雙電極電壓鉗系統(tǒng)(型號：AXOCLAMP900A, 美國Molecular Devices Corporation公司)。

1.3 引物設計

根據(jù)本研究組之前獲得的禾谷縊管蚜鈉通道及其輔助亞基基因序列(林芳菲, 2017)，利用Primer Premier 5.0設計RT-PCR引物，以β-actin作為內參基因。根據(jù)之前獲得的cDNA序列，在http:∥www.flyrnai.org/cgi-bin/RNAi_find_primers.pl 網站設計各基因RNA干擾(RNAi)所用引物，并將T7轉錄啟動子序列加到靶標區(qū)域兩端，引物序列見表1。根據(jù)鈉通道輔助亞基基因的編碼區(qū)序列以及表達載體的可用酶切位點，分別設計 1對帶有酶切位點的特異性引物，引物序列見表2。

表1 禾谷縊管蚜鈉通道基因和鈉通道輔助亞基基因RpTipE的熒光定量PCR及dsRNA合成引物Table 1 Primers used for real-time quantitative PCR and dsRNA synthesis of sodium channel genes and sodium channel auxiliary subunit gene RpTipE of Rhopalosiphum padi

表2 禾谷縊管蚜鈉通道輔助亞基基因表達所用引物Table 2 Primers for gene expression analysis of sodium channel auxiliary subunit genes of Rhopalosiphum padi

1.4 基因RNAi 和殺蟲劑生物測定

RpNavH1,RpNavH2和RpTipE基因的RNAi：根據(jù)本實驗室前期的研究和預備實驗結果，分別注射dsGFP、ddH2O和緩沖液作對照時，目標基因在3種處理條件下表達水平無顯著差異，本研究以注射dsGFP(陰性對照)和不注射(空白對照)作為對照。參照Zuo等(2016a)的RNAi方法，隨機取禾谷縊管蚜無翅成蟲，分別注射dsRpNavH1, dsRpNavH2, dsRpTipE和dsGFP，每種dsRNA注射100頭蚜蟲，根據(jù)本研究組前期的研究和預備實驗結果，dsRpNavH1在注射后24 h干擾效率相對最高時，dsRpNavH2在注射后72 h干擾效率最高時(Zuoetal., 2016a)，dsRpTipE在注射后24, 48和72 h時，分別挑取存活的成蚜10頭，提取總RNA，進行下一步基因的表達量分析。 實驗重復3次。

殺蟲劑生物測定：隨機取禾谷縊管蚜無翅成蟲，分別注射dsRpTipE和dsGFP，每種dsRNA注射100頭蚜蟲，空白對照不注射dsRNA，注射后72 h時收集成活蚜蟲40頭，使用LC50(1.667 mg/L)濃度的高效氯氰菊酯(Zuoetal., 2016b)和0.1% Triton-X 100水溶液(對照)分別處理20頭成活的蚜蟲，處理后24 h時記錄死亡結果。死亡判斷標準：以足不動者視為死亡。實驗重復3次。

1.5 實時熒光定量PCR

取純化后的1.4節(jié)提取的總RNA 4 μL和1 μL Oligo(dT)18(500 μg/mL)加入200 μL離心管中，參照Zuo等(2016a)的方法合成cDNA，合成cDNA的反應體系還包括 4 μL 5×Reaction Buffer, 2.5 μL 25 mmol/L MgCl2,1 μL 10 mmol/L PCR Nucleotide Mix,6 μL Nuclease-Free Water, 20 U Ribonuclease Inhibitor和200U GoScriptTM反轉錄酶。將稀釋10倍的cDNA作為模板，制作禾谷縊管蚜RpNavH1,RpNavH2,RpTipE和β-actin的標準曲線，確定擴增效率。每個處理都包括3個生物學重復以及3個技術重復，以ddH2O為模板作為空白對照，進行qRT-PCR分析，PCR反應體系(20 μL): SYBR Green Supermix 10 μL, 上下游引物(10 μmol/L)各0.8 μL, cDNA 模板1 μL, 加ddH2O補足至20 μL。PCR反應程序: 95℃ 10 min; 95℃ 15 s, 58℃ 15 s, 72℃ 20 s, 共40 個循環(huán)。PCR 反應結束后，通過熔解曲線判斷其特異性。所用引物的擴增效率均接近100%，熔解曲線均為單峰，對應的標準曲線的相關性為0.995以上，根據(jù)2-ΔΔCt法計算目標基因的相對表達量。

