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        蛋白質(zhì)磷酸酶2A激活劑對星形膠質(zhì)細胞遷移能力的影響及作用機制研究

        2022-05-21 15:16:16張黎軍趙盼盼徐志秀王凡王朔任靜袁彬吉四輩
        浙江醫(yī)學 2022年8期
        關(guān)鍵詞:研究

        張黎軍 趙盼盼 徐志秀 王凡 王朔 任靜 袁彬 吉四輩

        星形膠質(zhì)細胞是膠質(zhì)細胞中體積最大的一種,在哺乳動物腦內(nèi)分布最為廣泛,在血腦屏障形成、神經(jīng)系統(tǒng)調(diào)節(jié)中起到重要作用[1]。有研究顯示,星形膠質(zhì)細胞在細胞遷移中參與了神經(jīng)退行過程[2],在中樞神經(jīng)系統(tǒng)中發(fā)揮了傳遞神經(jīng)遞質(zhì)等多種生物學作用。星形膠質(zhì)細胞可以在帕金森病患者及帕金森病動物模型中呈現(xiàn)出活化狀態(tài),在病理狀態(tài)下其線粒體功能受損[3]。膠質(zhì)纖維酸性蛋白(glial fibrillary acidic protein,GFAP)表達上調(diào)是活化狀態(tài)的主要表現(xiàn),若抑制GFAP的表達,神經(jīng)損傷后軸突再生功能會大幅度降低。李燕華等[4]研究結(jié)果表明,慢病毒轉(zhuǎn)染基質(zhì)金屬蛋白酶(matrix metalloproteinase,MMP)-9會下調(diào)水通道蛋白4(aquaporin 4,AQP4)的表達,這可為利用星形膠質(zhì)細胞進行缺血性腦水腫實驗提供參考。MMP-2、MMP-9均屬于基質(zhì)金屬蛋白酶家族[5],兩者在細胞中發(fā)揮著重要作用[6]。蛋白質(zhì)磷酸酶2A(protein phosphatase 2A,PP2A)是一種異源三聚體蛋白,能夠參與多種生物學功能的調(diào)節(jié)。有研究表明,PP2A升高對轉(zhuǎn)基因損傷小鼠神經(jīng)功能有一定的改善作用[7],p38是絲裂原活化蛋白激酶中重要成員,參與細胞信號轉(zhuǎn)導過程[8-9]。本研究探討PP2A激活劑對星形膠質(zhì)細胞遷移能力的影響及相關(guān)作用機制,現(xiàn)將結(jié)果報道如下。

        1 材料和方法

        1.1 材料 (1)實驗動物:選取出生48 h內(nèi)健康、清潔級SD雄性大鼠,均由華北理工大學科學院提供[許可證號:SYXK(冀)2020-007]。飼養(yǎng)溫度 20~25 ℃,濕度為50%,人工飼養(yǎng)3 d。(2)主要試劑:大鼠抗小鼠磷酸化 p38(phosphorylation of p38,p-p38)抗體由武漢益普生物科技有限公司提供,PP2A活性試劑盒由上海瓦蘭生物科技有限公司提供;人抗大鼠MMP-2抗體、MMP-9抗體由上海恒斐生物科技有限公司提供。本研究經(jīng)醫(yī)院醫(yī)學倫理委員會批準(批準文號:21000092017072)。

        1.2 方法

        1.2.1 星形膠質(zhì)細胞培養(yǎng) 參照張黎軍等[10]星形膠質(zhì)細胞的培養(yǎng)方法:采用75%乙醇對大鼠消毒,以斷頸法處死,快速將大鼠大腦組織取出并放置在平皿中,連續(xù)洗滌3次,提取大鼠大腦皮層組織,剝除血管膜并剪碎,加入0.125%胰蛋白酶2 ml消化15 min,每3 min進行1次搖晃,待其完全消化后,將其置于含有10%FBS的杜爾貝科伊格爾培養(yǎng)基(Dulbecco's modified eagle medium,DMEM)中,加入適量細胞培養(yǎng)液使細胞懸浮,隨后在細胞培養(yǎng)瓶中培養(yǎng),培養(yǎng)環(huán)境為5%CO2、37℃。每3 d更換1次培養(yǎng)液,9 d后密封培養(yǎng)瓶,置于37℃搖床中,待細胞分離后檢測膠質(zhì)纖維酸性蛋白(glial fibrillary acidic protein,GEAP)表達,若檢測陽性,即提示星形膠質(zhì)細胞培養(yǎng)完成。更換培養(yǎng)液,重復以上步驟,選取第2代星形膠質(zhì)細胞備用。

