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        溫陽(yáng)振衰顆粒對(duì)腎間質(zhì)纖維化模型大鼠細(xì)胞焦亡及腎間質(zhì)纖維化的影響

        2022-11-28 10:31:42袁軼峰蔡虎志王敏李琰歐陽(yáng)過(guò)陳新宇
        中國(guó)中醫(yī)藥信息雜志 2022年11期
        關(guān)鍵詞:焦亡溫陽(yáng)貨號(hào)

        袁軼峰,蔡虎志,王敏,李琰,歐陽(yáng)過(guò),陳新宇

        湖南中醫(yī)藥大學(xué)第一附屬醫(yī)院,湖南 長(zhǎng)沙 410007

        慢性腎臟?。╟hronic kidney disease,CKD)是各種原因引起慢性腎臟結(jié)構(gòu)和功能障礙的臨床綜合征,日益成為世界范圍內(nèi)公認(rèn)的公共衛(wèi)生問(wèn)題。慢性腎功能衰竭(chronic renal failure,CRF)是CKD進(jìn)展至后期的共同結(jié)局,具有高患病率、高致殘率特點(diǎn)[1]。目前尚缺乏有效延緩CRF進(jìn)展的措施,導(dǎo)致CRF患者預(yù)后不良。腎臟纖維化是導(dǎo)致腎臟結(jié)構(gòu)和功能受損的重要途徑[2-4],抑制腎臟纖維化是延緩CRF進(jìn)展的有效措施[5-6]。NOD 樣受體蛋白3(NLRP3)/半胱氨酸蛋白酶-1(Caspase-1)通路介導(dǎo)的細(xì)胞焦亡在多種疾病中發(fā)揮重要作用[7-8]。溫陽(yáng)振衰顆粒由陳新宇教授根據(jù)多年臨床經(jīng)驗(yàn)擬定,課題組前期研究發(fā)現(xiàn),溫陽(yáng)振衰顆??筛纳坡阅I功能衰竭患者腎纖維化[9]。本實(shí)驗(yàn)基于NLRP3/Caspase-1通路觀察溫陽(yáng)振衰顆粒對(duì)腎間質(zhì)纖維化大鼠細(xì)胞焦亡及腎臟纖維化的影響,進(jìn)一步明確其治療腎臟纖維化的作用機(jī)制。

        1 材料與方法

        1.1 動(dòng)物

        健康雄性SD大鼠50只,體質(zhì)量(220±20)g,購(gòu)于湖南斯萊克景達(dá)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物有限公司,動(dòng)物許可證號(hào)SCXK(湘)2019-0004。飼養(yǎng)于湖南中醫(yī)藥大學(xué)第一附屬醫(yī)院動(dòng)物房,溫度22~26 ℃,濕度50%~60%,光暗周期12 h。自由攝食飲水。

        1.2 藥物

        溫陽(yáng)振衰顆粒(制附片、干姜、茯苓、紅參、麥冬、五味子、甘草以10∶10∶15∶6∶15∶10∶10比例配伍),由湖南中醫(yī)藥大學(xué)第一附屬醫(yī)院提供,8 g/袋,以生理鹽水溶解,配制成濃度為0.072 g/mL溶液。

