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        鈾污染水體中耐性微生物的鑒定及其研究

        2022-12-13 07:57:32王笠成伍世杰胡雨婷曹藝川
        關(guān)鍵詞:鈾酰耐性回歸方程

        王笠成 伍世杰 胡雨婷 曹藝川 程 馨

        (成都理工大學(xué)生態(tài)環(huán)境學(xué)院,四川 成都 610059)

        鈾是現(xiàn)代核工業(yè)過(guò)程中所需要的重要原料,由于其是一種具有化學(xué)毒性和放射性的核素[1],如果不進(jìn)行治理將引起一系列環(huán)境問題[2],相關(guān)生物也會(huì)受到其放射性照射的危害。鈾在水環(huán)境中的價(jià)態(tài)主要是U(IV)和U(VI),U(VI)溶解性較好,易造成嚴(yán)重的水體污染[3]。

        利用微生物對(duì)重金屬污染水體處理具有高效性、高性價(jià)比、低二次影響等優(yōu)點(diǎn),主要通過(guò)微生物對(duì)水體中鈾的吸附作用,發(fā)生生物還原、礦化等反應(yīng),改變其物化性質(zhì),并降低遷移率。該方法關(guān)鍵在于耐性微生物篩選,培養(yǎng)馴化環(huán)境適應(yīng)能力、耐受性、修復(fù)效率高的菌種是微生物處理技術(shù)研究的重點(diǎn)。Chen等[4]選用硫酸鹽還原菌作為處理鈾污染的微生物,研究發(fā)現(xiàn)該種微生物還原鈾時(shí)不僅還原率高的同時(shí)自身生長(zhǎng)會(huì)更好。

        因此,該研究選用某鈾水冶廠區(qū)附近的受污染河流為研究對(duì)象,從中篩選、分離出具有高耐受鈾的菌株,并對(duì)其生物學(xué)特性及其分子生物學(xué)鑒定種類進(jìn)行研究,以期望獲得耐性微生物,為微生物在水體鈾污染治理中的研究和應(yīng)用提供資料。

        1 材料與方法

        1.1 試驗(yàn)材料

        1.1.1 篩菌水樣及試劑

        篩選耐鈾微生物的水樣來(lái)自宜賓市某鈾水冶廠附近的金沙江河段。在研究區(qū)布置5個(gè)點(diǎn),每個(gè)點(diǎn)采集兩個(gè)平行樣,放入已經(jīng)滅菌的250mL藍(lán)口玻璃瓶中,同時(shí)放入冰袋保持低溫。帶回實(shí)驗(yàn)室后,放置于冰箱中于4℃保存,并在2d內(nèi)進(jìn)行優(yōu)勢(shì)細(xì)菌的培養(yǎng)、分離、純化。牛肉膏、蛋白胨、Nacl、瓊脂粉菌均購(gòu)于成都科隆化學(xué)品有限公司;硝酸鈾酰購(gòu)于西安鼎天化工有限公司,純度為分析純及以上。試驗(yàn)用水均為超純水。

        1.1.2 培養(yǎng)基配置

        NB培養(yǎng)基:按0.3g、1g、0.5g、100mL分別稱取牛肉膏、蛋白胨、Nacl、超純水于250mL錐形瓶中,121℃、0.1MPa下滅菌23min,冷卻后備用。

        固體培養(yǎng)基:按0.5g、1g、0.5g、2g、100mL分別稱取牛肉膏、蛋白胨、Nacl、瓊脂粉、超純水于250mL錐形瓶中,121℃、0.1MPa下滅菌23min。稍冷卻后導(dǎo)入平板中待完全凝固,備用。

        1.2 耐鈾菌株的篩選及鑒定

        1.2.1 耐鈾菌株的篩選

        按比例配置150mLNB培養(yǎng)基充分冷卻后加入0.5mL含鈾廢水,置于20℃下150r/min振蕩培養(yǎng)48h。再取0.5mL菌液,加入含60mg/L、70 mg/L、80 mg/L、90mg/L的UO2+的NB培養(yǎng)基中置于20℃下150r/min 振蕩培養(yǎng)48h。利用接種環(huán)蘸取生長(zhǎng)狀況較好、色澤較為單一的菌液,采用平板劃線法進(jìn)行純化培養(yǎng),直到培養(yǎng)基上重復(fù)出現(xiàn)單個(gè)菌落為止。

