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        BPIV3 NP蛋白的原核表達(dá)及其對(duì)BPIV3滅活疫苗免疫增強(qiáng)作用的研究

        2022-08-23 02:40:02王宇琛田廣原周雅坪趙紅梅孫雅婕趙逢淼卞宇晨于佳梁郝永清
        中國畜牧獸醫(yī) 2022年8期
        關(guān)鍵詞:效價(jià)活疫苗質(zhì)粒

        王宇琛,田廣原,周雅坪,郭 婷,趙紅梅,孫雅婕,趙逢淼,卞宇晨,于佳梁,郝永清

        (內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué),獸醫(yī)微生物學(xué)與免疫學(xué)實(shí)驗(yàn)室,呼和浩特 010018)

        牛副流感病毒3型(Bovine parainfluenza virus type 3,BPIV3)在世界范圍內(nèi)分布,是引起犢牛和成年牛呼吸道疾病綜合征(BRDC)的主要病原之一[1]。發(fā)病牛精神萎縮,食欲不振,伴隨著嚴(yán)重的呼吸道癥狀。一些發(fā)病的牛體溫升高,甚至呼吸困難[2]。感染BPIV3的牛肺臟組織會(huì)出現(xiàn)漸進(jìn)式的損傷,并引起免疫抑制,在不合理的飼養(yǎng)或長途運(yùn)輸刺激的情況下會(huì)導(dǎo)致細(xì)菌或支原體的繼發(fā)感染,大大增加牛的死亡率[3]。目前疫苗接種是預(yù)防和控制該疾病的重要措施。BPIV3疫苗在中國尚未使用[4],因此迫切需要開展相關(guān)疫苗研究,以有效預(yù)防和控制BPIV3感染。

        BPIV3是副黏病毒亞科(Paramyxovirinae)呼吸道病毒屬(Respirovirus)的單分子負(fù)鏈RNA病毒,具有血凝素和神經(jīng)氨酸酶活性,其基因組至少編碼6種蛋白,包括NP、P、M、F、HN和L蛋白[5-6]。其中NP蛋白為核衣殼蛋白,約含515個(gè)氨基酸,單體呈螺旋狀結(jié)構(gòu),大量的NP蛋白構(gòu)成中空管道狀結(jié)構(gòu),即病毒的核衣殼[7]。病毒被NP蛋白包裹,避免了核酸酶對(duì)病毒RNA的降解。NP蛋白含有2個(gè)結(jié)構(gòu)域:與RNA結(jié)合的N-端結(jié)構(gòu)域,高度保守;C-端結(jié)構(gòu)域,裸露于核衣殼表面,含有對(duì)蛋白酶敏感的磷酸化位點(diǎn)和抗原結(jié)合位點(diǎn)。因此,NP蛋白具有較好的免疫原性,可刺激機(jī)體產(chǎn)生相應(yīng)的免疫應(yīng)答[8]。

        本試驗(yàn)設(shè)計(jì)針對(duì)NP基因的特異性引物,原核表達(dá)BPIV3 NP蛋白并將其與BPIV3滅活疫苗共同免疫新西蘭白兔,以此驗(yàn)證NP蛋白是否對(duì)BPIV3滅活疫苗具有免疫增強(qiáng)作用,以期為研制新型的BPIV3疫苗產(chǎn)品提供依據(jù),為BPIV3滅活疫苗的免疫方法優(yōu)化提供思路。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        BPIV3(病毒滴度為3.162×107TCID50/mL)、pET-32a(+)質(zhì)粒、牛腎細(xì)胞MDBK(CSTR:19375.09.3101BOVGNO7)均保存于內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué)獸醫(yī)學(xué)院微生物學(xué)與免疫學(xué)實(shí)驗(yàn)室。2~3月齡2.5 kg健康雄性新西蘭白兔購自呼和浩特周邊養(yǎng)殖場(chǎng)。

        AxyPrep總RNA小量制備試劑盒、AxyPrep DNA凝膠回收試劑盒、AxyPrep質(zhì)粒DNA小量試劑盒(康寧生命科學(xué)有限公司);Ni-IDA蛋白純化試劑盒及BCA法蛋白質(zhì)濃度測(cè)定試劑盒(增強(qiáng)型)、脫脂乳(生工生物工程(上海)股份有限公司);EasyScript One-Step gDNA Removal and cDNA Synthesis SuperMix反轉(zhuǎn)錄試劑盒、大腸桿菌BL21(DE3)感受態(tài)細(xì)胞(北京全式金生物技術(shù)有限公司);T4 DNA連接酶、DNA聚合酶、限制性內(nèi)切酶(TaKaRa公司);山羊源BPIV3標(biāo)準(zhǔn)陽性血清(VMRD公司);辣根過氧化物酶(HRP)標(biāo)記的兔抗山羊IgG、HRP標(biāo)記的山羊抗兔IgG(北京博奧森生物技術(shù)有限公司)。

