熊昊杰,申晨晨,馬 艷
(新疆醫(yī)科大學(xué)公共衛(wèi)生學(xué)院,烏魯木齊 830017)
砷是廣泛分布于自然界的類金屬元素,流行病學(xué)調(diào)查、動物及體外實驗表明,砷具有神經(jīng)毒性。大腦作為砷中毒的靶器官之一,砷可以透過血腦或胎盤屏障在腦組織中蓄積,長期接觸會導(dǎo)致慢性砷中毒進而增加神經(jīng)系統(tǒng)紊亂的風(fēng)險,由于神經(jīng)細胞對有毒物質(zhì)較為敏感且不易再生,使得砷對神經(jīng)系統(tǒng)的毒性研究顯得尤為重要[1-4]。目前砷致神經(jīng)發(fā)育毒性的具體機制尚不明確,多集中在凋亡[5]、氧化應(yīng)激[6]、信號通路改變[7-8]等方面,而河馬(Hippo)信號通路中轉(zhuǎn)錄共激活因子Yes相關(guān)蛋白(Yes-associated protein,YAP)分子的激活和調(diào)控是影響細胞凋亡的關(guān)鍵因素之一[9-10]。小鼠神經(jīng)干細胞(NE-4C細胞)是一種處于胚胎發(fā)育早期的神經(jīng)細胞,是研究神經(jīng)發(fā)育毒性的常用細胞模型,因此本研究選用NE-4C細胞作為受試對象來探究亞砷酸鈉對NE-4C細胞活力及YAP蛋白表達的影響,為進一步探索砷的神經(jīng)發(fā)育毒性機制提供依據(jù)。
1.1材料與試劑小鼠神經(jīng)干細胞(NE-4C細胞,廣州吉妮歐公司);亞砷酸鈉(iAs3+,分析純,北京化學(xué)試劑三廠);胎牛血清(美國Sigma公司);MEM低糖培養(yǎng)基(美國HyClone公司);0.25%胰蛋白酶、青鏈霉素混合液、谷氨酰胺、PBS緩沖液(美國HyClone公司);RIPA裂解液、細胞裂解液、BCA蛋白濃度測定試劑盒、SDS-PAGE凝膠制備試劑盒(北京索萊寶公司);GAPDH單克隆抗體(北京博奧森公司,bs-2188R,稀釋比1∶1 000);兔抗小鼠YAP單克隆抗體(美國CST公司,#14074,稀釋比1∶1 000)、兔抗小鼠P-YAP單克隆抗體(美國CST公司,#13 008,稀釋比1∶1 000);二抗Anti-rabbit IgG-HRP(美國CST公司,#7074,稀釋比1∶40 000);Revert Aid First Strand cDNA Synthesis Kit、QuantiNova SYBR Green PCR Kit(日本TAKARA公司);高速離心機(美國Sigma公司);電泳儀(美國Bio-Rad公司);化學(xué)發(fā)光凝膠成像儀(美國Protein Simple公司);三色預(yù)染marker、PCR儀(美國ThermoFisher Scientific公司)。
1.2方法
1.2.1 細胞培養(yǎng)及分組 NE-4C細胞用含10%胎牛血清的MEM(含10%FBS、1%青霉素-鏈霉素、1%谷氨酰胺)于5%CO2,37℃條件下培養(yǎng),隔天換液,用0.5%胰蛋白酶消化,傳代培養(yǎng),取對數(shù)生長期細胞開展后續(xù)實驗。藥物干預(yù)時間按照參考文獻及預(yù)實驗結(jié)果確定干預(yù)時長為48 h;實驗分組按照亞砷酸鈉干預(yù)細胞48 h的IC50=1.608 μmol/L分為0(對照組)、0.4、0.8、1.6、2.4、3.2 μmol/L組。
1.2.2 倒置顯微鏡觀察細胞形態(tài) 亞砷酸鈉干預(yù)后,于倒置顯微鏡下觀察各組細胞形態(tài)學(xué)變化,并進行拍照。
1.2.3 CCK-8檢測細胞活力 取對數(shù)生長期細胞將細胞接種至96孔板中,每孔個數(shù)為3×103個,每組設(shè)置3個復(fù)孔,放入37℃培養(yǎng)箱過夜,細胞貼壁后給予不同濃度亞砷酸鈉干預(yù)48 h,之后每孔加入10 μL的CCK-8試劑,37℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)1~2 h,酶標儀測定450 nm吸光度值。
1.2.4 Western Blot檢測YAP、P-YAP蛋白表達 染毒結(jié)束后,收集細胞于冰上裂解30 min后、4℃,12 000 r/min離心10 min,取上清進行BCA蛋白定量。蛋白變性后取20~30 μg進行上樣,電泳、轉(zhuǎn)膜,5%的脫脂奶粉封閉2 h,一抗4℃孵育過夜,1×TBST洗膜3次,每次10 min,二抗室溫孵育1 h,洗膜3次后進行顯影,采用Image J進行灰度值分析。
