郭 琦, 王向斌, 黃 茜, 梁子怡, 王心雨, 劉慧芬*
(河南師范大學(xué)水產(chǎn)學(xué)院, 河南新鄉(xiāng) 453007)
抗繆勒氏管激素(Anti-Müllerian hormone,Amh)又稱繆勒氏管抑制物, 是轉(zhuǎn)化生長因子-β(Transforming growth factor-β,TGF-β) 超家族中的一員[1]。在哺乳動物中,Amh表達于精巢的支持細胞,可引起繆勒氏管的退化,維持雄性特征[2]。 雌性個體中,Amh在原始卵泡的募集以及優(yōu)勢卵泡選擇中發(fā)揮重要作用[3]。 雖然絕大多數(shù)魚類沒有繆勒氏管,但是卻保留了Amh基因。 2002年在日本鰻鱺中發(fā)現(xiàn)Amh基因,主要在支持細胞中表達,與精子發(fā)生有關(guān)[4]。 硬骨魚類中,雖然Amh主要在雄性性別分化中發(fā)揮關(guān)鍵作用,但其在雌性卵巢中也有表達。 在斑馬魚中敲除Amh基因會導(dǎo)致卵巢肥大,初級卵母細胞數(shù)量顯著增多,卵母細胞發(fā)育進程受阻[5]。 使用花鰭骨AMH重組蛋白對卵母細胞進行體外孵育, 結(jié)果發(fā)現(xiàn)AMH重組蛋白可以促進花鰭骨卵母細胞成熟[6]。這說明Amh在魚類性腺發(fā)育過程中發(fā)揮一定作用。
大口黑鱸(Micropterus salmoides),又名加州鱸,隸屬于鱸形目 (Perciformes)、 太陽魚科(Cehtrachidae)、黑鱸屬(Micropterus),具有肉質(zhì)鮮美、抗病力強、 生長迅速、 適溫范圍較廣等優(yōu)點。 大口黑鱸自1983年被引入內(nèi)地以來, 在全國多地區(qū)實現(xiàn)了人工養(yǎng)殖[7]。目前關(guān)于大口黑鱸品種開發(fā)、營養(yǎng)品質(zhì)、養(yǎng)殖模式分析等方面已有較多研究, 但是有關(guān)其性腺發(fā)育及相關(guān)分子調(diào)控機制的研究鮮有報道。
本研究利用已經(jīng)獲得的大口黑鱸Amh基因cDNA全長序列,構(gòu)建原核表達載體,制備多克隆抗體,以期為研究Amh基因的功能及其在大口黑鱸性腺發(fā)育中的分子機制提供參考。
大口黑鱸購自于新鄉(xiāng)市洪門鎮(zhèn)鱸魚養(yǎng)殖基地,暫養(yǎng)于河南師范大學(xué)水產(chǎn)養(yǎng)殖基地。 用于多克隆抗體制備的小鼠購自華蘭生物工程股份有限公司。
感受態(tài)細胞、限制性內(nèi)切酶、pET-32a(+)載體等購自寶日醫(yī)生物技術(shù)(北京)有限公司。 彩虹180廣譜蛋白Marker、 弗氏佐劑等購自北京索萊寶科技有限公司。His Tag HP鎳柱購自上海生工生物工程股份有限公司。 實驗所用引物均由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。
根據(jù)Amh基因序列, 選擇合適的區(qū)域設(shè)計特異性引物, 同時根據(jù)原核表達載體pET32a的圖譜選取酶切位點,具體信息見表1:
表1 重組載體引物
以大口黑鱸卵巢cDNA為模板,通過PCR擴增序列、 瓊脂糖凝膠電泳回收PCR產(chǎn)物。 將回收產(chǎn)物和pET-32a質(zhì)粒用BamH I 和Xho I限制性內(nèi)切酶雙酶切(37℃,過夜),酶切產(chǎn)物純化后,構(gòu)建重組表達載體pET32a-AMH。 將重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)化至BL21感受態(tài)細胞中,挑選陽性克隆送至生工生物工程(上海)股份有限公司測序, 采用DNAMAN軟件對測序結(jié)果進行比對分析,以判斷目的基因是否正確插入載體。
將陽性表達菌接入LB液體培養(yǎng)基中進行擴大培養(yǎng)(取部分菌液作為對照),37℃震蕩培養(yǎng)至OD6000.5左右, 向其中加入IPTG (Isopropyl β-D- Thiogalactopyranoside,終濃度1 mmol/L)進行誘導(dǎo)表達,37℃震蕩培養(yǎng),在培養(yǎng)6 h、8 h、10 h及12 h后取材,12000 rpm離心20 min,收集沉淀。菌體沉淀以4×loading buffer重懸裂解,隨后使用SDS-PAGE對總菌體、沉淀和上清進行檢測。