        1.3 主要試劑與儀器

        PBS(上海Wellbio,貨號(hào)WB00001),NLRP3抑制劑MCC950(美國(guó)AbMole,貨號(hào)M04359),蘇木素(上海Wellbio,貨號(hào)WB03008B),伊紅(上海Wellbio,貨號(hào)WB03008A),DAB試劑盒(北京中杉金橋,貨號(hào)ZLI-9018),二步法試劑盒(北京中杉金橋,貨號(hào)PV-9000),肌酐試劑盒(南京建成生物工程研究所,貨號(hào)C011-2-1),尿素氮試劑盒(南京建成生物工程研究所,貨號(hào)C013-2-1),Tris(德國(guó)Sigma,貨號(hào)V900483),RIPA 裂解液(上海碧云天,貨號(hào)P0013B),蛋白酶抑制劑(北京金泰宏達(dá),貨號(hào)583794),磷酸酶抑制劑(北京普利萊,貨號(hào)P1260),顯影液(上海佳信,貨號(hào)BW-61),定影液(上海佳信,貨號(hào)BW-62),Super ECL Plus超敏發(fā)光液(美國(guó)Advansta,貨號(hào)K-12045-D50),反轉(zhuǎn)錄試劑盒(北京康為世紀(jì),貨號(hào)CW2569),Trizol(美國(guó)Thermo,貨號(hào)15596026),Ultra SYBR Mixture(北京康為世紀(jì),貨號(hào)CW2601),F(xiàn)AM-YVAD-FMK(英國(guó)Abcam,貨號(hào)ab219935),Caspase-1、白細(xì)胞介素(IL)-18、β-actin、轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子(TGF)-β1、α-平滑肌肌動(dòng)蛋白(α-SMA)、Ⅰ型膠原蛋白(Col-Ⅰ)抗體(美國(guó)Proteintech,貨號(hào)分別為22915-1-AP、10663-1-AP、60008-1-Ig、21898-1-AP、55135-1-AP、66761-1-Ig),IL-1β 抗 體 ( 美 國(guó) Invitrogen, 貨 號(hào) PA5-88078),NLRP3抗體(英國(guó)Abcam,貨號(hào)ab214185),HRP-標(biāo)記山羊抗小鼠IgG(美國(guó)Proteintech,貨號(hào)SA00001-1),HRP 標(biāo)記山羊抗兔IgG(美國(guó)Proteintech,貨號(hào)SA00001-2)。YD-315切片機(jī),浙江金華益迪試驗(yàn)器材;BMJ-A包埋機(jī),常州中威電子儀器;BA210T顯微鏡,廈門(mén)Motic;H1650R臺(tái)式冷凍離心機(jī),湖南湘儀;DYY-6C電泳儀,北京六一;DYCZ-40D轉(zhuǎn)膜儀,北京六一;BioPrep-24 生物樣品均質(zhì)儀,杭州奧盛;Chemiscope6100 化學(xué)發(fā)光成像系統(tǒng),廣州勤翔;Quant Studio1熒光定量RCP儀,美國(guó)Thermo。

        1.4 分組、造模及給藥

        50只大鼠適應(yīng)性飼養(yǎng)1周后按體質(zhì)量分層,隨機(jī)分為空白組、假手術(shù)組、模型組、抑制劑組和溫陽(yáng)振衰顆粒組,每組10只。參考文獻(xiàn)[10]建立腎間質(zhì)纖維化大鼠模型:腹腔注射10%水合氯醛(0.3 mL/100 g)麻醉大鼠,左中腹部切約1 cm縱向切口,鈍性分離皮下組織及肌層,暴露左側(cè)腎臟,游離左側(cè)輸尿管,穿線結(jié)扎并剪斷左側(cè)輸尿管,逐層縫合切口。空白組不予處理,假手術(shù)組只暴露腎臟,游離左側(cè)輸尿管,不做結(jié)扎,其余操作相同。

        各組分別于造模后次日給藥,給藥劑量參考人與大鼠體表面積折算,抑制劑組予1 mg/mL MCC950生理鹽水溶液[20 mg/(kg·d)]腹腔注射,溫陽(yáng)振衰顆粒組予溫陽(yáng)振衰顆粒溶液1.44 g/(kg·d)灌胃,每日2次,模型組、假手術(shù)組灌胃等量生理鹽水,連續(xù)14 d。

        1.5 指標(biāo)檢測(cè)

        1.5.1 血肌酐、血尿素氮含量

        末次給藥后禁食8 h,水合氯醛麻醉大鼠,腹主動(dòng)脈取血3 mL,3 000 r/min離心15 min,收集血清,試劑盒檢測(cè)血肌酐(SCr)、血尿素氮(BUN)含量。

        1.5.2 腎組織病理觀察

        取血后摘取左腎,取部分腎組織置于10%中性福爾馬林溶液中固定48 h,常規(guī)石蠟包埋,切片,HE和Masson染色觀察組織病理變化及膠原纖維分布情況。

        1.5.3 免疫組化檢測(cè)

        腎組織石蠟切片脫蠟、抗原修復(fù)后,滴加TGF-β1一抗(1∶200)、α-SMA一抗(1∶400)、Col-Ⅰ一抗(1∶200),4 ℃孵育過(guò)夜,滴加二抗,室溫孵育1 h,DAB顯色,蘇木素復(fù)染,鹽酸乙醇分化,脫水,透明,封片。光鏡下觀察,陽(yáng)性染色為黃色至棕褐色,每張切片選取3個(gè)陽(yáng)性表達(dá)區(qū)域拍照,采用Image Pro Plus 6.0軟件計(jì)算陽(yáng)性表達(dá)的平均光密度。