1.6 異源表達與電生理實驗

1.6.1表達載體的構建：利用帶限制性酶切位點的特異性引物，分別以構建好的測序正確pMD-Teasy/RpTipE和pMD-Teasy/RpTEH2-RpTEH4質粒為模板進行PCR擴增，將PCR產物與表達載體pGH19同時用限制性內切酶進行雙酶切，酶切產物進行膠回收，回收產物進行連接轉化涂平板，挑選單克隆置于液體培養(yǎng)基中搖晃培養(yǎng)后提取質粒，經雙酶切鑒定正確后，送上海生工生物測序有限公司鑒定。

1.6.2環(huán)狀質粒線性化：將上述質粒分別利用NotⅠ和NheⅠ限制性內切酶線性化2 h，線性化質粒電泳檢測并純化后，用作體外轉錄合成cRNA的模板，酶切體系參照說明書。

1.6.3cRNA 的制備及純化：純化過的線性化RpTipE和RpTEH2-RpTEH4質粒用T7體外轉錄試劑盒合成cRNA，操作步驟參照說明書。轉錄后的RpTipE和RpTEH2-RpTEH4 cRNA用氯化鋰沉淀法進行純化。用分光光度計測定濃度以及A260/A280，分裝保存于-80℃超低溫冰箱。

本實驗所用禾谷縊管蚜鈉通道輔助亞基基因及果蠅鈉通道基因DmNav22和DmTipE的質粒和線性化質粒及cRNA的質量濃度見表3。

表3 禾谷縊管蚜鈉通道輔助亞基基因及果蠅鈉通道基因DmNav22和鈉通道輔助亞基基因DmTipE的質粒和線性化質粒及cRNA的質量濃度和A260/A280值Table 3 Mass concentrations and A260/A280 values of the plasmids, linearized plasmids and cRNAs of sodium channel auxiliary subunit genes of Rhopalosiphum padi, and sodium channel gene DmNav22 and sodium channel auxiliary subunit gene DmTipE of Drosophila

1.6.4爪蟾的解剖以及其卵母細胞的酶解與篩選：將雌性非洲爪蟾置于配制好的2 g/L的三卡因溶液中，時間20～30 min，待爪蟾麻醉不動后將其取出置于冰上，在其腹部下方用手術刀切一個小口，輕輕拉出卵巢瓣，用手術剪剪下3～5個卵巢瓣，將其置于盛有洗液的培養(yǎng)皿中。縫合爪蟾的肌肉層與表皮層，后將其放入含有抗生素的淺水中(頭部露出水面)待其蘇醒。18℃條件下，將卵母細胞置于含1 mg/mL IA型膠原酶的卵母細胞洗滌液中消化30 min左右。將酶解后的卵母細胞在洗滌液中多次清洗后保存于卵母細胞培養(yǎng)液中。在顯微鏡下挑出動物極與植物極界限分明，發(fā)育階段處于V-VI期且表面光滑的卵母細胞，并用鑷子剝掉濾泡膜。將處理好的卵母細胞轉移置干凈的盛有培養(yǎng)液的培養(yǎng)皿里，并于18℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。

1.6.5cRNA的顯微注射：將DmNav22的cRNA分別與DmTipE,RpTipE,RpTEH2-RpTEH4的cRNA等物質量混合后，以石蠟油為載體，吸入針頭，注射部位在爪蟾卵母細胞的植物性半球或接近“赤道區(qū)”，以避免對核的損傷。以單獨注射DmNav22 cRNA為對照，注射后的卵母細胞置于細胞培養(yǎng)液中，在18℃恒溫培養(yǎng)中培養(yǎng)，每天更換培養(yǎng)液，且在12～18 h后用于電流檢測。

1.6.6電壓鉗記錄：實驗過程電流記錄方法參照相關文獻(Duetal., 2009)。利用雙電極電壓鉗系統(tǒng)測定昆蟲鈉通道電流。將拉制好玻璃微電極內灌入含瓊脂粉的3 mol/L KCl溶液，使其電極電阻小于0.5 MΩ，卵母細胞置于裝有記錄溶液的記錄槽中，將微電極接到電壓鉗儀器探頭上，使用微操動儀分別將電流電極與電壓電極同時插入細胞中，設置鉗制電壓為-120 mV，以5 mV的步階從-120 mV去極化至-10 mV，時間為100 ms，再給予一組持續(xù)20 ms的-10 mV測試脈沖，室溫下記錄電流。

