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        大黃素對內(nèi)毒素誘導(dǎo)的牙齦成纖維細(xì)胞ROS/MAPK/AP-1通路及炎性因子表達(dá)的影響

        2022-06-16 13:30:52楊桂梅孫玉梅顏淑云郭瑋
        實用口腔醫(yī)學(xué)雜志 2022年3期
        關(guān)鍵詞:水平

        楊桂梅 孫玉梅 顏淑云 郭瑋

        大黃素是從中藥大黃中提取的有效活性成分,具有抗腫瘤、抗炎、抗氧化、抗菌、抗病毒等多種生理活性,研究表明大黃素可促進(jìn)牙周膜細(xì)胞活性及增殖,對牙周炎癥相關(guān)疾病具有一定的緩解作用[1-2],具體作用機(jī)制仍不清晰。活性氧/絲裂原活化蛋白激酶/活化蛋白1(reactive oxygen species/mitogen-activated protein kinase/activator protein-1,ROS/MAPK/AP-1)通路與機(jī)體炎癥反應(yīng)密切相關(guān),細(xì)菌裂解后釋放的LPS可誘導(dǎo)ROS產(chǎn)生,并促進(jìn)MAPK、AP-1的表達(dá),并加速機(jī)體相關(guān)炎癥因子的表達(dá)[3-4]。本研究利用脂多糖誘導(dǎo)人牙齦成纖維細(xì)胞炎癥反應(yīng),初步探究大黃素作用機(jī)制,供臨床治療牙周病參考。

        1 材料與方法

        1.1 細(xì)胞

        人牙齦成纖維細(xì)胞HGF-1(資源編號:BNCC339845)(北京貝納創(chuàng)聯(lián)生物技術(shù)研究院)。

        1.2 主要試劑及儀器

        大黃素(上海麥克林生化科技有限公司);牙齦卟啉單胞菌內(nèi)毒素(廣東翁江化學(xué)試劑有限公司); ROS活性氧誘導(dǎo)劑/ROS誘導(dǎo)劑(上海貝博生物有限公司);抗MAPK、AP-1、GAPDH、山羊抗小鼠IgG(Abcam公司, 美國; p38-MAPK(武漢菲恩生物科技有限公司); 細(xì)胞培養(yǎng)箱(MCO-15AC, SANYO公司, 日本); 酶標(biāo)儀(XElx800, Perkin Elmer公司, 美國);蛋白凝膠成像儀(GIS-500, 杭州Miulab公司)。

        1.3 細(xì)胞培養(yǎng)

        將HGF-1細(xì)胞株細(xì)胞復(fù)蘇,用含有10%FBS的DMEM培養(yǎng)液培養(yǎng),培養(yǎng)箱條件設(shè)為37 ℃、 5% CO2,每兩天更新一次培養(yǎng)液。待培養(yǎng)瓶中細(xì)胞密度高于80%時進(jìn)行0.25%胰蛋白酶消化傳代培養(yǎng)。取對數(shù)生長期細(xì)胞進(jìn)行后續(xù)實驗。

        1.4 大黃素溶液制備

        大黃素用二甲基亞砜溶解,配置成50 mmol/L的母液,使用時用DMEM培養(yǎng)基稀釋成20、40、60、80、100、120 μmol/L的含藥培養(yǎng)基[5]。

        1.5 大黃素對HGF-1細(xì)胞增殖的影響

        采用CCK-8法測定大黃素對人牙齦成纖維細(xì)胞增殖的影響。收集對數(shù)生長期HGF-1細(xì)胞,接種于96 孔板,細(xì)胞約為1×104個/孔,分別加入不同濃度的(0、 20、 40、 60、 80、 100、 120 μmol/L)含大黃素培養(yǎng)基, 37 ℃、 5% CO2條件下培養(yǎng)24 h,更換新鮮培養(yǎng)基后每孔加入10 μL CCK-8溶液,繼續(xù)在培養(yǎng)箱中孵育1~4 h,測定各孔HGF-1細(xì)胞在450 nm處的吸光度,根據(jù)公式計算不同濃度大黃素對HGF-1細(xì)胞增殖的影響。細(xì)胞活力(%)=[A加藥-A空白]/[A對照-A空白]×100%,A加藥:含有細(xì)胞、含大黃素培養(yǎng)基、CCK-8溶液孔的吸光度值;A空白:有相應(yīng)培養(yǎng)基、CCK-8溶液、無細(xì)胞孔的吸光度值;A加藥:含有細(xì)胞、CCK-8溶液、無藥培養(yǎng)基孔的吸光度值。