        1.5.4 Western blot檢測(cè)

        取適量腎組織,加入RIPA 裂解液提取總蛋白,BCA法測(cè)定蛋白濃度,SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳,濕轉(zhuǎn)法將蛋白轉(zhuǎn)移至PVDF膜,將膜浸入5%脫脂奶粉-PBST溶液,室溫封閉60 min,4 ℃過(guò)夜。加入NLRP3一抗(1∶1 000)、Caspase-1一抗(1∶1 000)、IL-18一抗(1∶2 000)、IL-1β 一抗(1∶2 000)、β-actin 一抗(1∶2 000),4 ℃孵育過(guò)夜,加入HRP標(biāo)記山羊抗小鼠IgG(1∶6 000)、HRP標(biāo)記山羊抗兔IgG(1∶6 000),室溫孵育1 h,ECL化學(xué)發(fā)光法顯影,凝膠成像儀測(cè)定蛋白灰度值,以目的蛋白灰度值與內(nèi)參蛋白灰度值比值計(jì)算蛋白相對(duì)表達(dá)量。

        1.5.5 RT-PCR檢測(cè)

        取少量腎組織,加入Trizol 充分研磨,提取總RNA,紫外分光光度計(jì)測(cè)定RNA濃度。以RNA為模板,反轉(zhuǎn)錄合成cDNA,SYBR法進(jìn)行RT-qPCR實(shí)驗(yàn)。使用Primer Express 5.0 軟件設(shè)計(jì)引物(見(jiàn)表1),以β-actin為內(nèi)參,2-ΔΔCt法計(jì)算mRNA相對(duì)表達(dá)量。

        表1 各基因PCR引物序列

        1.5.6 細(xì)胞焦亡檢測(cè)

        腎組織石蠟切片經(jīng)脫蠟、抗原修復(fù)后,滴加FAMYVAD-FMK(1∶50)熒光染料(綠色)、碘化丙啶(紅色),37 ℃恒溫箱孵育1 h,洗滌液沖洗3 min×3次;加入DAPI(藍(lán)色),37 ℃染核10 min,PBS沖洗5 min×3次,緩沖甘油封片,熒光顯微鏡下觀察細(xì)胞焦亡情況,藍(lán)色為活細(xì)胞,焦亡細(xì)胞可見(jiàn)綠色+紅色熒光,計(jì)算細(xì)胞焦亡率。細(xì)胞焦亡率(%)=陽(yáng)性細(xì)胞數(shù)÷總細(xì)胞數(shù)×100%。

        1.6 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法

        采用SPSS19.0和DPS14.1統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行分析。計(jì)量資料用表示,多組間比較用方差分析,Levene檢驗(yàn)方差齊性,方差齊用LSD 法,方差不齊用Tamhane"s T2法。P<0.05表示差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

        2 結(jié)果

        2.1 造模情況

        空白組及假手術(shù)組大鼠腎臟無(wú)腫脹,腎臟顏色有光澤,輸尿管無(wú)擴(kuò)張;模型組大鼠左側(cè)腎臟腫大、顏色偏淺,左側(cè)輸尿管結(jié)扎處至腎臟擴(kuò)張明顯,左腎明顯大于右腎,腎實(shí)質(zhì)變??;抑制劑組和溫陽(yáng)振衰顆粒組大鼠左側(cè)腎臟腫脹程度較模型組減輕,左側(cè)輸尿管結(jié)扎處以上擴(kuò)張。

        2.2 溫陽(yáng)振衰顆粒對(duì)模型大鼠血肌酐、血尿素氮含量的影響

        與假手術(shù)組比較,模型組大鼠SCr、BUN含量顯著增加(P<0.01);與模型組比較,抑制劑組和溫陽(yáng)振衰顆粒組大鼠SCr、BUN 含量顯著減少(P<0.01)。見(jiàn)表2。

        表2 各組大鼠SCr、BUN含量比較()

        表2 各組大鼠SCr、BUN含量比較()