        1.2 NP蛋白生物信息學(xué)分析及引物設(shè)計(jì)與合成

        根據(jù)GenBank公布的BPIV3NP基因組序列(登錄號(hào):KU198929.1),利用DNAStar對(duì)BPIV3NP基因的抗原性、親水性及表面可及性進(jìn)行分析,篩選主要抗原域。根據(jù)生物信息學(xué)分析結(jié)果,選擇NP基因優(yōu)勢(shì)片段,通過Primer Premier 5.0軟件設(shè)計(jì)1段針對(duì)NP基因抗原優(yōu)勢(shì)片段的特異性引物,同時(shí)加入EcoRⅠ、XholⅠ酶切位點(diǎn)(下劃線處)及保護(hù)性堿基,引物序列為:F:5′-CGGAATTCCGG-TTAGAGGCATTTAGACAAGACG-3′;R:5′-CC-CTCGAGGGTCACGTGCCACTGCTTGACCTAG-TT-3′,引物由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。

        1.3 NP基因擴(kuò)增及表達(dá)載體的構(gòu)建

        利用總RNA小量制備試劑盒及EasyScript One-Step gDNA Removal and cDNA Synthesis SuperMix提取BPIV3基因組總RNA并反轉(zhuǎn)錄為cDNA,PCR擴(kuò)增NP基因。PCR反應(yīng)體系50 μL:5×Prime STAR Buffer (Mg2+Plus)10 μL,上、下游引物(10 μmol/L)各1 μL,dNTP Mixture (2.5 mmol/L)4 μL,PrimeSTAR HS DNA Polymerase (2.5 U/μL)0.5 μL,cDNA模板1 μL,ddH2O 32.5 μL。PCR反應(yīng)條件:95 ℃預(yù)變性5 min;95 ℃變性30 s,60 ℃退火45 s,72 ℃延伸1 min,共32個(gè)循環(huán);72 ℃終延伸10 min;4 ℃保存。PCR產(chǎn)物進(jìn)行1.0%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè),將目的片段用DNA凝膠回收試劑盒回收后獲得NP基因并送至生工生物工程(上海)股份有限公司測(cè)序。

        利用限制性內(nèi)切酶EcoRⅠ和XholⅠ對(duì)測(cè)序結(jié)果正確的NP基因及pET-32a(+)表達(dá)質(zhì)粒進(jìn)行雙酶切,經(jīng)1.0%瓊脂糖凝膠電泳回收后通過T4 DNA連接酶16 ℃過夜連接,連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化大腸桿菌BL21(DE3)感受態(tài)細(xì)胞,然后涂布于氨芐抗性的LB固體培養(yǎng)基上,過夜培養(yǎng)后通過菌落PCR篩選陽性菌落,擴(kuò)大培養(yǎng)陽性菌落后提取質(zhì)粒,進(jìn)行雙酶切鑒定,對(duì)酶切正確的質(zhì)粒進(jìn)行測(cè)序,最后獲得重組質(zhì)粒并命名為pET-32a-NP。

        1.4 重組蛋白的誘導(dǎo)表達(dá)及可溶性分析

        將陽性菌液1∶100接種于含氨芐抗生素的LB液體培養(yǎng)基中,在37 ℃、180 r/min的恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)至D450 nm值為0.6~0.8時(shí),加入終濃度為1 mmol/L的IPTG,37 ℃、180 r/min誘導(dǎo)表達(dá)4 h;將誘導(dǎo)表達(dá)后的菌液8 000 r/min離心10 min,棄上清,用PBS重懸,反復(fù)3次。超聲波破碎后,12 000 r/min離心10 min并分離上清和沉淀,將其與pET-32a(+)空質(zhì)粒進(jìn)行SDS-PAGE,觀察重組蛋白質(zhì)的表達(dá)情況并分析其可溶性。