        1.2.2 耐鈾菌株的形態(tài)特征觀察及初步鑒定

        對(duì)篩選出的耐性菌株進(jìn)行菌落形態(tài)觀察,觀察菌落表面、邊緣、顏色等生物學(xué)特征。同時(shí)采用革蘭氏染色法對(duì)優(yōu)勢(shì)細(xì)菌進(jìn)行初步鑒定。

        1.2.3 耐鈾菌株的分子生物鑒定

        該研究采用16S rDNA基因測(cè)序法,委托北京擎科生物科技有限公司成都分公司進(jìn)行序列測(cè)定。

        1.3 優(yōu)勢(shì)細(xì)菌特性研究

        1.3.1 優(yōu)勢(shì)細(xì)菌生長(zhǎng)曲線測(cè)定

        接種一環(huán)細(xì)菌至150mLNB培養(yǎng)基中,活化18h~24h,再以0.5%(體積比)接種量接種到新鮮的NB培養(yǎng)基中,30℃,150r/min振蕩培養(yǎng),測(cè)定不同時(shí)間點(diǎn)溶液的OD600值,以時(shí)間為橫軸、OD600值為縱軸繪制細(xì)菌的生長(zhǎng)曲線。

        1.3.2 耐性菌株生長(zhǎng)條件影響試驗(yàn)

        pH對(duì)耐性菌株的生長(zhǎng)影響試驗(yàn):將馴化后的菌株保持接種量一致,接入已經(jīng)滅菌的NB培養(yǎng)基,調(diào)節(jié)培養(yǎng)基pH分別為5、6、7、8這4個(gè)梯度,在150r/min、30℃下每個(gè)pH進(jìn)行3組平行試驗(yàn),分別在不同時(shí)間點(diǎn)測(cè)度OD600值觀察細(xì)菌生長(zhǎng)情況。

        不同接種量對(duì)耐性菌株的生長(zhǎng)影響試驗(yàn):將馴化后的菌株接種一環(huán)細(xì)菌至液體培養(yǎng)基中,活化18h~24h,再分別以0.25%、0.5%、1%、2%接種至已滅菌的NB培養(yǎng)基,調(diào)節(jié)pH一致,在150r/min、30℃下每個(gè)pH進(jìn)行3組平行試驗(yàn),分別在不同時(shí)間點(diǎn)測(cè)度OD600值觀察細(xì)菌生長(zhǎng)情況。

        1.4 數(shù)據(jù)處理

        對(duì)1.3中不同試驗(yàn)中的菌液,如果所測(cè)得結(jié)果過(guò)高,應(yīng)稀釋至0.1~0.9[5],然后建立相關(guān)稀釋倍數(shù)間的OD600回歸方程。設(shè)菌株培養(yǎng)液不同稀釋倍數(shù)間的OD600值回歸方程為y=ax+b(x為相同培養(yǎng)時(shí)間培養(yǎng)液稀釋后的OD600值,y為相同培養(yǎng)時(shí)間培養(yǎng)液稀釋前的OD600值),通過(guò)解得a、b值后得到不同稀釋倍數(shù)間的OD600值回歸方程。然后將相應(yīng)的OD600值帶入相關(guān)回歸方程后得到同一稀釋倍數(shù)水平上的回歸后所有OD600值。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 菌株的初步鑒定

        2.1.1 菌株的形態(tài)學(xué)特征

        觀察上述劃線純化得到的菌落的形態(tài)特征如圖1所示,來(lái)進(jìn)行初步鑒定。菌落形狀不規(guī)則,大多成圓形,稍有光澤呈白色,在菌落周圍有白色透明圈。

        圖1 劃線純化得到的菌株

        鏡檢觀察得出菌體細(xì)胞桿狀,兩端鈍圓,無(wú)莢膜,多呈單個(gè)或鏈狀排列的革蘭氏陽(yáng)性菌[6],如圖2所示。

        圖2 革蘭氏染色鏡檢圖

        2.1.2 耐性菌株的基因組電泳圖譜

        將對(duì)耐鈾菌株進(jìn)行送樣鑒定后,其基因組電泳圖如圖3所示,可以看出提取的菌株DNA條帶清晰而明亮,說(shuō)明成功提取到耐鈾菌株的DNA,其序列大小在1500bp左右(注:marker從上至下依次為5000bp,3000bp,2000bp,1000bp,750bp,500bp,250bp,100bp)[7]。