        注:與假手術(shù)組比較,△△P<0.01;與模型組比較,**P<0.01

        BUN/(mmol/L)8.85±2.70 8.70±2.24 18.46±2.69△△14.82±1.79**14.28±2.23**組別空白組假手術(shù)組模型組抑制劑組溫陽(yáng)振衰顆粒組只數(shù)10 10 10 10 10 SCr/(μmol/L)31.88±4.91 29.48±5.10 61.57±6.38△△46.22±7.33**45.44±8.45**

        2.3 溫陽(yáng)振衰顆粒對(duì)模型大鼠腎組織病理變化的影響

        HE及Masson染色顯示,空白組和假手術(shù)組大鼠腎小球、腎小管結(jié)構(gòu)完整,無(wú)明顯病理改變;模型組大鼠可見(jiàn)腎小管擴(kuò)張,炎性細(xì)胞浸潤(rùn),間質(zhì)纖維化明顯,腎小球形態(tài)破壞,結(jié)構(gòu)不完整,大量炎性細(xì)胞浸潤(rùn);抑制劑組和溫陽(yáng)振衰顆粒組大鼠腎小管、腎小球損傷程度較模型組減輕,腎間質(zhì)纖維化減少。見(jiàn)圖1、圖2。

        圖1 各組大鼠腎組織形態(tài)(HE染色,×400)

        圖2 各組大鼠腎組織形態(tài)(Masson染色,×400)

        2.4 溫陽(yáng)振衰顆粒對(duì)模型大鼠腎組織轉(zhuǎn)化生子因子-β1、α-平滑肌肌動(dòng)蛋白、Ⅰ型膠原蛋白表達(dá)的影響

        陽(yáng)性染色主要表達(dá)于遠(yuǎn)端腎小管上皮細(xì)胞。與假手術(shù)組比較,模型組大鼠腎組織TGF-β1、α-SMA、Col-Ⅰ表達(dá)顯著升高(P<0.01);與模型組比較,抑制劑組和溫陽(yáng)振衰顆粒組大鼠腎組織TGF-β1、α-SMA、Col-Ⅰ表達(dá)顯著降低(P<0.01)。見(jiàn)圖3~圖5、表3。

        表3 各組大鼠腎組織TGF-β1、α-SMA、Col-Ⅰ蛋白表達(dá)比較(,平均光密度,×10-3)

        表3 各組大鼠腎組織TGF-β1、α-SMA、Col-Ⅰ蛋白表達(dá)比較(,平均光密度,×10-3)

        注:與假手術(shù)組比較,△△P<0.01;與模型組比較,**P<0.01

        組別空白組假手術(shù)組模型組抑制劑組溫陽(yáng)振衰顆粒組Col-Ⅰ2.1±0.5 1.5±0.6 34.0±9.0△△18.6±5.0**15.6±7.1**只數(shù)10 10 10 10 10 TGF-β1 0.6±0.4 0.9±1.2 14.6±5.9△△5.6±3.1**4.3±1.7**α-SMA 0.4±0.2 0.6±0.4 14.1±4.3△△5.9±2.7**4.3±1.1**

        圖3 各組大鼠腎組織TGF-β1陽(yáng)性表達(dá)(免疫組化染色,×400)

        圖4 各組大鼠腎組織α-SMA陽(yáng)性表達(dá)(免疫組化染色,×400)

        圖5 各組大鼠腎組織Col-Ⅰ陽(yáng)性表達(dá)(免疫組化染色,×400)

        2.5 溫陽(yáng)振衰顆粒對(duì)模型大鼠腎組織NOD樣受體蛋白3、半胱氨酸蛋白酶-1、白細(xì)胞介素-18、白細(xì)胞介素-1β蛋白表達(dá)的影響

        與假手術(shù)組比較,模型組大鼠腎組織NLRP3、Caspase-1、IL-18、IL-1β 蛋白表 達(dá)顯著升高 (P<0.01);與模型組比較,抑制劑組和溫陽(yáng)振衰顆粒組大鼠腎組織NLRP3、Caspase-1、IL-18、IL-1β蛋白表達(dá)顯著降低(P<0.01)。見(jiàn)圖6、表4。

        表4 各組大鼠腎組織NLRP3、Caspase-1、IL-18、IL-1β蛋白表達(dá)比較(,相對(duì)表達(dá)量)

        表4 各組大鼠腎組織NLRP3、Caspase-1、IL-18、IL-1β蛋白表達(dá)比較(,相對(duì)表達(dá)量)