        1.6 HGF-1細(xì)胞分組及藥物處理

        收集對數(shù)生長期HGF-1細(xì)胞,隨機(jī)分為對照組(常規(guī)培養(yǎng))、 LPS組(800 μg/L LPS培養(yǎng)24 h后更換普通培養(yǎng)基培養(yǎng)24 h)[6]、大黃素組(800 μg/L LPS培養(yǎng)24 h后更換60 μmol/L大黃素培養(yǎng)基培養(yǎng)24 h)、ROS誘導(dǎo)劑組(800 μg/L LPS培養(yǎng)24 h后加入稀釋比為1∶1 000的ROS培養(yǎng)1 h,然后換用普通培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)24 h)、大黃素+ROS誘導(dǎo)劑組(800 μg/L LPS培養(yǎng)24 h后計入稀釋比為1∶1 000的ROS培養(yǎng)1 h,然后換用60 μmol/L大黃素培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)24 h)。培養(yǎng)結(jié)束后采集各組細(xì)胞用于后續(xù)實驗。

        1.7 各組HGF-1細(xì)胞活力檢測

        收集各組HGF-1細(xì)胞,根據(jù)CCK-8試劑盒中的具體操作步驟測定各組HGF-1細(xì)胞的細(xì)胞活力。

        1.8 各組HGF-1細(xì)胞中炎性因子及氧化應(yīng)激因子表達(dá)水平檢測

        收集各組HGF-1細(xì)胞,無菌條件下將細(xì)胞轉(zhuǎn)移至離心管中, 1 000 g離心后取上清液,根據(jù)白細(xì)胞介素(interleukin, IL)-6、IL-1β、腫瘤壞死因子-α(tumor necrosis factor-α, TNF-α)、超氧化物歧化酶(superoxide dismutase, SOD)、丙二醛(malonaldehyde, MDA)、乳酸脫氫酶(lactate dehydrogenase, LDH)相關(guān)試劑盒中檢測步驟進(jìn)行測定。

        1.9 各組HGF-1細(xì)胞中ROS含量測定

        利用熒光探針DCFH-DA進(jìn)行ROS檢測,收集各組HGF-1細(xì)胞,棄去培養(yǎng)液加入經(jīng)DMEM培養(yǎng)基稀釋的DCFH-DA(1∶1 000), 37 ℃、5% CO2條件下孵育20 min,經(jīng)DMEM培養(yǎng)基洗滌細(xì)胞后在熒光分光光度計中測定DCF的熒光強(qiáng)度。細(xì)胞內(nèi)的ROS可將無熒光的DCFH氧化為有熒光的DCF,因此DCF熒光強(qiáng)度越高即代表細(xì)胞內(nèi)ROS含量越多。

        1.10 各組HGF-1細(xì)胞中ROS/MAPK/AP-1通路相關(guān)蛋白檢測

        收集各組HGF-1細(xì)胞,棄培養(yǎng)液,移入無菌離心管中,低溫加入蛋白質(zhì)提取試劑盒中RIPA裂解液,充分裂解后離心取上清液,根據(jù)BCA蛋白濃度測定試劑盒的操作步驟測定其中蛋白質(zhì)含量,取20 μL各組待測樣品,通過SDS-PAGE電泳分離蛋白,然后轉(zhuǎn)移到PDVF膜上,用TBST漂洗,然后用5%的脫脂奶粉室溫封閉,加入MAPK(1∶1 000)、AP-1(1∶1 000)、GAPDH(1∶2 000)一抗, 4 ℃條件下孵育并過夜,用TBST漂洗,加入辣根過氧化酶標(biāo)記的山羊抗小鼠IgG(1∶10 000)繼續(xù)孵育2 h,經(jīng)顯色、曝光后分析各組HGF-1細(xì)胞中MAPK、 AP-1蛋白表達(dá)情況。

        1.11 統(tǒng)計學(xué)分析

        2 結(jié) 果

        2.1 大黃素對HGF-1細(xì)胞增殖的影響

        大黃素濃度在20~60 μmol/L時HGF-1細(xì)胞的細(xì)胞活力逐漸增強(qiáng)(P<0.05),濃度在80~120 μmol/L時細(xì)胞的細(xì)胞活力顯著下降(P<0.05),選擇60 μmol/L的大黃素濃度用于后續(xù)研究(表 1)。

        表 1 大黃素對HGF-1細(xì)胞增殖的影響

        2.2 各組HGF-1細(xì)胞的細(xì)胞活力比較

        與對照組相比,LPS組HGF-1細(xì)胞活力顯著降低(P<0.05);與LPS組相比,大黃素組HGF-1細(xì)胞活力顯著升高(P<0.05);與大黃素組相比,ROS誘導(dǎo)劑組及大黃素+ROS誘導(dǎo)劑組HGF-1細(xì)胞活力顯著降低(P<0.05);與ROS誘導(dǎo)劑組相比,大黃素+ROS誘導(dǎo)劑組HGF-1細(xì)胞活力顯著升高(P<0.05)(表 2)。