        1.5 重組蛋白包涵體溶解

        將誘導(dǎo)表達(dá)菌液4 ℃、8 000 r/min離心10 min后將菌體沉淀按10∶1的比例用含8 mol/L尿素的Tris-HCl緩沖液重懸,冰上超聲破碎至清亮(250 W,超聲4 s,間歇5 s,功率35%)后4 ℃、12 000×g離心15 min,收集上清,將沉淀用含8 moL/L尿素的Tris-HCl緩沖液重懸,繼續(xù)超聲5 min,4 ℃、12 000×g離心20 min,取上清,獲得裂解的包涵體。

        1.6 重組蛋白的純化

        將已裂解的重組蛋白包涵體用0.45 μL濾器過濾,按照Ni-IDA蛋白純化試劑盒說明書純化蛋白,用Bingding Buffer平衡Ni層析柱,將過濾后的蛋白加入層析柱,冰上結(jié)合 1 h,用Washing Buffer和Elution Buffer洗層析柱,分別收集洗脫后的液體,進(jìn)行SDS-PAGE鑒定。

        1.7 重組蛋白包涵體的復(fù)性

        將透析袋在大體積的2% NaHCO3和1 mmol/L EDTA(pH 8.0)中煮沸10 min,用蒸餾水清洗干凈,然后再將透析袋在1 mmol/L EDTA(pH 8.0)中煮沸10 min,徹底清洗透析袋。采用梯度透析法將重組蛋白復(fù)性。

        1.8 重組蛋白Western blotting檢測(cè)

        純化后的重組蛋白包涵體經(jīng)SDS-PAGE分析后,14 V 30 min轉(zhuǎn)移至PVDF膜上,用5%脫脂乳37 ℃封閉4 h;用TBST緩沖液洗滌5次,每次10 min;加入山羊源BPIV3陽性血清(1∶2 000)作為一抗,4 ℃過夜孵育;用TBST緩沖液洗滌5次,每次10 min;用HRP標(biāo)記的鼠抗山羊IgG(1∶6 000)作為二抗,在室溫?fù)u床孵育2 h;用TBST緩沖液洗滌5次,每次10 min;用ECL顯色。

        1.9 重組蛋白對(duì)BPIV3滅活疫苗免疫原性的影響

        用BCA法蛋白濃度測(cè)定試劑盒測(cè)定濃縮后的蛋白。用0.3%甲醛滅活病毒滴度為3.162×107TCID50/mL的BPIV3,制備滅活疫苗。將8只新西蘭白兔分成4組,每組2只,分別為滅活疫苗組、NP蛋白組、滅活疫苗和NP蛋白混合組和弗氏佐劑對(duì)照組。各免疫組免疫劑量如表1所示,注射體積均為1 mL,對(duì)照組為500 μL PBS與500 μL佐劑混合注射。首免采用弗氏完全佐劑1∶1混合,14 d后進(jìn)行二免,并更換為弗氏不完全佐劑,免疫途徑為肌內(nèi)注射,免疫前稱量體重保證試驗(yàn)穩(wěn)定性,從首免前采血后每隔7 d采集血液分離血清。

        表1 免疫分組及免疫劑量

        1.10 間接ELISA方法測(cè)特異性抗體滴度

        將BPIV3 NP蛋白稀釋到4 μg/mL后包被于96孔酶標(biāo)板上,每孔100 μL,4 ℃過夜包被,棄液,洗滌5次,每次2 min;將1% BSA溶液作為封閉液加入到96孔板中,每孔100 μL,37 ℃放置2 h,洗滌,烘干;將制備好的免疫前血清和免疫后7、14、21和28 d的血清從1∶2開始倍比稀釋到1∶224,同時(shí)設(shè)立稀釋度為1∶100的陽性和陰性對(duì)照,每孔100 μL,37 ℃反應(yīng)1 h,洗滌;加100 μL 1∶5 000稀釋的酶標(biāo)二抗,于37 ℃反應(yīng)1 h,洗滌;每孔加入100 μL 20% TMB顯色液,避光反應(yīng)10 min后加入50 μL終止液,用酶標(biāo)儀測(cè)定D450 nm值。

        1.11 血清中和試驗(yàn)測(cè)中和抗體滴度

        將采集的血液樣品于4 ℃靜置過夜,3 000×g離心5 min,吸取上清即為待檢血清。將血清2倍倍比稀釋到2-8,放置于56 ℃水浴鍋滅活30 min。將病毒稀釋到100 TCID50/200 μL,病毒稀釋液與血清稀釋液按1∶1等量混合均勻,37 ℃培養(yǎng)1 h,接種于96孔細(xì)胞培養(yǎng)板中,每個(gè)稀釋度的血清樣品接4孔,每孔200 μL,設(shè)立只接毒的陽性對(duì)照和陰性對(duì)照。置于37 ℃恒溫培養(yǎng)箱中,逐日觀察細(xì)胞病變。

