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        貝氏酵母發(fā)酵過程中荔枝果酒的揮發(fā)性風味成分變化

        2022-10-17 04:56:32龔詩媚鄧雅妮張曼王東偉王凱趙雷胡卓炎
        食品與發(fā)酵工業(yè) 2022年19期

        龔詩媚,鄧雅妮,張曼,王東偉,王凱,趙雷,胡卓炎

        (華南農業(yè)大學 食品學院,廣東 廣州,510642)

        貝氏酵母(Saccharomycesbayanus)是一種常用于發(fā)酵西打果酒的酵母菌,已在蘋果西打果酒商業(yè)中得以應用。研究顯示,貝氏酵母在果酒發(fā)酵過程中能產生豐富的揮發(fā)性風味物質,增加酒體的香氣[1]。JANUSZEK等[1]將貝氏酵母發(fā)酵的蘋果白蘭地與釀酒酵母(Saccharomycescereisiae)發(fā)酵的果酒進行比較,結果表明前者中的香氣成分(包括醋酸酯、乙酸異戊酯、棕櫚酸乙酯)濃度明顯增加。EGLINTON等[2]將貝氏酵母應用于葡萄酒發(fā)酵,結果顯示在發(fā)酵過程中產生了更多的甘油、乙醛和較少的乙酸、蘋果酸等物質,并在感官方面,賦予了果酒“熟橘皮”、“堅果”等風味。此外,有研究人員為使酒體的揮發(fā)性物質更加豐富,將貝氏酵母與其他菌株混合應用到獼猴桃酒的發(fā)酵[3]??梢娎秘愂辖湍赴l(fā)酵的果酒具有更高的風味強度,增加果酒風味的豐富性。

        荔枝(LitchichinensisSonn.)屬于無患子科熱帶和亞熱帶水果,因其誘人的顏色、獨特的風味、豐富的營養(yǎng)和保健作用而受到人們的喜愛[4]。荔枝果肉含有多種營養(yǎng)成分,如碳水化合物、蛋白質、必需氨基酸、維生素和礦物質,其含量因荔枝品種而異[5]。由于新鮮荔枝采后壽命短,貯藏時間過久會導致其中的活性成分迅速流失,極大地影響其貯藏性和市場價值[6]。釀酒是荔枝深加工的重要途徑,通過發(fā)酵不僅可以保留原始果汁中的大部分營養(yǎng)成分,還可產生包含氨基酸在內的其他營養(yǎng)物質[7],在合理利用荔枝資源的同時提高荔枝產業(yè)的經濟效益。

        目前已有研究者探討荔枝果酒和啤酒的風味成分和抗氧化特性[8-10],但將貝氏酵母應用于荔枝酒發(fā)酵的研究還鮮見報道,因而研究貝氏酵母對荔枝酒揮發(fā)性風味物質的影響對提高荔枝果酒的品質有重要意義。采用電子鼻和氣相色譜-離子遷移譜(gas chromatography-ion mobility spectrometry,GC-IMS)等技術分析食品的揮發(fā)性成分特征備受重視[11-12]。故本文采用貝氏酵母發(fā)酵制備荔枝果酒,利用電子鼻和GC-IMS技術對其發(fā)酵過程中揮發(fā)性風味成分的變化進行分析,以期為荔枝酒的開發(fā)利用及其品質的控制提供科學依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1 材料與試劑

        荔枝,品種為妃子笑 (LitchichinensisSonn c.Feizixiao),產地為海南,鮮果當天運回實驗室進行處理,并于-20 ℃以下凍藏備用;貝氏酵母(商品名SafCider),法國Fermentis酵母公司。

        PEN3電子鼻系統(tǒng),德國Airsense公司;LHS-HC-250恒溫恒濕培養(yǎng)箱,廣州市深華生物技術有限公司;BS110S電子分析天平,梅特勒-托利多儀器有限公司;Flaour Spec 1H1-00053型風味分析儀,配有分析軟件包括LA(Laboratory Analytical iewer)、Reporter 插件、Gallery Plot插件以及GC×IMS Library Search),德國G.A.S公司。

        1.2 實驗方法

        1.2.1 樣品制備

        選擇充分成熟,無腐爛變質的荔枝去皮去核后打漿處理并過濾,隨后離心得荔枝清汁。發(fā)酵條件參照文獻[1,8-9],為抑制雜菌繁殖,加入120 mg/L偏重亞硫酸鉀,調整糖度為20°Brix,加入0.3 g/L貝氏酵母于20 ℃條件下進行發(fā)酵。于0、2、4、6、8、10 d采集發(fā)酵液,制備分析樣品,立即于-80 ℃下保存,待分析。