1.2.5 qRT-PCR檢測YAP下游靶基因mRNA表達 染毒結(jié)束后,收集細胞利用Trizol法提取細胞RNA,并測定樣品的濃度和純度。根據(jù)反轉(zhuǎn)錄試劑盒說明書將總RNA為模板反轉(zhuǎn)錄合成cDNA,利用Primer-Blast軟件設(shè)計合成Gapdh(上游:GGTTGTCTCCTGCGACTTCA、下游:TGGTCCAGGGTTTCTTACTCC)、Gli2(上游:GCTCCACACACCCGCAACAC、下游:CTCAGCATCGTCACTTCGGTCAG)、Tead1(上游:GATGAGCGACTCGGCAGATAAGC、下游:TCCCACACGGCGGATAGATAGC)、Tead2(上游:GCCGTCGCAAGATCATCCTGTC、下游:AATATGGCTGGAGACCTGCTTTCG)的熒光定量PCR引物。根據(jù)熒光定量試劑盒說明書建立熒光定量PCR反應(yīng)體系。進行實時熒光定量PCR,采用2-ΔΔCt值表示mRNA的相對表達量。
擴增條件為95℃預(yù)變性30 s;PCR反應(yīng)95℃變性5 s,60℃ 34 s,各個基因的退火溫度不同(GAPDH60℃、Gli2 63℃、Tead1 63℃、Tead2 63℃)退火1 min,40個循環(huán)。每個樣本重復(fù)3次實驗,以GAPDH作為內(nèi)參,運用2-ΔΔCt法進行計算并分析各個基因的相對表達量。
2.1亞砷酸鈉對NE-4C細胞形態(tài)的影響倒置顯微鏡觀察細胞形態(tài)學(xué)改變,發(fā)現(xiàn)0 μmol/L組細胞生長狀態(tài)良好,細胞呈梭形,界限清楚,細胞密度80%~90%,隨著亞砷酸鈉濃度增加細胞數(shù)目呈現(xiàn)下降,細胞形態(tài)發(fā)生變化,梭形“觸角”開始萎縮,細胞多以單個細胞形態(tài)存在,2.4、3.2 μmol/L組細胞失去原本的形態(tài),上清液中漂浮細胞及細胞碎片增加,貼壁能力顯著下降,出現(xiàn)大面積死亡,見圖1。
2.2亞砷酸鈉對NE-4C細胞活力的影響CCK-8結(jié)果顯示,不同濃度亞砷酸鈉對NE-4C細胞增殖具有抑制作用,且存在劑量效應(yīng)關(guān)系,與0 μmol/L組比較,除0.4 μmol/L組外,其余各組細胞活力均下降,且差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。見表1。
表1 亞砷酸鈉對NE-4C細胞活力的影響
2.3亞砷酸鈉對NE-4C細胞YAP、P-YAP蛋白表達的影響Western Blot結(jié)果顯示,P-YAP蛋白表達水平下調(diào),YAP蛋白表達水平上調(diào)。與0 μmol/L組比較,1.6、2.4、3.2 μmol/L組P-YAP蛋白表達水平下降,1.6、2.4、3.2 μmol/L組YAP蛋白表達水平升高,1.6、2.4、3.2 μmol/L組P-YAP/YAP相對表達水平降低,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P均<0.05),見表2。
表2 亞砷酸鈉對NE-4C細胞YAP、P-YAP蛋白表達的影響
續(xù)表2:
2.4亞砷酸鈉對YAP下游靶基因mRNA表達的影響檢測YAP下游靶基因表達水平結(jié)果顯示,Gli2、Tead1、Tead2 mRNA表達水平隨亞砷酸鈉濃度的升高而升高,與0 μmol/L組比較,1.6、2.4、3.2 μmol/L組Gli2 mRNA表達水平升高,2.4、3.2 μmol/L組Tead1 mRNA表達水平升高,0.4、0.8、1.6、2.4、3.2 μmol/L組Tead2 mRNA表達水平升高,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P均<0.05)。見表3。
表3 亞砷酸鈉對YAP下游靶基因mRNA表達的影響
