翟妞,徐國(guó)云,張慧,鄭慶霞,陳千思,劉萍萍,王晨,金立鋒,周會(huì)娜
中國(guó)煙草總公司鄭州煙草研究院,鄭州高新技術(shù)產(chǎn)業(yè)開(kāi)發(fā)區(qū)楓楊街2號(hào) 450001
植物原生質(zhì)體是去除細(xì)胞壁后被質(zhì)膜包被的活性細(xì)胞,廣泛應(yīng)用于細(xì)胞工程和分子生物學(xué)研究,如作物改良[1]、突變體創(chuàng)制[2]、基因亞細(xì)胞定位[3]和基因沉默與基因編輯[4-5]等。近年來(lái),隨著植物單細(xì)胞組學(xué)的快速發(fā)展,植物原生質(zhì)體尤其是擬南芥根原生質(zhì)體作為組織特異的材料[6-7]被廣泛應(yīng)用于植物單細(xì)胞基因組、轉(zhuǎn)錄組、蛋白質(zhì)組以及代謝組學(xué)的研究中[8-9],為植物生長(zhǎng)發(fā)育和抗脅迫研究提供了新思路。高活性的原生質(zhì)體是細(xì)胞水平組學(xué)分析的基礎(chǔ),因此植物原生質(zhì)體制備技術(shù)愈來(lái)愈被重視?,F(xiàn)有植物組織原生質(zhì)體制備方法主要有機(jī)械法、化學(xué)法和酶解法,其中酶解法是最有效快速分離原生質(zhì)體的方法[10]。煙草作為主要的模式植物之一,對(duì)植物學(xué)的研究具有重要意義。目前有關(guān)煙草組織原生質(zhì)體的制備方法,常見(jiàn)的主要是葉肉細(xì)胞的分離[11-12],而煙草根尖原生質(zhì)體的制備則鮮見(jiàn)文獻(xiàn)報(bào)道。根是煙草吸收營(yíng)養(yǎng)元素的關(guān)鍵部位,也是生物堿的合成場(chǎng)所,建立有效的煙草根原生質(zhì)體的制備方法,對(duì)在細(xì)胞水平上研究煙草營(yíng)養(yǎng)和生物堿代謝具有重要意義。為此,以本氏煙草和栽培煙草K326為材料,利用酶解法制備了煙草根原生質(zhì)體,并通過(guò)優(yōu)化酶解液組合、酶解時(shí)間和酶解滲透壓等條件,獲得了較高活性和數(shù)量的根原生質(zhì)體,旨在為煙草基因功能的驗(yàn)證以及單細(xì)胞組學(xué)的研究提供材料。
1.1.1 煙草根材料
培養(yǎng)皿點(diǎn)種的煙草(本氏煙草和栽培煙草K326)根,光照培養(yǎng)箱中培育,每天12 h光照(28℃)、12 h黑暗(25℃)處理;7 d時(shí),采集離根尖0.5 cm的根,去離子水沖洗3次,置于冰上預(yù)冷的培養(yǎng)皿中備用。
1.1.2 試劑
纖維素酶R-10、果膠酶Y-23和離析酶R-10(日本Yakult公司);甘露醇(美國(guó)Amresco公司);甘油和0.4%臺(tái)盼藍(lán)溶液[生工生物工程(上海)股份有限公司];牛血清白蛋白BSA(美國(guó)Sigma公司);其他常規(guī)試劑均為中國(guó)醫(yī)藥集團(tuán)有限公司試劑。原生質(zhì)體裂解緩沖液為實(shí)驗(yàn)室自配(0.3~0.5 mol/L甘露醇,10 mmol/L KCl,10 mmol/L CaCl2和0.1%BSA)。
1.1.3 儀器
電子天平(PL-602L,瑞士Mettler Toledo公司)、超純水一體化系統(tǒng)(PURELAB Pulse,英國(guó)ELGA公司)、冷凍臺(tái)式離心機(jī)(FRESCO 21,美國(guó)Thermo公司)、植物光照培養(yǎng)箱(E-36L2,美國(guó)Percival公司)、恒溫?fù)u床(770R,美國(guó)APLUS公司)、pH計(jì)(S210-K,瑞士Mettler Toledo公司)、細(xì)胞計(jì)數(shù)儀(TC20,美國(guó)Bio-Rad公司)、倒置顯微鏡(DWI400,德國(guó)Leica公司)。
離心管(美國(guó)Thermo公司);10 cm植物培養(yǎng)皿[生工生物工程(上海)股份有限公司];手術(shù)刀片[生工生物工程(上海)股份有限公司];移液管(美國(guó)Thermo公司);40μm細(xì)胞篩(美國(guó)Corning公司);細(xì)胞計(jì)數(shù)板(美國(guó)Bio-Rad公司)。
1.2.1 根尖細(xì)胞的酶解法分離