        1.2.2 電子鼻分析

        表1為PEN3型電子鼻10個金屬傳感器的陣列及性能描述。參照CAO等[11]方法,稍作修改。準確量取5 mL樣品于30 mL樣品瓶中,加密封蓋,室溫富集30 min后將進樣針插入樣品瓶采用頂空吸氣法進行電子鼻分析試驗。測試前對電子鼻參數(shù)進行設置,傳感器清洗時間100 s,傳感器歸零時間5 s,樣品準備時間5 s,進樣流量 150 mL/min,檢測時間120 s。完成每次檢測系統(tǒng)進行清零和標準化后再測試下一個樣品,每種樣品重復3次測定,采用電子鼻軟件WinMuster對所測數(shù)據(jù)進行主成分分析(principal component analysis,PCA)和載荷分析。

        表1 PEN3傳感器陣列及性能描述Table 1 Sensor arrays and performance specification of electronic nose PEN3

        1.2.3 氣相色譜-離子遷移譜分析

        參考陳小愛等[12]的方法,并稍加修改。

        制樣方法:稱取1 mL樣品,置于20 mL頂空瓶中待分析;頂空孵化溫度70 ℃,孵化時間15 min,孵化轉速500 r/min,進樣體積200 μL,進樣針溫度85 ℃。

        GC條件:MXT-WAX(30 m×0.53 mm,1 μm)色譜柱,色譜柱溫60 ℃,運行時間30 min,載氣為高純度N2;載氣流速:起始2 mL/min保持2 min,在2~20 min線性增加至100 mL/min,保持10 min。

        IMS條件:在500 /cm的電場下施加氚源,漂移管長度為9.8 cm,漂移氣為高純度N2,流速150 mL/min,漂移管溫度45 ℃。

        揮發(fā)性風味物質的相對百分含量測定:運用GC-IMS內置的數(shù)據(jù)庫進行二維定性,根據(jù)定性物質峰面積計算相對百分含量,應用于相對活度值(relatie odor actiity alue,ROA) 計算。

        1.2.4 ROA分析

        參考劉登勇等[13]的方法,計算ROA,考察樣品總體風味貢獻最大的組分:ROAstan=100,對其他組分活度值按公式(1)計算:

        (1)

        式中:CA,各風味組分的相對百分含量,%;TA,各風味組分的感覺閾值;Cstan,樣品風味貢獻最大成分的相對百分含量,%;Tstan,風味貢獻最大組分的感覺閾值。其中風味物質的相對百分含量均由GC-IMS測定得出。ROA≥1的組分為所分析樣品的關鍵風味化合物,0.1≤ROA<1的組分對樣品的總體風味具有重要的修飾作用。

        1.2.5 感官評定

        參考秦獻泉等[14]對荔枝果酒的模糊綜合評判法進行研究,評價指標包括色澤、香氣、口味和風格4項,總分值為100,各項權重分別為0.1、0.4、0.3和0.2,各項評價分5個等級:很好、較好、一般、較差和差。評定人員由8名經過培訓的具有食品專業(yè)背景的人員組成。

        1.3 數(shù)據(jù)分析

        采用Origin 2018統(tǒng)計軟件分析數(shù)據(jù)并作圖,采用SPSS Statistics 25軟件進行鄧肯單因素方差分析(P<0.05);采用GC-IMS自帶儀器分析軟件,包括LA、Reporter和Gallery plot對樣品揮發(fā)性成分進行采集和分析,通過保留指數(shù)(retention index,RI)和漂移時間與GC-IMS文庫以及峰面積歸一化處理進行化合物定性定量分析。

        2 結果與分析

        2.1 電子鼻對荔枝酒發(fā)酵過程中揮發(fā)性風味物質的特征分析

        電子鼻技術是基于氣體傳感陣列響應圖譜識別氣體的電子系統(tǒng),是一種用途廣泛、實時無損的揮發(fā)性風味物質分析檢測方法[15]。荔枝酒發(fā)酵過程中揮發(fā)性風味物質在電子鼻傳感器響應信號強度如圖1所示,樣品響應強度較突出的傳感器有W1C、W5S、W5C、W1W和W2S,它們分別對芳香成分、氮氧化合物、烷烴、萜烯類、硫化物、醇類和醛酮類物質靈敏。其中W5S傳感器響應值最高,并且荔枝酒在發(fā)酵期間該傳感器上的響應值有較大差異,表明傳感器W5S對荔枝酒的發(fā)酵程度可較好地區(qū)分。其次W1W(硫化物)響應值呈現(xiàn)降低的趨勢,由于硫化物具有臭雞蛋味,對樣品氣味起負面作用,因此樣品的硫化物響應值越低越好。結果表明,經過貝氏酵母發(fā)酵的荔枝酒主要揮發(fā)性風味物質為氮氧化合物、烷烴、醇類及醛酮類,可根據(jù)對應傳感器的響應值大小判定荔枝酒的發(fā)酵程度。