用上述條件大量誘導(dǎo)蛋白, 在室溫下8000 rpm離心5 min收集菌體, 加入適量變性結(jié)合緩沖液,超聲波破碎 (破3 s, 停3 s, 功率50%, 破碎總時間30 min),獲得融合蛋白,用His Tag HP柱純化蛋白。蛋白純化所需試劑配制及操作方法參照馮軍廠的方法[8]。 用純化透析后的融合蛋白免疫小鼠,每隔一周加強免疫一次, 首次將融合蛋白與弗氏完全佐劑等比混合后對小鼠進行皮下注射, 之后每次將融合蛋白與弗氏不完全佐劑等比混合后注射,4周后采血獲得抗血清。
利用酶聯(lián)免疫 (enzyme linked immunosorbent assay,ELISA)法檢測制備抗體的效價,測定時以未免疫的小鼠血清作為陰性對照。
采用SPSS 22.0統(tǒng)計分析, 不同組之間的差異顯著性(P<0.05)采用單因素方差分析(ANOVA)進行檢驗,Duncan氏方法多重比較, 實驗數(shù)據(jù)均使用平均值±標(biāo)準(zhǔn)誤(mean ± SE)表示。
以大口黑鱸卵巢cDNA為模板進行擴增,獲得的目的片段與預(yù)期大小一致 (圖1 a)。 重組質(zhì)粒pET32a-AMH經(jīng)單雙酶切驗證, 檢測目的片段已成功導(dǎo)入表達載體(圖1 b)。 隨后,將產(chǎn)物進行純化、測序,結(jié)果表明構(gòu)建的pET32a-AMH正確。
圖1 Amh目的片段擴增及驗證
構(gòu)建好的重組質(zhì)粒pET32a-AMH轉(zhuǎn)入大腸桿菌BL21。 隨后采用IPTG在16℃下進行誘導(dǎo),SDS-PAGE檢測發(fā)現(xiàn),在52.3 kDa左右出現(xiàn)目的條帶,而對照在同一區(qū)域未出現(xiàn)特異條帶, 表明重組表達載體pET32a-AMH構(gòu)建成功。 誘導(dǎo)后菌體經(jīng)超聲破碎、離心、SDSPAGE電泳分析表明重組蛋白主要存在于沉淀中。
對誘導(dǎo)菌液進行收集、破碎,利用親和純化的方法,對AMH融合蛋白進行純化。使用不同濃度咪唑洗脫液洗脫蛋白,SDS-PAGE 電泳檢測結(jié)果顯示,100 mM咪唑洗脫時開始檢測到目的蛋白;150 mM和200 mM咪唑洗脫時,檢測到大量的目的蛋白,但是200 mM 咪唑濃度洗脫時,獲得的目的蛋白純度更高(圖2)。經(jīng)透析去除雜質(zhì),SDS-PAGE電泳檢測結(jié)果顯示,純化后的雜蛋白明顯減少,條帶較為單一,可用于后續(xù)實驗(圖3)。
圖3 AMH重組蛋白不同濃度咪唑洗脫結(jié)果
圖4 AMH重組蛋白純化
經(jīng)過4次免疫,獲得鼠源AMH抗血清。 使用酶聯(lián)免疫吸附方法對獲得的多克隆抗體血清進行效價測定,結(jié)果顯示多克隆抗體的效價為2.7×105,可為后續(xù)實驗提供原材料。
抗繆勒氏管激素是轉(zhuǎn)化生長因子家族成員之一,在哺乳動物中具有調(diào)節(jié)細胞發(fā)育及分化,誘導(dǎo)繆勒氏管退化,維持雄性特征的作用。當(dāng)前已有較多研究表明,Amh在哺乳動物卵巢發(fā)育過程中發(fā)揮一定作用。 在硬骨魚類中,Amh多被當(dāng)作雄性性別分化關(guān)鍵基因。 尼羅羅非魚XX個體中,amhy的過表達導(dǎo)致了雌性到雄性的性逆轉(zhuǎn)[9]。 也有研究表明,Amh在雌性個體卵巢發(fā)育過程中發(fā)揮一定作用。 在黑鯛研究中發(fā)現(xiàn),Amh在卵巢發(fā)育早期不表達,在卵黃蛋白原合成期表達量升高[10]。 斑馬魚中的研究發(fā)現(xiàn),Amh缺失會導(dǎo)致雌魚性腺發(fā)育不良,卵泡發(fā)生受阻[11]。 這說明,Amh基因在魚類性腺發(fā)育過程中發(fā)揮重要作用。
原核表達是外源基因融合表達的方式之一, 具有易培養(yǎng)、生長快、操作簡單等優(yōu)點[12]。 多克隆抗體具有穩(wěn)定性較好、制備技術(shù)要求不高、周期短、成本低等優(yōu)點,廣泛用于蛋白亞細胞定位、蛋白互作、細胞信號通路等研究領(lǐng)域[13]。 本研究利用獲得的大口黑鱸Amh基因序列,成功構(gòu)建pET32a-AMH原核表達載體,誘導(dǎo)出大小為52.3kDa的AMH重組蛋白, 與奧利亞羅非魚49kDa的AMH重組蛋白[14]及雙須骨舌魚48kDa的AMH重組蛋白[15]大小相近。隨后通過免疫小鼠,獲得AMH多克隆抗體,利用ELISA對抗體血清進行效價檢測,結(jié)果顯示多克隆抗體的效價為2.7×105,可用于后續(xù)研究。
本研究通過構(gòu)建大口黑鱸AMH原核表達載體,獲得AMH重組蛋白,利用重組蛋白對小鼠進行免疫,獲得AMH多克隆抗體。 獲得的大口黑鱸AMH重組蛋白和多克隆抗體可為后續(xù)研究Amh在大口黑鱸中的功能和作用機制提供基礎(chǔ)。