砷是一種公認的具有遺傳毒性的環(huán)境污染物,研究表明砷具有神經(jīng)發(fā)育毒性,其可通過胎盤、血腦屏障進入腦組織中,對子代神經(jīng)發(fā)育、成人中樞和外周神經(jīng)系統(tǒng)造成不同程度的損傷,砷暴露還可引起神經(jīng)元細胞、星形膠質(zhì)細胞等神經(jīng)細胞死亡[11-14]。王念等[3]研究發(fā)現(xiàn),砷暴露可引起大鼠腎上腺嗜鉻細胞瘤細胞(PC12細胞)縮小、細胞間隙變寬和死細胞增多等顯著細胞形態(tài)學(xué)改變,同時砷可明顯降低PC12細胞的存活率。本研究結(jié)果發(fā)現(xiàn)NE-4C細胞對亞砷酸鈉較為敏感,較低濃度亞砷酸鈉干預(yù)即可對細胞造成毒性損傷作用,隨亞砷酸鈉濃度的升高細胞形態(tài)改變,活力降低,存在劑量效應(yīng)關(guān)系。
YAP是哺乳動物中Hippo信號通路的主要下游效應(yīng)分子,當Hippo信號通路激活時,YAP被上游激活轉(zhuǎn)變?yōu)镻-YAP,隨后與14-3-3蛋白結(jié)合而滯留在細胞質(zhì)中或經(jīng)泛素化后降解,無法發(fā)揮增殖的特性,當Hippo信號通路關(guān)閉或該通路核心成員缺失時會促進YAP/TAZ入核水平增加,與轉(zhuǎn)錄因子TEAD等結(jié)合并誘導(dǎo)與細胞增殖、遷移相關(guān)基因的表達[14]。YAP和TAZ的作用主要是在TEAD1-4介導(dǎo)下進行,YAP/TAZ不可以與DNA直接結(jié)合,其只能作為TEAD1-4的轉(zhuǎn)錄共激活因子參與調(diào)控[15],同時也有研究認為YAP和TAZ與其他幾個轉(zhuǎn)錄因子也有關(guān)聯(lián),諸如膠質(zhì)瘤相關(guān)癌基因同源蛋白2[16](Gli2)、TEA結(jié)構(gòu)域家族轉(zhuǎn)錄因子 1(Tead1)、TEA結(jié)構(gòu)域家族轉(zhuǎn)錄因子 2(Tead2)等基因均可被與YAP/TAZ結(jié)合的TEAD轉(zhuǎn)錄激活。
本研究前期結(jié)果顯示雖然砷可上調(diào)Hippo信號通路的多個成分,包括SAV1、MOB1、P-LATS1,進而激活Hippo信號通路,然而在NE-4C細胞中該通路的激活不同于傳統(tǒng)Hippo信號通路,本研究中Hippo信號通路的激活并沒有抑制YAP的表達。YAP蛋白表達變化呈升高趨勢,P-YAP蛋白表達則明顯降低,基于磷酸化蛋白的特殊性,本研究對各組P-YAP/YAP的比值進行比較后發(fā)現(xiàn),其相對表達水平呈下降趨勢,提示P-YAP在細胞質(zhì)中的表達下降,進而導(dǎo)致YAP入核水平增加,并上調(diào)下游的靶基因Gli2、Tead1、Tead2 mRNA的表達水平。Li等[17]對小鼠Hippo信號通路核心分子進行檢測時發(fā)現(xiàn),亞砷酸鈉上調(diào)了Hippo信號通路中的多個蛋白的表達水平,而P-YAP的表達水平下降,考慮其原因是砷可能會誘導(dǎo)一種PP2A磷酸酶使P-YAP去磷酸化,從而使其從14-3-3蛋白中浸出,而14-3-3蛋白已知有助于P-YAP在細胞質(zhì)中被降解。最近另一項研究表明[18],在Hippo信號通路失活情況下,YAP可作為一種壓力感受器,選擇性地消除受損肝細胞,即在細胞應(yīng)激的作用下,將細胞從增殖轉(zhuǎn)變?yōu)榈蛲?,這與本研究前期實驗結(jié)果相一致,在NE-4C細胞遭遇一定損傷情況下,YAP自身活化以清除那些受損細胞,即YAP蛋白表達水平雖然上調(diào),但NE-4C細胞活力隨亞砷酸鈉濃度的增加而降低。此外,YAP蛋白表達水平增加提示YAP入核水平增加以激活下游靶基因的轉(zhuǎn)錄,有研究發(fā)現(xiàn),MST1/2、SAV1、MOB1A/B、LATS1/2核心分子缺失或YAP的過表達小鼠模型均表現(xiàn)出TEAD等靶基因表達水平升高、祖細胞增殖增加和組織過度生長的現(xiàn)象。Lu等[19]在人正常肝細胞(LX-2)細胞實驗中發(fā)現(xiàn),泮托拉唑(PPZ)可通過阻斷YAP表達來抑制Gli2 mRNA的表達,以上發(fā)現(xiàn)均支持YAP的激活可調(diào)控Gli2、Tead1、Tead2等下游靶基因的轉(zhuǎn)錄。
綜上所述,亞砷酸鈉可能通過其他途徑激活YAP進而上調(diào)下游靶基因表達水平,而又因亞砷酸鈉對細胞的毒性損傷作用,使YAP應(yīng)激性地清除受損細胞導(dǎo)致細胞的增殖能力下降,但具體機制還有待進一步深入探討。