        2 結(jié) 果

        2.1 NP基因主要抗原域

        用DNAStar軟件中的Protean篩選出基因編碼靠近C-端的193-368位氨基酸序列為主要抗原域,含有抗原結(jié)合位點(diǎn),平均抗原指數(shù)在0.4~1.7之間,親水指數(shù)為0~1.5,親水性和表面可及性較高(圖1)。

        圖1 BPIV3 NP 基因主要抗原域分析Fig.1 Analysis of major antigenic domains of BPIV3 NP gene

        2.2 NP基因擴(kuò)增

        提取BPIV3基因組總RNA,對(duì)NP基因抗原區(qū)片段進(jìn)行RT-PCR擴(kuò)增,獲得大小為525 bp的目的片段(圖2),與試驗(yàn)預(yù)期相符。

        M,Trans2K DNA Marker;1~4,NP基因;5,陰性對(duì)照M,Trans2K DNA Marker;1-4,NP gene;5,Negative control圖2 BPIV3 NP基因RT-PCR擴(kuò)增結(jié)果Fig.2 Results of RT-PCR amplification of BPIV3 NP gene

        2.3 NP基因重組表達(dá)載體的構(gòu)建及鑒定

        將鑒定為陽性的pET-32a-NP重組質(zhì)粒進(jìn)行雙酶切,通過1.0%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè),得到大小約為5 900和525 bp的2條片段(圖3),符合預(yù)測(cè)結(jié)果,說明重組質(zhì)粒構(gòu)建成功。

        M1,Trans2K DNA Marker;1,pET-32a-NP;M2,DL5000 DNA Marker圖3 重組質(zhì)粒pET-32a-NP雙酶切鑒定Fig.3 Identification of recombinant plasmid pET-32a-NP by double digestion

        2.4 重組質(zhì)粒的誘導(dǎo)表達(dá)及可溶性分析

        SDS-PAGE結(jié)果顯示,與pET-32a(+)空質(zhì)粒對(duì)照相比,重組質(zhì)粒誘導(dǎo)表達(dá)沉淀在約50 ku處出現(xiàn)條帶(圖4),大小與預(yù)期相符,說明該蛋白以包涵體形式表達(dá)。

        M,Blue Plus Protein Marker;1,誘導(dǎo)前pET-32a(+)空質(zhì)粒;2,誘導(dǎo)后pET-32a(+)空質(zhì)粒;3,誘導(dǎo)前重組質(zhì)粒上清;4,誘導(dǎo)前重組質(zhì)粒沉淀;5,重組質(zhì)粒誘導(dǎo)表達(dá)上清;6,重組質(zhì)粒誘導(dǎo)表達(dá)沉淀M,Blue Plus Protein Marker;1,pET-32a(+)empty plasmid before induction;2,Induced expression of pET-32a(+)empty plasmid;3,Recombinant plasmid supernatant before induction;4,Recombinant plasmid precipitation before induction;5,Induced expression supernatant of recombinant plasmid;6,Induced expression precipitation of recombinant plasmid圖4 重組蛋白表達(dá)鑒定結(jié)果Fig.4 Expression and identification results of recombinant protein

        2.5 重組蛋白的純化

        SDS-PAGE結(jié)果顯示,蛋白在經(jīng)過4次50 mmol/L咪唑的洗脫液洗脫后在第1次Elution Buffer洗脫時(shí)的目的蛋白量最大且純度較高,蛋白分子質(zhì)量大小約為50 ku(圖5),證明重組蛋白純化成功。

        M,Blue Plus Protein Marker;1,流穿液;2~5,Washing Buffer第1~4次洗脫;6~9,Elution Buffer第1~4次洗脫M,Blue Plus Protein Marker;1,Flow through liquid;2-5,The 1st to the 4th elution of Washing Buffer,respectively;6-9,The 1st to the 4th elution of Elution Buffer,respectively圖5 重組蛋白純化SDS-PAGE 分析Fig.5 SDS-PAGE analysis of recombinant protein purification