1.7 數(shù)據(jù)分析

運用軟件SPSS 20.0對禾谷縊管蚜不同處理條件下的死亡率及各基因在不同處理條件下的相對表達量數(shù)據(jù)進行統(tǒng)計分析。兩組間的比較采用Student氏t檢驗進行分析，差異顯著性為P<0.05，數(shù)據(jù)以平均值±標準誤表示。

2 結果

2.1 干擾鈉通道基因RpNavH1和RpNavH2對其輔助亞基基因表達量的影響

本實驗室前期的研究表明，RpNavH1在注射dsRNA后24 h時的干擾效率相對最高，RpNavH2在注射dsRNA后72 h時的干擾效率最高(Zuoetal., 2016a)。本研究分析注射dsRpNavH1后24 h時的禾谷縊管蚜來分析鈉通道輔助亞基基因在處理組(注射dsRpNavH1)與對照組(注射dsGFP)間的表達差異。結果表明，干擾RpNavH1能夠顯著降低RpTEH1(P=0.003),RpTEH2(P=0.021),RpTEH3(P=0.024)以及RpTipE(P=0.002)(t檢驗) 4個鈉通道輔助亞基基因的表達量，而RpTEH4在處理組和對照組之間的表達量沒有顯著差異(P=0.076)(圖1: A)。本研究分析注射dsRpNavH2和dsGFP后72 h時的禾谷縊管蚜來分析干擾RpNavH2對鈉通道輔助亞基基因表達量的影響，結果表明，RNAi干擾RpNavH2顯著降低RpTEH1(P=0.001),RpTEH2(P=0.001),RpTEH3(P=0.005),RpTEH4(P=0.003)和RpTipE(P=0.007)的表達(圖1: B)。

圖1 顯微注射dsRNA敲降鈉通道基因RpNavH1(A)和RpNavH2(B)后禾谷縊管蚜成蚜5個鈉通道輔助亞基基因的相對表達量Fig. 1 Relative expression levels of five sodium channel auxiliary subunit genes in Rhopalosiphum padi adults after knockdown of sodium channel genes RpNavH1 (A) and RpNavH2 (B) by microinjection of dsRNAA: 注射后24 h (At 24 h post injection); B: 注射后72 h (At 72 h post injection). 圖中數(shù)據(jù)為平均值±標準誤；柱上符號表示兩組間的差異顯著性(*P<0.05; **P<0.01; nsP>0.05)(Student氏t檢驗)。圖2同。Data in the figure are mean±SE. Symbols above bars indicate significance of difference between two groups (*P<0.05; **P<0.01; nsP>0.05) (Student′s t-test). The same for Fig. 2.

2.2 RNAi干擾RpTipE對禾谷縊管蚜的鈉通道及其輔助亞基基因表達量以及高效氯氟氰菊酯敏感性的影響

以往的報道表明，TipE是昆蟲鈉通道最重要的輔助亞基(Derstetal., 2006; Wangetal., 2013)。本研究首先利用RNAi技術初步研究禾谷縊管蚜鈉通道輔助亞基基因RpTipE的功能。為了確定的RNAi效率，通過qRT-PCR技術分析處理組(注射dsRpTipE)和對照組(注射dsGFP)的禾谷縊管蚜RpTipE在注射后不同時間的表達情況。在注射dsRpTipE后24 h時，與對照組相比，RpTipE的相對表達量降低了14%(P=0.049)；在注射dsRpTipE后48 h時，相對表達量下降到39%(P=0.008)；在注射dsRpTipE后72 h時，RpTipE的干擾效率降低了24%(P=0.014)(圖2: A)。

圖2 顯微注射dsRNA敲降RpTipE對禾谷縊管蚜成蚜的鈉通道及其鈉通道輔助亞基基因表達量以及高效氯氟氰菊酯敏感性的影響Fig. 2 Effects of knockdown of RpTipE by microinjection of dsRNA on the expression levels of genes of sodium channels and their auxiliary subunits in Rhopalosiphum padi adults and the susceptibility of these adults to beta-cypermethrinA: 注射dsRpTipE后不同時間對RpTipE的RNA干擾效率RNAi efficiency for RpTipE at different time post injection of dsRpTipE; B: 注射dsRpTipE后48 h禾谷縊管蚜成蚜體內鈉通道及其輔助亞基基因的相對表達量Relative expression levels of genes of sodium channels and their auxiliary subunits in R. padi adults at 48 h post injection of dsRpTipE; C: 注射dsRpTipE后48 h用LC50濃度的高效氯氟氰菊酯處理禾谷縊管蚜成蚜的死亡率Mortality of R. padi adults treated with LC50concentration of beta-cypermethrin at 48 h post injection of dsRpTipE. Non-injection: 未注射的空白對照Uninjected blank control.