        注:與假手術(shù)組比較,△△P<0.01;與模型組比較,**P<0.01

        組別空白組假手術(shù)組模型組抑制劑組溫陽(yáng)振衰顆粒組IL-1β 0.27±0.06 0.29±0.07 0.76±0.13△△0.50±0.12**0.54±0.11**只數(shù)10 10 10 10 10 NLRP3 0.26±0.07 0.26±0.07 0.69±0.13△△0.51±0.10**0.44±0.09**Caspase-1 0.28±0.07 0.30±0.06 0.79±0.12△△0.53±0.08**0.55±0.06**IL-18 0.27±0.07 0.27±0.09 0.76±0.13△△0.52±0.12**0.48±0.15**

        圖6 各組大鼠腎組織NLRP3、Caspase-1、IL-18、IL-1β蛋白免疫印跡

        2.6 溫陽(yáng)振衰顆粒對(duì)模型大鼠腎組織NOD樣受體蛋白3、半胱氨酸蛋白酶-1、白細(xì)胞介素-18、白細(xì)胞介素-1β mRNA表達(dá)的影響

        與假手術(shù)組比較,模型組大鼠腎組織NLRP3、Caspase-1、IL-18、IL-1β mRNA 表達(dá)顯著升高(P<0.01);與模型組比較,抑制劑組和溫陽(yáng)振衰顆粒組大鼠腎組織NLRP3、Caspase-1、IL-18、IL-1β mRNA表達(dá)顯著降低(P<0.01)。見(jiàn)表5。

        表5 各組大鼠腎組織NLRP3、Caspase-1、IL-18、IL-1β mRNA表達(dá)比較()

        表5 各組大鼠腎組織NLRP3、Caspase-1、IL-18、IL-1β mRNA表達(dá)比較()

        注:與假手術(shù)組比較,△△P<0.01;與模型組比較,**P<0.01

        組別空白組假手術(shù)組模型組抑制劑組溫陽(yáng)振衰顆粒組IL-1β 0.88±0.27 0.90±0.40 3.71±1.37△△2.07±0.80**2.31±0.91**只數(shù)10 10 10 10 10 NLRP3 1.08±0.18 1.05±0.32 3.55±0.36△△2.27±0.32**2.03±0.50**Caspase-1 0.83±0.16 1.03±0.27 3.74±0.87△△1.80±0.54**1.71±0.34**IL-18 0.95±0.28 0.98±0.21 4.19±0.62△△2.18±0.16**2.37±0.36**

        2.7 溫陽(yáng)振衰顆粒對(duì)模型大鼠腎組織細(xì)胞焦亡的影響

        與假手術(shù)組比較,模型組大鼠腎組織細(xì)胞焦亡率顯著增加(P<0.01);與模型組比較,抑制劑組和溫陽(yáng)振衰顆粒組大鼠腎組織細(xì)胞焦亡率顯著減少(P<0.01)。見(jiàn)表6、圖7。

        表6 各組大鼠腎組織細(xì)胞焦亡率比較(,%)

        表6 各組大鼠腎組織細(xì)胞焦亡率比較(,%)

        注:與假手術(shù)組比較,△△P<0.01;與模型組比較,**P<0.01

        細(xì)胞焦亡率組別 只數(shù)0.90±0.49 0.76±0.40 12.54±3.81△△2.82±0.71**2.78±0.99**空白組假手術(shù)組模型組抑制劑組溫陽(yáng)振衰顆粒組10 10 10 10 10

        圖7 各組大鼠腎組織細(xì)胞焦亡陽(yáng)性表達(dá)(免疫熒光染色,×400)