        圖1 荔枝酒發(fā)酵過程中電子鼻響應雷達圖Fig.1 Radar diagram of electronic nose response during litchi wine fermentation

        2.2 GC-IMS對荔枝酒發(fā)酵過程中揮發(fā)性風味物質的特征分析

        電子鼻測定結果僅能得到樣品揮發(fā)性風味物質的整體輪廓,顯示發(fā)酵過程中荔枝酒響應信號的差異。為了更全面且細致的分析荔枝酒發(fā)酵過程中揮發(fā)性風味物質變化,采用氣相色譜-離子遷移譜技術進行分析,結果如圖2所示,縱坐標表示GC保留時間,橫坐標代表反應離子峰遷移時間。在1.0~1.8 ms的遷移時間內,200~1 200 s的保留時間內,有效的揮發(fā)性風味物質較多。運用GC-IMS內置的數(shù)據(jù)庫進行二維定性,共檢出60種化合物,其中定性出41種揮發(fā)性風味物質。圖中藍色背景上每個亮點代表一種揮發(fā)性物質,由白到紅,濃度升高。由圖2可知,發(fā)酵過程揮發(fā)性風味化合物的含量和種類在2 d后明顯增加,而發(fā)酵后期揮發(fā)性風味物質的含量和種類差異較小,與電子鼻分析的測定結果相符。

        圖2 荔枝酒發(fā)酵過程揮發(fā)性風味化合物 GC-IMS二維俯視圖Fig.2 Two-dimensional GC-IMS top iew of olatile flaor compounds during litchi wine fermentation

        圖3是運用LA軟件與插件“Gallery plot”選取每種樣本譜圖中揮發(fā)性物質信號峰進行排序形成指紋圖,橫軸為一個樣品檢測出的所有揮發(fā)性成分,縱軸為不同發(fā)酵時間的樣品。顏色深淺程度代表揮發(fā)性化合物的含量,含量越高的顏色越亮。

        圖3 荔枝酒發(fā)酵過程揮發(fā)性風味成分GC-IMS指紋圖譜Fig.3 GC-IMS fingerprint of olatile flaor compounds in the fermentation process of litchi wine

        由于單體離子和中性分子可能在漂移區(qū)形成附屬物,因此可能產生單倍體(M)、二聚體(D)和三聚體(T)[16],未經鑒定的揮發(fā)性風味化合物用數(shù)字進行標識。其中A區(qū)為荔枝汁(0 d)與發(fā)酵后荔枝酒共有的揮發(fā)性成分,分別為2-甲基丙醛(M)、正丙醇和丁酸乙酯(M)。B區(qū)為僅在發(fā)酵第2 天時大量存在的揮發(fā)性物質,且隨著發(fā)酵時間的增加迅速降低,分別為2-甲基丁醛、丙醛(M/D)、3-羥基-2-丁酮(M/D)、2-甲基丙醛(D)、甲酸乙硫醚和正丁醇。C區(qū)為發(fā)酵過程新產生且含量較高的揮發(fā)性物質,以乙酸酯類為主,包括乙酸丁酯(D)、乙酸丙酯(M)、乙酸異戊酯(M)等,該結果與JANUSZEK等[1]使用貝氏酵母發(fā)酵蘋果白蘭地的香氣成分相似。這是由于釀酒酵母有2種AAT酶(ATF1和ATF2),而在貝氏酵母中存在另一種AAT酶(Lg-ATF1),并且ATF1是合成乙酸酯類重要的酯合酶,醇乙酰基轉移酶(AATase)主要由基因ATF1、ATF2和Lg-ATF1編碼,催化酵母中乙酰輔酶A(acetyl-CoA)和乙醇結合,生成乙酸酯類[17]。

        對GC-IMS測定的荔枝酒發(fā)酵過程中揮發(fā)性風味化合物進行PCA載荷分析,結果如圖4所示。

        圖4 不同發(fā)酵時間樣品中揮發(fā)性風味化合物PCA載荷圖Fig.4 PCA loading plots of olatile flaor compounds in samples at different fermentation times

        第一主成分的貢獻率為66.98%,第二主成分的貢獻率為22.25%,總貢獻率為89.23%,具有較好的代表性。與電子鼻結果一致,PCA結果可較好地將原汁和發(fā)酵后期的荔枝酒區(qū)分開來,且在發(fā)酵后的第6、8、10天較為接近。其中在發(fā)酵第2天,起到主要作用的揮發(fā)性物質分別是丙醛M/D、2-甲基正丁醛、2-甲基丙醛M/D、3-羥基-2-丁酮、甲酸乙硫醚。隨著發(fā)酵時間的增加,在第6、8和10天起主要作用的揮發(fā)性物質以酯類物質為主,主要包括乙酸丁酯M、乙酸乙酯、乙酸丙酯D、乙酸異戊酯T、丁酸乙酯T等揮發(fā)性風味物質,其中丁酸乙酯和乙酸丁酯賦予荔枝酒甜香、果香,乙酸異戊酯具有強烈的水果香氣,似香蕉味,且癸酸乙酯具有新鮮的水果香味和酒香味[18]。