本研究分別取注射dsRpTipE和dsGFP后48 h時的禾谷縊管蚜分析干擾RpTipE對鈉通道基因及其同源輔助亞基基因RpTEH1-RpTEH4表達量的影響。結果表明，與對照組相比，RNAi干擾RpTipE顯著降低鈉通道基因RpNavH1(P=0.012)和RpNavH2(P=0.042)以及輔助亞基基因RpTEH1(P=0.009),RpTEH2(P=0.042),RpTEH3(P=0.018)和RpTEH4(P=0.014)的表達量(圖2: B)。

生物測定結果表明，用LC50濃度的高效氯氰菊酯處理后，注射dsRpTipE后48 h時的禾谷縊管蚜成蚜死亡率顯著低于注射dsGFP(P=0.011)和未注射的空白對照組(P=0.028)(圖2: C)。

2.3 禾谷縊管蚜鈉通道輔助亞基對鈉通道的門控性質影響

本研究采用雙電極電壓鉗技術研究了禾谷縊管蚜5個鈉通道輔助亞基的輔助功能，由于禾谷縊管蚜鈉離子通道目前不能在體外真核表達，本研究利用昆蟲鈉通道功能研究中常用的果蠅鈉通道DmNav22研究禾谷縊管蚜鈉通道輔助亞基的功能，并使用果蠅鈉通道輔助亞基DmTipE進行比較分析。將DmNav22的cRNA單獨注射到非洲爪蟾卵母細胞及將DmNav22的cRNA分別與DmTipE,RpTEH2,RpTEH3,RpTEH4和RpTipE的cRNA等物質量混合注射到爪蟾卵母細胞進行表達，結果如圖3所示。當注射DmNav22的cRNA到爪蟾卵母細胞時，檢測到很小的Na+電流；而當DmNav22的cRNA分別與等物質量的DmTipE,RpTEH2,RpTEH3,RpTEH4和RpTipE的cRNA共同注射爪蟾卵母細胞后，所檢測到的Na+電流相對于單獨注射DmNav22的cRNA所檢測的Na+電流都明顯變大。

圖3 雙電壓鉗技術檢測非洲爪蟾卵母細胞單獨注射DmNav22 cRNA(A)及DmNav22 cRNA分別與鈉通道輔助亞基基因DmTipE (B), RpTEH2 (C), RpTEH3 (D), RpTEH4 (E)和RpTipE (F)的cRNA共注射時激發(fā)的Na+電流Fig. 3 Na+ currents evoked by DmNav22 cRNA (A) injected alone and DmNav22 cRNA co-injected with cRNAs of sodium channel auxiliary subunit genes DmTipE (B), RpTEH2 (C), RpTEH3 (D), RpTEH4 (E) and RpTipE (F), respectively, in Xenopus laevis oocytes detected by two-electrode voltage clamp technology

3 討論

昆蟲鈉通道輔助亞基與哺乳動物鈉通道β亞基在系統(tǒng)發(fā)育樹中分為兩大支，昆蟲TipE與β亞基的氨基酸序列同源性較低。哺乳動物鈉通道β亞基(β1-β4)被認為是離子通道的調節(jié)原件和細胞粘附分子，能調節(jié)鈉離子通道的表達和通道門控性質，并且還調節(jié)細胞粘附與遷移(Isom, 2002; Brackenburyetal., 2013)。昆蟲中尚未發(fā)現(xiàn)哺乳動物β亞基的直系同源蛋白，昆蟲TipE及其同源亞基具有與哺乳動物鈉通道β亞基相似的功能(Derstetal., 2006; Wangetal., 2013, 2015)，由于昆蟲鈉通道輔助亞基與哺乳動物鈉通道輔助亞基蛋白的相似性很低，昆蟲鈉通道輔助亞基可能作為靶標開發(fā)新型對人和哺乳動物安全的新型殺蟲劑。