        表 2 各組HGF-1細(xì)胞活力比較

        2.3 各組HGF-1細(xì)胞中炎癥因子表達(dá)水平比較

        與對照組相比,LPS組HGF-1細(xì)胞中IL-1β、IL-6、TNF-α表達(dá)水平顯著升高(P<0.05); 與LPS組相比,大黃素組HGF-1細(xì)胞中IL-1β、IL-6、TNF-α表達(dá)水平顯著降低(P<0.05);與大黃素組相比,ROS誘導(dǎo)劑組及大黃素+ROS誘導(dǎo)劑組HGF-1細(xì)胞中IL-1β、IL-6、TNF-α表達(dá)水平顯著升高(P<0.05);與ROS誘導(dǎo)劑組相比,大黃素+ROS誘導(dǎo)劑組HGF-1細(xì)胞中IL-1β、IL-6、TNF-α表達(dá)水平顯著降低(P<0.05)(表 3)。

        表 3 各組HGF-1細(xì)胞中炎癥因子表達(dá)水平比較

        2.4 各組HGF-1細(xì)胞中氧化應(yīng)激因子表達(dá)水平比較

        與對照組相比,LPS組HGF-1細(xì)胞中SOD表達(dá)水平顯著降低(P<0.05),MDA、LDH表達(dá)水平顯著升高(P<0.05);與LPS組相比,大黃素組HGF-1細(xì)胞中SOD表達(dá)水平顯著升高(P<0.05),MDA、LDH表達(dá)水平顯著降低(P<0.05);與大黃素組相比,ROS誘導(dǎo)劑組及大黃素+ROS誘導(dǎo)劑組HGF-1細(xì)胞中SOD表達(dá)水平顯著降低(P<0.05),MDA、LDH表達(dá)水平顯著升高(P<0.05);與ROS誘導(dǎo)劑組相比,大黃素+ROS誘導(dǎo)劑組HGF-1細(xì)胞中SOD表達(dá)水平顯著升高(P<0.05),MDA、LDH表達(dá)水平顯著降低(P<0.05)(表 4)。

        表 4 各組HGF-1細(xì)胞中氧化應(yīng)激因子表達(dá)水平比較

        2.5 各組HGF-1細(xì)胞中ROS含量比較

        與對照組相比,LPS組HGF-1細(xì)胞中ROS含量顯著升高(P<0.05);與LPS組相比,大黃素組HGF-1細(xì)胞中ROS含量顯著降低(P<0.05);與大黃素組相比,ROS誘導(dǎo)劑組及大黃素+ROS誘導(dǎo)劑組HGF-1細(xì)胞中ROS含量顯著升高(P<0.05);與ROS誘導(dǎo)劑組相比,大黃素+ROS誘導(dǎo)劑組HGF-1細(xì)胞中ROS含量顯著降低(P<0.05)(表 5)。

        表 5 各組HGF-1細(xì)胞中ROS含量比較

        2.6 各組HGF-1細(xì)胞中ROS/MAPK/AP-1通路相關(guān)蛋白表達(dá)比較

        與對照組相比,LPS組HGF-1細(xì)胞中p38-MAPK、AP-1蛋白表達(dá)水平顯著升高(P<0.05);與LPS組相比,大黃素組HGF-1細(xì)胞中p38-MAPK、AP-1蛋白表達(dá)水平顯著降低(P<0.05);與大黃素組相比,ROS誘導(dǎo)劑組及大黃素+ROS誘導(dǎo)劑組HGF-1細(xì)胞中p38-MAPK、AP-1蛋白表達(dá)水平顯著升高(P<0.05);與ROS誘導(dǎo)劑組相比,大黃素+ROS誘導(dǎo)劑組HGF-1細(xì)胞中p38-MAPK、AP-1蛋白表達(dá)水平顯著降低(P<0.05)(表 6、 圖 1)。