        3 討論

        CKD屬中醫(yī)學(xué)“水腫”“癃閉”“關(guān)格”等范疇,其基本病機(jī)為本虛標(biāo)實(shí),以腎元虛衰為本,兼具水濕、痰濁、瘀血等標(biāo)實(shí)之證?!端貑?wèn)?陰陽(yáng)應(yīng)象大論篇》有“陽(yáng)化氣,陰成形”,腎元虧虛則水液不運(yùn),飲溢于肌表則發(fā)為“水腫”,濕邪濁毒壅滯于下焦則發(fā)為“癃閉”,水谷不下則變?yōu)椤瓣P(guān)格”,皆由陽(yáng)氣虧虛所致。腎為先天之本,為“五臟陰陽(yáng)之本”,故腎陽(yáng)為一身陽(yáng)氣之根本。CRF病位在腎,涉及肺、脾、肝等臟腑,陽(yáng)氣虧虛在疾病的發(fā)展過(guò)程中起主導(dǎo)作用。溫陽(yáng)振衰顆粒由制附片、紅參、干姜、茯苓、五味子、麥冬、甘草組成。制附片溫通陽(yáng)、暖命門(mén)、溫坎水、破陰凝,紅參大補(bǔ)元?dú)?、?fù)脈固脫,二者合而為君;干姜大熱無(wú)毒,守而不走,茯苓健脾滲濕,可補(bǔ)后天脾土,二者相伍則土得火生而中氣可復(fù),火得土覆而火可久存,為臣藥;另以麥冬養(yǎng)陰生津,五味子五味皆備而酸獨(dú)勝,以五味子之酸斂固澀固護(hù)陽(yáng)氣、斂火歸元,使陽(yáng)氣不外泄,為佐藥;甘草味甘性平,一可減附子之毒,二則調(diào)和諸藥,為使藥。諸藥合用,共奏溫陽(yáng)益氣、固陽(yáng)化陰之功。

        腎臟纖維化是各種CKD的共同病理結(jié)局,其中炎性細(xì)胞浸潤(rùn)引發(fā)的免疫反應(yīng)在腎纖維化過(guò)程中發(fā)揮關(guān)鍵作用[11]。近年研究表明,多種腎臟炎癥反應(yīng)可激活NLRP3炎性小體[12-13],通過(guò)IL-1等促炎性細(xì)胞因子觸發(fā)先天性免疫防御,以響應(yīng)如感染、代謝失調(diào)等危險(xiǎn)信號(hào)。同時(shí),NLRP3/Caspase-1炎癥通路介導(dǎo)的細(xì)胞焦亡在腎臟疾病中也發(fā)揮著重要作用[14-15]。細(xì)胞焦亡不同于細(xì)胞凋亡、壞死、脹亡和自噬,表現(xiàn)為細(xì)胞膜破裂并釋放促炎性細(xì)胞內(nèi)容物,是對(duì)刺激因素的一種過(guò)度應(yīng)答反應(yīng)。當(dāng)機(jī)體受到內(nèi)源性或外源性信號(hào)刺激時(shí),模式識(shí)別受體通過(guò)識(shí)別病原相關(guān)分子模式和損傷相關(guān)分子模式導(dǎo)致炎性小體多蛋白復(fù)合物組裝及Caspase-1前體活化,活化的Caspase-1一方面誘導(dǎo)焦亡發(fā)生,另一方面剪切細(xì)胞因子pro-IL-1β和pro-IL-18 使其成熟和分泌IL-1β和IL-18,IL-1β和IL-18釋放到胞外以介導(dǎo)炎癥級(jí)聯(lián)反應(yīng)[16-17]。

        在腎臟非免疫性實(shí)質(zhì)細(xì)胞中,小管上皮細(xì)胞可通過(guò)激活NLRP3炎性小體表達(dá)和釋放IL-18,由此觸發(fā)小管上皮細(xì)胞炎性反應(yīng)和焦亡[17]。本研究結(jié)果也表明,模型組大鼠腎組織NLRP3、Caspase-1表達(dá)升高,炎癥因子IL-18、IL-1β表達(dá)升高,細(xì)胞焦亡率增加,纖維化相關(guān)指標(biāo)TGF-β1、α-SMA、Col-Ⅰ蛋白表達(dá)升高,腎間質(zhì)纖維化明顯。使用NLRP3 抑制劑MCC950 干預(yù)后,大鼠腎組織NLRP3、Caspase-1表達(dá)降低,炎癥因子及纖維化相關(guān)指標(biāo)表達(dá)降低,細(xì)胞焦亡率減少,腎間質(zhì)纖維化有所改善,與溫陽(yáng)振衰顆粒組結(jié)果一致。表明NLRP3/Caspase-1炎癥通路介導(dǎo)的細(xì)胞焦亡在腎間質(zhì)纖維化過(guò)程中起重要作用,溫陽(yáng)振衰顆??赡芡ㄟ^(guò)干預(yù)NLRP3/Caspase-1通路介導(dǎo)細(xì)胞焦亡,進(jìn)而抑制腎臟纖維化,改善腎功能。

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