關于昆蟲鈉通道輔助亞基功能研究的文獻也較少。Warmke等(1997)研究表明，果蠅5個鈉通道輔助亞基在調控果蠅鈉通道激活與失活過程中的功能不同。TEH1在超極化方向上能改變依賴電壓的快速失活，并延緩黒腹果蠅鈉離子通道從快速失活中恢復(Derstetal., 2006)但TipE或TEH1-4調節(jié)門控修飾程度是否與它們的變體特異性相關尚不清楚(Bourdinetal., 2015)。將黑腹果蠅鈉通道基因分別與其5個輔助亞基基因在非洲爪蟾卵母細胞中共表達后發(fā)現(xiàn)，TipE能將黑腹果蠅鈉電流提高約20倍，TEH1能將鈉電流提高約30倍，TEH2和TEH3能將鈉電流提高5～10倍，而TEH4不能顯著提高鈉電流(Derstetal., 2006)；西方蜜蜂鈉通道輔助亞基TipE和TEH均增加了鈉通道的表達，其TipE, TEH1和TEH2沒有改變或增加鈉通道穩(wěn)態(tài)失活，而TEH3和TEH4不僅阻礙通道進入失活狀態(tài)，也阻礙了鈉通道的激活(Gosselin-Badaroudineetal., 2015)。Bourdin等(2015)研究發(fā)現(xiàn)，美洲大蠊TipE比果蠅TipE更有效地促進DmNav1-1引發(fā)的Na+電流，表明美洲大蠊TipE可能具有更強大的伴侶特性。本研究發(fā)現(xiàn)，將禾谷縊管蚜鈉通道輔助亞基基因RpTipE以及RpTEH2,RpTEH3和RpTEH4分別與果蠅鈉通道DmNav22在爪蟾卵母細胞中共表達時，均提高了果蠅DmNav22的鈉電流(圖3)，表明禾谷縊管蚜鈉通道雖然具有獨特的異源二聚體結構，但其鈉通道輔助亞基仍和其他鈉通道昆蟲輔助亞基一樣，能夠提高鈉通道的鈉電流，推測禾谷縊管蚜鈉通道輔助亞基TipE可能參與調節(jié)鈉通道的門控性質。

靶標基因的表達量的變化可以使多聚體靶標的亞基組成發(fā)生變化，進而改變了殺蟲劑結合靶標的能力(Zhangetal., 2015; Chenetal., 2017)。Chen等(2017)研究表明，煙堿型酰膽堿受體β1亞基的低水平表達與棉蚜Aphisgossypii的吡蟲啉抗性相關。Zhang等(2015)研究表明，當RNAi煙堿型乙酰膽堿受體α8亞基后，褐飛虱Nilaparvatalugens對吡蟲啉的敏感性降低，α8亞基的下調與吡蟲啉抗性相關。Zuo等(2016a)研究表明，干擾禾谷縊管蚜兩個鈉通道基因后，禾谷縊管蚜對高效氯氰菊酯的敏感性降低。Tian等(2018)研究也表明在具有完整鈉離子通道結構域的甜菜夜蛾Spodopteraexigua中，鈉通道基因在抗性品系中的表達量顯著低于敏感品系。Qian等(2021)研究表明， RNAi干擾赤擬谷盜的兩個鈉通道基因TcNav1和TcNav2后，顯著降低該蟲對溴氰菊酯的敏感性。本研究分別干擾了禾谷縊管蚜鈉通道基因RpNavH1和RpNavH2后，鈉通道輔助亞基基因的表達量都下調(圖1)；干擾RpTipE后，禾谷縊管蚜鈉通道基因RpNavH1和RpNavH2的表達量均顯著降低(圖2)。黑腹果蠅和西方蜜蜂蠅鈉離子通道5個輔助亞基在調控果蠅鈉通道門控性質中具有不同的功能，但是昆蟲鈉通道輔助亞基之間的相關影響目前還缺乏研究，禾谷縊管蚜鈉通道基因及其輔助亞基因之間的相互影響模式也有待進一步研究。本研究RNAi干擾RpTipE后，禾谷縊管蚜經高效氯氟氰菊酯處理后的死亡率降低(圖2)，這可能是因為干擾RpTipE后，鈉通道基因以及其他鈉通道輔助亞基基因的表達量降低，而高效氯氟氰菊酯的作用靶標為鈉通道，作用靶標的減少導致高效氯氟氰菊酯的效果降低。