        表 6 各組HGF-1細(xì)胞中MAPK、AP-1蛋白表達(dá)水平比較

        圖 1 各組HGF-1細(xì)胞中p38-MAPK、AP-1蛋白表達(dá)情況

        3 討 論

        牙周病是由粘附在牙齒表面的微生物群引起的慢性感染性疾病,人牙齦成纖維細(xì)胞是牙周組織主要的細(xì)胞類別之一,在牙周組織修復(fù)及再生中發(fā)揮重要作用,在病理狀態(tài)下,人牙齦成纖維細(xì)胞被炎癥介質(zhì)激活,增加炎癥因子的釋放,進(jìn)而影響患者口腔健康[7-8]。牙周組織中的細(xì)菌裂解后產(chǎn)生的脂多糖可作用于牙齦成纖維細(xì)胞及牙周膜細(xì)胞, 增強(qiáng)牙周組織炎癥反應(yīng),進(jìn)而參與牙周病的產(chǎn)生與發(fā)展[9]。牙齦卟啉單胞菌是牙周病的重要致病菌之一,在整個炎癥反應(yīng)過程中起到重要作用,用牙齦卟啉單胞菌LPS誘導(dǎo)牙齦成纖維細(xì)胞HGF-1發(fā)生炎癥反應(yīng)的效果顯著[10]。本研究結(jié)果顯示,LPS顯著降低HGF-1的細(xì)胞活性,HGF-1細(xì)胞中IL-1β、IL-6、TNF-α等炎癥因子及MDA、LDH氧化應(yīng)激因子表達(dá)水平顯著升高,SOD表達(dá)水平顯著降低,提示LPS可誘導(dǎo)牙齦成纖維細(xì)胞的炎性反應(yīng),并降低其抗氧化能力,Dronik等[11]研究表明脂質(zhì)過氧化在牙周病患者牙周組織炎癥發(fā)生中起到重要作用,且與正常人相比,牙周炎患者血漿中沉積的MDA較多,抗氧化能力顯著較低。

        大黃素是中藥大黃的有效成分之一,具有抗炎、抗氧化、抗菌等多種生物活性, Lee等[12]研究發(fā)現(xiàn)大黃素可顯著降低花生四烯酸誘導(dǎo)的HepG2肝細(xì)胞氧化應(yīng)激反應(yīng),并顯著降低HepG2肝細(xì)胞中的ROS含量。張國華等[13]研究表明大黃素能顯著改善牙齦卟啉單胞菌誘導(dǎo)的大鼠牙周炎,并降低大鼠牙周組織中IL-6、TNF-α等炎癥因子的表達(dá)。本研究結(jié)果顯示,經(jīng)過大黃素處理的HGF-1細(xì)胞的細(xì)胞活力較LPS處理細(xì)胞有顯著提升,IL-1β、IL-6、TNF-α等炎癥因子及MDA、LDH氧化應(yīng)激因子表達(dá)水平顯著降低,SOD表達(dá)水平顯著升高,表明大黃素具有抑制LPS誘導(dǎo)的HGF-1細(xì)胞炎性反應(yīng),提高其抗氧化能力的作用。

        多項研究表明ROS/MAPK/AP-1通路與機(jī)體炎癥反應(yīng)及氧化應(yīng)激反應(yīng)密切相關(guān),ROS在氧化劑應(yīng)激及炎癥反應(yīng)中具有重要作用,被促炎因子激活的成纖維細(xì)胞可產(chǎn)生大量ROS,引起機(jī)體氧化還原失衡,導(dǎo)致細(xì)胞發(fā)生過氧化損傷,進(jìn)而降低細(xì)胞活性,促進(jìn)細(xì)胞死亡[14-15],ROS會使下游的MAPK發(fā)生磷酸化,進(jìn)而激活A(yù)P-1等多種轉(zhuǎn)錄因子[16],激活的AP-1可增加IL-1β、TNF-α等炎癥因子的表達(dá)[17],進(jìn)而促進(jìn)機(jī)體炎癥反應(yīng)。蘇麗等[18]研究發(fā)現(xiàn)甘草次酸可通過抑制ROS/p38-MAPK/AP-1信號通路降低電離輻射誘導(dǎo)的小鼠巨噬細(xì)胞炎癥反應(yīng)。本研究結(jié)果顯示,LPS組及ROS誘導(dǎo)劑組HGF-1細(xì)胞中ROS含量、ROS/MAPK/AP-1通路相關(guān)蛋白表達(dá)水平顯著高于對照組,表明HGF-1細(xì)胞的炎性反應(yīng)及氧化應(yīng)激反應(yīng)可能與ROS/MAPK/AP-1通路的激活密切相關(guān);與ROS誘導(dǎo)劑組相比,大黃素+ROS誘導(dǎo)劑組HGF-1細(xì)胞中ROS含量、ROS/MAPK/AP-1通路相關(guān)蛋白表達(dá)水平顯著降低,提示大黃素緩解LPS誘導(dǎo)的HGF-1細(xì)胞炎性反應(yīng)及氧化應(yīng)激反應(yīng)與抑制ROS/MAPK/AP-1通路有關(guān)。

        綜上所述,大黃素具有降低LPS誘導(dǎo)的HGF-1細(xì)胞炎性反應(yīng)的作用,可能通過抑制ROS/MAPK/AP-1通路發(fā)揮作用。

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