        1.2.2 細胞分組 將培養(yǎng)后的第2代星形膠質(zhì)細胞分為抑制組、激活組、對照組3組。抑制組加入15 nmol/L PP2A抑制劑岡田酸;激活組加入15 nmol/L PP2A激活劑鞘胺醇(d-erythro-sphingosine,DES);對照組加入等體積二甲基亞砜(dimethyl sulfoxide,DMSO),每組細胞在用乙二胺四乙酸胰酶消化后,以5×104/ml的密度接種在鋪有蓋玻片(預先采用多聚賴氨酸包被)的6孔板內(nèi),在5%CO2、37℃下恒溫培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)48 h后,備用。

        1.2.3 PP2A活性檢測 采用放射免疫沉淀法,3組細胞均加入細胞裂解液,在冰上裂解20 min后轉(zhuǎn)移至微型離心管(micro centrifuge tube,EP)中,在 4 ℃下離心處理10 min,分離蛋白上清液后在EP內(nèi)保存,采用二喹啉甲酸蛋白試劑盒檢測蛋白濃度,滴加50 μg蛋白樣品后,采用PP2A活性檢測試劑盒完成PP2A活性檢測。

        1.2.4 星形膠質(zhì)細胞遷移率的觀測 采用細胞染色觀察法。采用胰蛋白酶將3組細胞完全消化,分別滴加含有1%FBS培養(yǎng)懸液細胞,細胞濃度為1×105個/ml,在 Transwell小室上室中加入 500 μl細胞懸液,在Transwell小室下室中加700 μl 10%的FBS細胞液,將Transwell小室放置在12孔板上,培養(yǎng)8 h后,使用棉簽將上層多余細胞擦掉,固定5 min。采用日本奧林巴斯BX43光學顯微鏡觀察細胞遷移數(shù)目,在25℃下使用Giemsa染料染色15 min后統(tǒng)計遷移總細胞數(shù)目,并計算細胞遷移率,細胞遷移率=遷移總細胞數(shù)目/膜下層細胞×100%,重復上述步驟3次,取平均值。

        1.2.5 p-p38、MMP-2、MMP-9的檢測 采用電泳洗滌法。提取3組細胞中總蛋白,加入5×十二烷基磺酸鈉(sodium dodecyl sulfate crystals,SDS)上樣緩沖液,每孔劑量20 μg。于120 V電壓下,電泳1.5 h至形成聚偏二氟乙烯膜后,采用5%脫脂奶粉封閉,加入一抗Tris-HCl緩沖鹽溶液(TBS with tween-20,TBST),p-p38、MMP-2、MMP-9按照1:2 000稀釋或在溫室下孵育12 h后在4℃條件下進行震蕩過夜,再次洗滌,加入二抗溶液 TBST,p-p38、MMP-2、MMP-9 按照 1∶5 000 稀釋,震蕩120 min后,洗滌,顯色成像,使用Image J軟件分析蛋白條帶灰度值。GAPDH作為內(nèi)參蛋白。

        1.3 統(tǒng)計學處理 采用SPSS 19.0統(tǒng)計軟件,計量資料以表示,多組間比較采用方差分析,組間比較采用LSD-t檢驗。P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。

        2 結(jié)果

        2.1 3組細胞PP2A活性比較 3組細胞PP2A活性比較,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。抑制組PP2A活性51.22±8.98,低于激活組的135.89±11.25及對照組的102.15±10.15,差異均有統(tǒng)計學意義(均P<0.05);激活組PP2A活性高于對照組,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。

        2.2 3組細胞遷移率的比較 3組細胞遷移率比較差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。抑制組細胞遷移率0.15±0.02,低于激活組的0.42±0.03及對照組的 0.23±0.01,差異均有統(tǒng)計學意義(均P<0.05);激活組細胞遷移率高于對照組,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。光學顯微鏡下3組細胞遷移情況見圖1。

        圖1 光鏡下3組細胞遷移情況(×100)

        抑制組細胞外基質(zhì)內(nèi)的細胞遷移數(shù)目低于激活組、對照組;激活組細胞外基質(zhì)內(nèi)的細胞遷移數(shù)目高于對照組。

        2.3 3組細胞中 p-p38、MMP-2、MMP-9 表達水平比較 3組細胞中p-p38、MMP-2、MMP-9表達水平比較,差異均有統(tǒng)計學意義(均P<0.05)。抑制組pp38表達水平高于對照組、激活組,激活組p-p38表達水平低于對照組,差異均有統(tǒng)計學意義(均P<0.05)。抑制組MMP-2、MMP-9表達水平均低于對照組、激活組,差異均有統(tǒng)計學意義(t=22.360、12.280、17.000、12.330,均 P<0.05);激活組 MMP-2、MMP-9 表達水平高于對照組,差異均有統(tǒng)計學意義(t=7.000、3.796,均P<0.05),見表 1。3 組 p-p38、MMP-2、MMP-9 表達水平比較見圖2、圖3。