        2.3 荔枝酒發(fā)酵過程揮發(fā)性風味物質的ROA

        采用ROA法確定GC-IMS測定的荔枝酒發(fā)酵過程中關鍵揮發(fā)性風味化合物,以此進一步評價揮發(fā)性物質對總體風味的貢獻?;谇叭说难芯抗ぷ?,已表明揮發(fā)性風味物質的含量與特征香氣并非呈直接的比例關系,由于不同物質的閾值差異大,起到的嗅覺反應也不同,揮發(fā)性風味化合物對食品總體風味的貢獻由其濃度和感覺閾值共同決定[19]。按照公式(1)計算獲得的揮發(fā)性風味物質的ROA如表2所示。荔枝原汁中有4種關鍵風味化合物,分別為丁酸乙酯(甜香、蘋果香)、異丁醛(草香、麥芽香)、己醛(青草、脂肪氣味)和丙醛。而經貝氏酵母發(fā)酵后荔枝酒的關鍵風味化合物主要有丁酸乙酯、二氫草莓酸乙酯、異丁醛(草香、麥芽香)、乙酸異戊酯(果香、香蕉味)、己酸乙酯(香蕉味、菠蘿味)、辛酸乙酯(果香、脂香)。有研究者也證實采用酵母(D10,Lallemand Co,F(xiàn)rance)發(fā)酵的荔枝酒中揮發(fā)性組分對總體氣味有直接影響的物質包括丁酸乙酯、乙酸異戊酯、己酸乙酯、辛酸乙酯等[20]。除了關鍵風味化合物還有其他的起修飾作用的揮發(fā)性物質,主要包括乙酸丁酯(水果香)、丙酸乙酯(菠蘿香)和丙醛,這些揮發(fā)性風味物質共同賦予了荔枝酒果香、甜香。

        表2 荔枝酒發(fā)酵過程中揮發(fā)性風味物質的相對風味活度值Table 2 ROA of olatile flaor compounds in the fermentation process of litchi wine

        2.4 感官評價

        采用模糊評判法對發(fā)酵終了的荔枝果酒樣品進行感官評定,結果如圖5所示。色澤、香氣、口味和風格的評分分別為81.25、77.5、71.25、77.5,由權重算出感官綜合評價分數(shù)為76。各指標均位于較好水平,樣品色澤略帶微黃,澄清,無懸浮物,具有果香和酒香。

        圖5 荔枝果酒樣品感官評價雷達圖Fig.5 Sensory ealuation radar diagram of litchi wine samples

        3 結論

        貝氏酵母常被用于改善發(fā)酵果酒的風味,采用電子鼻和GC-IMS技術結合分析了經貝氏酵母發(fā)酵的荔枝酒揮發(fā)性風味成分的變化,結果表明,電子鼻可以根據(jù)對應傳感器的響應值大小對荔枝酒發(fā)酵程度進行判定,較好地區(qū)分不同發(fā)酵階段的荔枝酒,其差異主要集中在W5S(氮氧化合物)和W2S(醇類、醛酮類)2個傳感器的響應值。GC-IMS同樣測定出發(fā)酵過程醇類和醛酮類物質發(fā)生了顯著變化,此外,GC-IMS分析結果表明酯類物質在發(fā)酵過程中變化明顯,以乙酸酯類為主,并且貝氏酵母是一種很好的乙酸酯類生產者。ROA顯示發(fā)酵過程的差異主要來源于關鍵性風味化合物貢獻度的不同,發(fā)酵后期的關鍵風味化合物主要有丁酸乙酯、二氫草莓酸乙酯、異丁醛、乙酸異戊酯、己酸乙酯、辛酸乙酯,其在總體風味上起關鍵性作用。對貝氏酵母發(fā)酵終點的荔枝果酒進行感官評價,綜合感官評分為76,樣品具有果香和酒香。本研究分析了貝氏酵母發(fā)酵荔枝果酒揮發(fā)性風味物質的變化,為貝氏酵母應用于荔枝果酒的發(fā)酵提供一定的理論與實踐依據(jù)。此外,在揮發(fā)性成分的測定方法上還可利用氣相色譜-質譜聯(lián)用和氣相色譜嗅覺測量技術測定分析,進一步分析貝氏酵母對荔枝酒揮發(fā)性風味物質的影響,便于更全面的探究貝氏酵母的發(fā)酵特征。

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