        2.6 重組蛋白Western blotting鑒定

        用純化后的重組蛋白進(jìn)行Western blotting鑒定,在約50 ku處出現(xiàn)特異性條帶(圖6),證明重組蛋白與山羊源BPIV3陽性血清發(fā)生反應(yīng),具有反應(yīng)原性。

        圖6 Western blotting檢測(cè)重組蛋白反應(yīng)原性Fig.6 Detection of reactogenicity of recombinant protein by Western blotting

        2.7 重組蛋白的蛋白定量

        用BCA法蛋白質(zhì)濃度測(cè)定試劑盒(增強(qiáng)型)測(cè)得純化濃縮后的蛋白濃度為400 μg/mL。

        2.8 間接ELISA方法測(cè)抗體滴度

        由圖7可知,新西蘭白兔血清抗體效價(jià)在首免后7 d達(dá)到第一次高峰,免疫組抗體效價(jià)在1∶27到1∶29之間,在二免前,NP蛋白組的抗體效價(jià)最高,達(dá)到1∶212;從二免開始,抗體效價(jià)持續(xù)升高,在首免后28 d時(shí),滅活疫苗和NP蛋白混合組抗體效價(jià)超過NP蛋白組(1∶217),達(dá)到1∶218,滅活疫苗組抗體效價(jià)為1∶211,對(duì)照組均無變化。

        圖7 新西蘭白兔血清抗體滴度變化Fig.7 Changes of serum antibody titer of New Zealand White rabbits

        2.9 血清中和試驗(yàn)測(cè)中和抗體滴度

        由圖8可知,免疫組的中和抗體效價(jià)持續(xù)增高,對(duì)照組無變化,在首免后28 d時(shí),滅活疫苗組、滅活疫苗和NP蛋白混合組及NP蛋白組的中和抗體效價(jià)分別為1∶23.32、1∶24.98和1∶24.48,混合疫苗組的中和抗體效價(jià)高于其他免疫組。

        圖8 新西蘭白兔血清中和抗體滴度變化Fig.8 Changes of serum neutralizing antibody titer in New Zealand White rabbits

        3 討 論

        自1959年Reisinger等[9]從美國犢牛腎臟首次分離到BPIV3后,英國、法國、加拿大、澳大利亞也都相繼有BPIV3感染的報(bào)道[10],目前BPIV3已呈世界性分布。研究表明,BPIV3已在中國內(nèi)蒙古、山西、山東、黑龍江等地存在[11],說明BPIV3在國內(nèi)的流行非常普遍并且很嚴(yán)重[12]。但目前國內(nèi)對(duì)BPIV3的研究還相對(duì)較少,因此亟需開展相關(guān)研究以便對(duì)BPIV3感染實(shí)施有效防控。BPIV3在第一次被發(fā)現(xiàn)后就有相關(guān)學(xué)者開始研究相關(guān)疫苗[13],20世紀(jì)60~70年代研制出了滅活疫苗,免疫后牛表現(xiàn)出全身性的或局部性的體液免疫[13-15],在20世紀(jì)60年代也研制出了弱毒疫苗,但有毒力返強(qiáng)等安全性問題,之后通過改進(jìn),弱毒疫苗的安全性大大提高[16-17],在國外針對(duì)BPIV3的滅活疫苗和弱毒苗已逐漸商品化[18]。也有人利用復(fù)制缺陷型的痘病毒作為表達(dá)載體來表達(dá)BPIV3的糖蛋白,肌內(nèi)注射或滴鼻都可誘導(dǎo)產(chǎn)生中和抗體[19]。

        NP蛋白是BPIV3中含量最高的蛋白,同時(shí)是BPIV3的主要抗原成分,具有很好的反應(yīng)原性和免疫原性,與F和HN蛋白相比,NP蛋白高度保守同時(shí)與抗原的生成和蛋白酶磷酸化等具有重要的關(guān)系[8],因此,本試驗(yàn)選擇NP蛋白作為BPIV3滅活疫苗的輔助蛋白,同時(shí)NP蛋白的成功表達(dá)也為以NP蛋白為抗原建立間接ELISA方法檢測(cè)未知抗體打下堅(jiān)實(shí)的基礎(chǔ)。