參考Zhang等[13]的方法制備根尖細(xì)胞,并作優(yōu)化處理。具體方法:將生長(zhǎng)7 d左右的煙草根用無(wú)菌水清洗3次,濾紙吸干,沿根尖方向刀片切取0.5 cm。將處理后的根置于50 mL離心管中加入配制好的酶解液10 mL,以50 r/min、28℃條件下避光振蕩處理1~5 h。裂解結(jié)束后,將酶解液過(guò)直徑40μm細(xì)胞篩,收集濾液。以500 r/min離心10 min,去除上清液。以8%Mannitol懸浮,500 r/min離心5 min,重復(fù)3~4次。緩沖液重新懸浮,即為根尖細(xì)胞原生質(zhì)體。
1.2.2 原生質(zhì)體數(shù)量與活性分析
參考Kang等[14]的方法進(jìn)行原生質(zhì)體計(jì)數(shù)及活性檢測(cè),并作適當(dāng)調(diào)整。具體操作:取原生質(zhì)體懸液20μL,加20μL臺(tái)盼藍(lán)溶液混勻,靜置10 s。將10μL原生質(zhì)體懸液加入細(xì)胞計(jì)數(shù)板中,靜置30 s,插入細(xì)胞計(jì)數(shù)器計(jì)數(shù),讀取細(xì)胞密度D(個(gè)/mL)并計(jì)算成活率。每個(gè)樣本設(shè)置3次重復(fù)。計(jì)算公式:
1.2.3 熒光顯微鏡觀(guān)察原生質(zhì)體
參考聶瓊等[12]的方法于顯微鏡下觀(guān)察原生質(zhì)體。具體操作:直接吸取酶解過(guò)程中的根尖細(xì)胞原生質(zhì)體懸浮液,于6孔板中在倒置顯微鏡下進(jìn)行觀(guān)察。設(shè)置不同時(shí)間,每隔1 h倒置顯微鏡觀(guān)察1次。觀(guān)察時(shí)先在低倍鏡下找到原生質(zhì)體后更換高倍鏡觀(guān)察,上下調(diào)動(dòng)細(xì)螺旋,以便看到清晰透亮原生質(zhì)體細(xì)胞,并同時(shí)拍照記錄原生質(zhì)體的實(shí)時(shí)狀態(tài)。根尖細(xì)胞裂解結(jié)束后,吸取10μL原生質(zhì)體懸液,經(jīng)臺(tái)盼藍(lán)染色后滴于載玻片上,蓋上蓋玻片,倒置顯微鏡觀(guān)察原生質(zhì)體狀態(tài),并拍照記錄。
依據(jù)其他植物(擬南芥、水稻等)根原生質(zhì)體的制備方法[13,15-16],對(duì)不同的裂解酶組合裂解本氏煙草根尖進(jìn)行考察。結(jié)果發(fā)現(xiàn),經(jīng)過(guò)相同時(shí)間,與離析酶+纖維素酶的組合相比,果膠酶+纖維素酶的組合裂解煙草根尖更容易獲得原生質(zhì)體(圖1A),且效率更高;而對(duì)于酶濃度的考察,相對(duì)于1.0%果膠酶和1.0%纖維素酶組合,1.5%果膠酶和1.5%纖維素酶組合能獲得更多的原生質(zhì)體(圖1B)。因此,對(duì)于煙草根尖原生質(zhì)體的制備,1.5%果膠酶和1.5%纖維素酶組合更有效。
圖1 不同裂解酶組分下的原生質(zhì)體狀態(tài)Fig.1 Morphology of protoplasts with different lyase combinations
利用1.5%果膠酶和1.5%纖維素酶組合,通過(guò)不同濃度的甘露醇(0.2~0.5 mol/L)調(diào)節(jié)裂解液的滲透壓,酶解本氏煙草根尖3 h,并對(duì)獲得的根尖原生質(zhì)體進(jìn)行細(xì)胞計(jì)數(shù)和活性檢測(cè)。結(jié)果發(fā)現(xiàn),隨著甘露醇濃度的增加,根尖原生質(zhì)體數(shù)量先增加后減少,尤其是甘露醇達(dá)0.5 mol/L時(shí),根原生質(zhì)體數(shù)量急劇降低(圖2A);但是隨著甘露醇濃度的增加,尤其是甘露醇濃度由0.3 mol/L到0.4 mol/L時(shí),原生質(zhì)體的活性由25%急速增加到63%,而甘露醇達(dá)0.5 mol/L時(shí)卻略有降低。因此煙草根尖原生質(zhì)體裂解時(shí),甘露醇適宜濃度為0.4 mol/L。
圖2 不同滲透壓下的原生質(zhì)體產(chǎn)量和活性比較Fig.2 Yields and vitalities of protoplasts under different osmotic pressures
利用優(yōu)化的裂解酶和甘露醇組合,酶解本氏煙草根尖1~3 h,顯微鏡觀(guān)察結(jié)果如圖3所示:隨著酶解時(shí)間的增加,1 h時(shí)煙草根尖細(xì)胞原生質(zhì)體成團(tuán)聚集、2 h時(shí)逐漸分離、3 h時(shí)形成單細(xì)胞懸液,且2 h和3 h時(shí)原生質(zhì)體狀態(tài)飽滿(mǎn)。因此,煙草根尖細(xì)胞原生質(zhì)體的較適宜解離時(shí)間為2~3 h。