        圖3 基因組電泳圖

        2.1.3 基因序列、構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹和種屬分析

        用ContigExpress拼接測(cè)序結(jié)果,并去除兩端不準(zhǔn)的部分。將拼接好的序列在NCBI數(shù)據(jù)庫(kù)(blast.ncbi.nlm.nih.gov)中進(jìn)行比對(duì)。

        16S測(cè)序結(jié)果NCBI比對(duì)結(jié)果發(fā)現(xiàn),該研究中的耐鈾菌株的16S序列比對(duì)結(jié)果為Bacillus cereus(或同屬),與Bacillus cereus的16S rDNA序列一致性為97%以上。

        2.2 菌株生長(zhǎng)影響試驗(yàn)

        2.2.1 菌株生長(zhǎng)曲線

        通過(guò)分光光度法測(cè)定細(xì)菌不同生長(zhǎng)時(shí)間培養(yǎng)液的OD600值,測(cè)得數(shù)據(jù)見表1,繪制菌株的生長(zhǎng)曲線如圖4所示。

        表1 菌株不同生長(zhǎng)時(shí)間培養(yǎng)液的OD600值

        細(xì)菌在適宜的條件下培養(yǎng)經(jīng)歷4個(gè)階段:延滯期、對(duì)數(shù)期、穩(wěn)定期以及衰亡期。生長(zhǎng)曲線反映了細(xì)菌在培養(yǎng)中所表現(xiàn)出來(lái)的生長(zhǎng)和繁殖的規(guī)律。

        由圖4可以看出,0 h~6 h時(shí)間段內(nèi),OD600值很小且沒有太大變化,細(xì)菌生長(zhǎng)緩慢,屬于延滯期;6 h后開始迅速生長(zhǎng),6h~31h為對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期,此時(shí)細(xì)菌得到豐富的營(yíng)養(yǎng),細(xì)胞代謝活力最強(qiáng),合成新細(xì)胞物質(zhì)的速率最快,細(xì)菌生長(zhǎng)旺盛;在31h處進(jìn)入穩(wěn)定期,31h~48h為穩(wěn)定期,此時(shí)溶液中的營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)已被大量消耗,細(xì)菌生長(zhǎng)比較穩(wěn)定,但還是有所增長(zhǎng);48h后OD600值開始下降,菌株生長(zhǎng)進(jìn)入衰亡期。表明此時(shí)營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)已被耗盡,且積累的有毒的代謝產(chǎn)物抑制細(xì)菌生長(zhǎng)繁殖,死亡率增加。

        圖4 細(xì)菌生長(zhǎng)曲線

        2.2.2 不同添加量對(duì)菌種影響試驗(yàn)

        將不同生長(zhǎng)時(shí)間培養(yǎng)液按1.4中方法進(jìn)行試驗(yàn)并處理數(shù)據(jù)[8-9],其結(jié)果見表2。

        將表2中數(shù)據(jù)代入y=ax+b可得培養(yǎng)液相應(yīng)稀釋倍數(shù)間的OD600值回歸方程。由表3可知,隨著菌體生長(zhǎng)時(shí)間的增加,菌體培養(yǎng)液分別被稀釋2倍、5倍、10倍時(shí),每個(gè)稀釋倍數(shù)由低到高的OD600值回歸方程分別為y=1.8754x-0.3651y=1.0525x+0.4341、y=1.1668x+0.1498。

        表2 添加量為0.25%時(shí)菌液不同稀釋倍下OD600值

        表3 細(xì)菌不同稀釋倍數(shù)間的OD600值回歸方程

        根據(jù)測(cè)定環(huán)境因子對(duì)菌株生長(zhǎng)的影響試驗(yàn)設(shè)計(jì),測(cè)定添加量對(duì)菌株生長(zhǎng)的影響,將添加量設(shè)置為0.25%、0.5%、1%、2%這4個(gè)梯度,分別對(duì)其進(jìn)行培養(yǎng)并稀釋再測(cè)定OD600。用回歸方程(表3)計(jì)算出同一稀釋倍數(shù)所表現(xiàn)的OD600值,結(jié)果見表4。