        表1 3組細胞中p-p38、MMP-2、MMP-9表達水平比較

        圖2 3組p-p38蛋白表達的電泳圖

        圖3 3組MMP-2、MMP-9表達的電泳圖

        3 討論

        星形膠質(zhì)細胞與神經(jīng)系統(tǒng)關(guān)系密切,對神經(jīng)細胞的生長具有一定的營養(yǎng)作用,在神經(jīng)系統(tǒng)中具有廣泛的生物學功能[11]。李昕華等[12]研究結(jié)果表明,處理后的星形膠質(zhì)細胞分泌膠質(zhì)細胞源性神經(jīng)營養(yǎng)因子能起到抑制p38MAPK信號通路的作用,并且抑制神經(jīng)元細胞的減少,發(fā)揮保護腦神經(jīng)的作用。

        PP2A含有較大數(shù)量的三聚體,對細胞中多種蛋白能起到直接作用,在多種生物學功能中發(fā)揮關(guān)鍵作用[13]。有研究表明,其活性的降低能夠破壞神經(jīng)元軸突功能的發(fā)揮[14]。本研究結(jié)果顯示,激活組PP2A活性明顯高于抑制組、對照組,此結(jié)果說明,PP2A激活劑能提高機體中PP2A活性。細胞遷移屬于一種細胞運動,在多種過程中均發(fā)揮著重要作用,如傷口愈合、癌癥進展、免疫反應(yīng)等[15]。本研究結(jié)果顯示,激活組細胞遷移率明顯高于抑制組、對照組,此結(jié)果說明,PP2A激活劑能夠顯著促進星形膠質(zhì)細胞遷移,從而提高星形膠質(zhì)細胞遷移的能力。李夏春等[16]研究結(jié)果表明,上調(diào)PP2A能夠改善淀粉樣前體蛋白/早老蛋白-1雙轉(zhuǎn)基因小鼠病理改變,具有改善學習記憶能力的作用,與本文研究結(jié)果一致。趙鑫等[17]研究中,采用Transwell小室細胞遷移實驗和細胞劃痕實驗檢測小干擾RNA調(diào)節(jié)ski基因(ski gene-small interfering RNA,ski-siRNA)轉(zhuǎn)染后星形膠質(zhì)細胞遷移能力的變化發(fā)現(xiàn),ski-siRNA轉(zhuǎn)染組每孔遷移細胞數(shù)少于空白對照組和陰性對照組。細胞劃痕實驗顯示,轉(zhuǎn)染組細胞1~5 d的劃痕愈合率均明顯低于對照組,證實沉默ski基因能顯著抑制星形膠質(zhì)細胞的遷移能力。

        MMP-2、MMP-9兩者在細胞中發(fā)揮著重要作用。盧文玉等[18]研究結(jié)果表明,ApoE能夠調(diào)節(jié)膠質(zhì)細胞分泌的MMP-9表達,影響血腦屏障完整性。本研究結(jié)果顯示,激活組中MMP-2、MMP-9表達水平明顯高于抑制組、對照組,說明PP2A激活劑通過上調(diào)MMP-2、MMP-9表達,可促進星形膠質(zhì)細胞的遷移。

        p38參與細胞信號轉(zhuǎn)導過程。本研究中,激活組p-p38表達量較抑制組、對照組較低,說明PP2A激活劑通過降低p-p38磷酸化水平,從而降低了p38水平。雷雨廣等[19]研究結(jié)果表明,PDIA3過表達能夠改善H2O2誘導的星形膠質(zhì)細胞氧化應(yīng)激損傷及炎性反應(yīng),其能夠通過抑制p38MAPK通路的激活發(fā)揮其作用。邵廣田等[20]研究結(jié)果顯示,缺氧組p-p38表達顯著高于正常組,而缺氧+SB203580組p-p38表達顯著低于缺氧組,說明p38信號通路的激活降低了缺氧下星形膠質(zhì)細胞增殖并促進細胞的凋亡,而抑制p38信號通路可提高細胞的增殖及抑制細胞的凋亡。本文研究尚未證實這一觀點,因此仍需要做后續(xù)實驗加以證實。

        綜上所述,PP2A激活劑通過調(diào)控p38MAPK信號通路,能提高星形膠質(zhì)細胞中PP2A活性及星形膠質(zhì)細胞遷移能力,為臨床研究神經(jīng)系統(tǒng)損傷提供理論依據(jù)。

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