圖3 不同酶解時(shí)間的原生質(zhì)體狀態(tài)Fig.3 Morphology of protoplasts under different enzymatic hydrolysis durations
同時(shí)對(duì)不同裂解時(shí)間獲得的根原生質(zhì)體進(jìn)行計(jì)數(shù)和活性檢測(cè),結(jié)果如圖4所示。隨著酶解時(shí)間的增加,原生質(zhì)體的產(chǎn)量逐漸增加(圖4A);而原生質(zhì)體的活性,隨著酶解時(shí)間的增加,成活率先增加后降低,2 h時(shí)的活性最高,達(dá)到70%??梢?jiàn),依據(jù)根尖原生質(zhì)體的產(chǎn)量和成活率,合適的酶解時(shí)間為2 h。
圖4 不同酶解時(shí)間的原生質(zhì)體產(chǎn)量(A)和活性(B)Fig.4 Yields(A)and vitalities(B)of protoplasts under different enzymatic hydrolysis durations
利用優(yōu)化的方法分別裂解K326和本氏煙草的根尖,對(duì)獲得的原生質(zhì)體進(jìn)行臺(tái)盼藍(lán)染色和細(xì)胞計(jì)數(shù)儀計(jì)數(shù),同時(shí)進(jìn)行顯微鏡檢測(cè)。結(jié)果發(fā)現(xiàn),同樣裂解條件下,本氏煙草根尖原生質(zhì)體的活性較高、碎片較少(圖5A),K326根原生質(zhì)體的活性較低、碎片較多(圖5B)。而同樣裂解條件下,獲得的K326和本氏煙草的根尖原生質(zhì)體數(shù)量相當(dāng),均達(dá)到105數(shù)量級(jí)。
圖5 不同煙草品種根尖原生質(zhì)體的活性檢測(cè)Fig.5 Vitalities of root tip protoplasts of different tobacco varieties
影響植物組織原生質(zhì)體分離制備的因素很多,其中裂解酶的組合與濃度、裂解液滲透壓和裂解時(shí)間等因素的影響最大[17-18]。因此對(duì)于煙草根尖原生質(zhì)體的制備,重點(diǎn)考察這三方面的因素。通常煙草原生質(zhì)體主要指煙草葉肉原生質(zhì)體,煙草根尖原生質(zhì)體涉及很少,主要原因是煙草根原生質(zhì)體制備困難。
與煙草葉肉原生質(zhì)體制備比,根尖原生質(zhì)體制備的難點(diǎn):①盡管煙草葉肉和根原生質(zhì)體制備都首選酶解法,但是裂解酶的組合不同(葉肉常用纖維素酶+離析酶,根選用纖維素酶+果膠酶),并且根原生質(zhì)體制備裂解酶的濃度遠(yuǎn)高于葉肉[6,11]。主要源于煙草根的纖維化程度高,纖維素含量高。②煙草根原生質(zhì)體制備取材受限較大。根原生質(zhì)體的制備只能采用組培或者水培幾天的根尖(此時(shí)根尖纖維化程度相對(duì)較低),能夠獲得原生質(zhì)體的數(shù)量也少;而葉肉原生質(zhì)體制備可以選取大田、溫室、水培、組培等苗期煙葉,能夠獲得的葉肉原生質(zhì)體數(shù)量幾乎沒(méi)有限制[19]。
由于煙草根尖分化程度低且細(xì)胞質(zhì)體含量極低,因此煙草根原生質(zhì)體是細(xì)胞誘導(dǎo)分化、單細(xì)胞組學(xué)等研究的極佳材料。本研究中通過(guò)優(yōu)化裂解酶組合及作用濃度、裂解滲透壓及裂解時(shí)間,能夠獲得活性大于70%、數(shù)量達(dá)到105數(shù)量級(jí)的煙草根原生質(zhì)體。與其他物種相比,煙草根原生質(zhì)體的活性相對(duì)較低,為此,應(yīng)進(jìn)一步調(diào)整優(yōu)化裂解酶組合和裂解時(shí)間,以獲得活性大于90%的根原生質(zhì)體,滿(mǎn)足煙草細(xì)胞組學(xué)研究更深層次的需求。
煙草根原生質(zhì)體制備的適宜條件:材料為培養(yǎng)皿中點(diǎn)種7 d的無(wú)菌根尖;酶解液組合為1.5%纖維素酶+1.5%果膠酶;裂解液甘露醇濃度為0.4 mol/L;裂解時(shí)間為2 h。利用優(yōu)化后的分離方法,可以獲得活性大于70%、數(shù)量達(dá)到105數(shù)量級(jí)的較高質(zhì)量的煙草根原生質(zhì)體。