        表4 不同添加量下培養(yǎng)液OD600測(cè)定值及回歸值

        添加量的大小決定細(xì)菌生長(zhǎng)繁殖的速度,適當(dāng)?shù)募?xì)菌添加量可以縮短細(xì)菌繁殖達(dá)到高峰的時(shí)間,并可減少雜菌生長(zhǎng)的機(jī)會(huì)。如圖5所示,添加量為1%時(shí)細(xì)菌生長(zhǎng)最好、繁殖最快,0.25%時(shí)其次,添加量為0.5%和2%時(shí)差別不大,細(xì)菌能正常生長(zhǎng)但生長(zhǎng)狀況均差于添加量為1%、0.25%的條件。由此可見并不是接種量越大越好,接種量越大,工業(yè)成本越高,同時(shí)隨著細(xì)菌的加入,其代謝產(chǎn)物也越多,對(duì)細(xì)菌的抑制和毒害作用也就越強(qiáng)[10]。

        圖5 不同添加量下菌株生長(zhǎng)曲線

        2.2.3 不同pH對(duì)菌種影響試驗(yàn)

        根據(jù)測(cè)定環(huán)境因子對(duì)菌株生長(zhǎng)的影響試驗(yàn)設(shè)計(jì),測(cè)定初始pH對(duì)菌株生長(zhǎng)的影響,將pH設(shè)置為5、6、7、8這4個(gè)梯度,分別對(duì)其進(jìn)行培養(yǎng)并測(cè)定OD600。數(shù)據(jù)處理方法與1.4一致,結(jié)果見表5。

        表5 不同pH下培養(yǎng)液的OD600測(cè)定值及回歸值

        從圖6中可以看出,pH為5時(shí),細(xì)菌生長(zhǎng)受到抑制,適應(yīng)期延后,整體生長(zhǎng)情況不佳。當(dāng)pH值為3~5時(shí),U主要以UO22+的形式存在,此時(shí)毒性最強(qiáng)[11]。當(dāng)pH為6時(shí),前期增長(zhǎng)較快,但從6h就有所下降,生長(zhǎng)情況不穩(wěn)定??赡苁且?yàn)楫?dāng)pH=6.0時(shí),鈾主要以UO22+、UO2OH+、(UO2)3(OH)5+兩種陽(yáng)離子形態(tài)存在[12]。當(dāng)pH為7和8時(shí),細(xì)菌生長(zhǎng)情況良好,當(dāng)pH大于7時(shí),鈾的化學(xué)形態(tài)主要為碳酸鈾酰配合物,同時(shí)少量的鈾會(huì)形成鈾酰氫氧化物沉淀物質(zhì)。此時(shí),溶液的毒性降低,減小對(duì)細(xì)菌生長(zhǎng)的抑制。

        3 結(jié)論

        通過(guò)16S rDNA 基因測(cè)序分析鑒定出耐性菌株與已知分類地位的標(biāo)準(zhǔn)菌株Bacillus cereus(ON892078.1)的親緣關(guān)系極近。

        根據(jù)對(duì)初始菌種的培養(yǎng)試驗(yàn),0h~6h為延滯期,細(xì)菌生長(zhǎng)緩慢;6h~31h為對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期,細(xì)胞代謝活力最強(qiáng),細(xì)菌生長(zhǎng)旺盛;31h~48h為穩(wěn)定期,溶液中的營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)已被大量消耗,細(xì)菌生長(zhǎng)比較穩(wěn)定;48h后進(jìn)入衰亡期,此時(shí)營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)已被耗盡,有毒代謝產(chǎn)物積累,抑制細(xì)菌生長(zhǎng)繁殖。

        試驗(yàn)中在一定范圍內(nèi)增加菌液添加量可提高細(xì)菌的生長(zhǎng)速度,但接種過(guò)多不僅會(huì)使成本增加,也會(huì)因?yàn)榧?xì)菌的代謝產(chǎn)物增加而對(duì)細(xì)菌的抑制和毒害作用增強(qiáng)。試驗(yàn)得出該優(yōu)勢(shì)細(xì)菌的最佳接種量為1%。

        試驗(yàn)中細(xì)菌在pH為8時(shí)生長(zhǎng)情況最好。pH值不同會(huì)改變鈾在水溶液中的存在形態(tài),在pH大于7時(shí)鈾的化學(xué)形態(tài)主要為碳酸鈾酰配合物,同時(shí)少量的鈾會(huì)形成鈾酰氫氧化物沉淀物質(zhì),對(duì)細(xì)菌毒性作用降低。

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