        本研究采用大腸桿菌表達(dá)系統(tǒng),其具有操作簡單、成本低、周期短、表達(dá)量高等優(yōu)點(diǎn),是獲得外源表達(dá)蛋白的首選方案[20]。但研究發(fā)現(xiàn)當(dāng)外源基因在大腸桿菌中高效表達(dá)時(shí),有時(shí)會(huì)導(dǎo)致二硫鍵不能正確進(jìn)行配對(duì),過多蛋白間的非特異結(jié)合從而導(dǎo)致形成不可溶的包涵體[21]。為獲得有活性的目的蛋白,則需使用變性劑對(duì)包涵體進(jìn)行變性溶解再進(jìn)行復(fù)性操作,最后經(jīng)透析去除變性劑[22],得到目的蛋白。本試驗(yàn)中NP蛋白呈包涵體形式表達(dá),可能是在設(shè)計(jì)引物時(shí),部分序列的親水性不高,導(dǎo)致整個(gè)蛋白呈包涵體形式表達(dá),同時(shí)NP蛋白純化過程也是試驗(yàn)的一個(gè)難點(diǎn),不同濃度咪唑的洗脫液對(duì)NP蛋白的洗脫效率都不高,50 mmol/L咪唑的洗脫液雖能有效將雜蛋白洗脫,但NP蛋白也損失嚴(yán)重,因此,NP蛋白的可溶性表達(dá)及純化的條件還需進(jìn)一步研究。

        正黏病毒科與副黏病毒科的區(qū)分是以其核酸是否分節(jié)為標(biāo)準(zhǔn),查閱相關(guān)資料后發(fā)現(xiàn)有人通過表達(dá)屬于正黏病毒科的流感病毒的NP蛋白,將其免疫小鼠后,并沒有降低受感染小鼠的病毒初始復(fù)制率,也沒有檢測(cè)到中和抗體,但其啟動(dòng)了對(duì)A型流感病毒的交叉反應(yīng)性細(xì)胞毒性T細(xì)胞反應(yīng)(CTL),NP蛋白對(duì)機(jī)體的保護(hù)作用可能由交叉反應(yīng)性CTL介導(dǎo)[23];也有免疫研究表明,同為副黏病毒科呼吸道病毒屬的仙臺(tái)病毒,其NP蛋白刺激機(jī)體產(chǎn)生的IgG抗體遠(yuǎn)高于HN和F蛋白,可誘導(dǎo)保護(hù)性免疫,特別是在攻毒感染后期[24]。因本次試驗(yàn)并未做攻毒試驗(yàn),因此暫不能確定單獨(dú)免疫NP蛋白是否可有效保護(hù)機(jī)體免受病毒侵襲,以及NP蛋白進(jìn)入機(jī)體后具體介導(dǎo)體液免疫反應(yīng),還是通過激活宿主體內(nèi)T細(xì)胞產(chǎn)生細(xì)胞免疫而保護(hù)機(jī)體。

        為驗(yàn)證免疫組之間抗體水平差異是否為NP蛋白輔助BPIV3滅活疫苗產(chǎn)生,本試驗(yàn)通過BPIV3的不同疫苗對(duì)新西蘭白兔進(jìn)行免疫,運(yùn)用間接ELISA和血清中和試驗(yàn)來測(cè)定血清中的抗體,試驗(yàn)結(jié)果表明新西蘭白兔在免疫28 d后各免疫組都能產(chǎn)生特異性抗體和中和抗體。滅活疫苗組、NP蛋白組及滅活疫苗和NP蛋白混合組的特異性抗體效價(jià)分別達(dá)到1∶211、1∶217和1∶218,中和抗體滴度分別達(dá)到1∶23.32、1∶24.48和1∶24.98。滅活疫苗和NP蛋白混合組的特異性結(jié)合抗體和中和抗體效價(jià)雖然在二免前不如NP蛋白組,但二免14 d后抗體效價(jià)在3組中都是最高的。綜上表明,少量NP蛋白的加入便可增強(qiáng)BPIV3滅活疫苗的免疫水平,相關(guān)文獻(xiàn)如E2蛋白也可增強(qiáng)牛病毒性腹瀉(BVDV)滅活疫苗的免疫效果[25]。因此,在滅活疫苗中加入保護(hù)性抗原很可能是提高滅活疫苗免疫效果的一種新方式,為BPIV3及伴隨的BRDC的防控提供新的方法策略。

        4 結(jié) 論

        本試驗(yàn)成功表達(dá)了純度較高的BPIV3 NP蛋白,將其與BPIV3滅活疫苗共同免疫新西蘭白兔,結(jié)果證明NP蛋白的加入可大幅提高BPIV3滅活疫苗的免疫水平。

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