蔣美君鐘方杰喻達(dá)輝張斌嚴(yán)雪瑜

(1.廣西北部灣海洋生物多樣性養(yǎng)護(hù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室/北部灣大學(xué)海洋學(xué)院，廣西 欽州 535011；2.欽州市水產(chǎn)技術(shù)推廣站，廣西 欽州 535099)

合浦珠母貝(Pinctada fucata)又稱馬氏珠母貝，是中國南海海域主要培育的海水珍珠貝，在我國海水養(yǎng)殖業(yè)中占有重要地位[1]。近年來，隨著珍珠養(yǎng)殖規(guī)模不斷擴(kuò)大，種質(zhì)資源退化和病害問題日趨嚴(yán)重，海水珍珠產(chǎn)量和質(zhì)量明顯下降，嚴(yán)重威脅我國海水珍珠產(chǎn)業(yè)的持續(xù)健康發(fā)展[2]。合浦珠母貝僅具備非特異性免疫系統(tǒng)，極易被病原體和微生物侵染[3]，提高合浦珠母貝自身免疫防御機(jī)制研究是如今重要的發(fā)展方向[4,5]。

溶藻弧菌(Vibrio alginolyticus)是一種嗜鹽性革蘭氏陰性短桿菌，主要生長在海洋或出?？?，數(shù)量位于海水類弧菌之首，易引起魚、蝦、貝等海洋生物爆發(fā)流行性疾病[6,7]。已有研究發(fā)現(xiàn)，溶藻弧菌給石斑魚(Epinephelus coioides)[8]、凡納濱對蝦(Litopenaeus vannamei)[9]、近江牡蠣(Ostrea rivularis Gould)[10]等養(yǎng)殖產(chǎn)業(yè)造成了嚴(yán)重的經(jīng)濟(jì)損失。Wang等[11]利用轉(zhuǎn)錄組測序技術(shù)分析合浦珠母貝響應(yīng)溶藻弧菌感染的免疫機(jī)制，發(fā)現(xiàn)有636個差異表達(dá)基因響應(yīng)了弧菌攻擊，這些基因主要參與了絲裂原活化蛋白激酶信號通路(MAPK signaling pathway)、趨化因子信號通路(chemokine signaling pathway)、細(xì)胞凋亡(Apoptosis)和Wnt信號通路(Wnt signaling pathway)等免疫相關(guān)信號通路。本研究通過利用轉(zhuǎn)錄組測序技術(shù)開展合浦珠母貝在溶藻弧菌早期感染下的分子免疫調(diào)控機(jī)制研究，并篩選出凋亡抑制因子(inhibitor of apoptosis proteins，IAPs)蛋白家族中的幾個關(guān)鍵差異表達(dá)基因進(jìn)行基因表達(dá)變化分析，以期尋找和探索合浦珠母貝先天免疫調(diào)控機(jī)制的關(guān)鍵候選基因，為提高合浦珠母貝的非特異性免疫能力和培育具有優(yōu)良性狀的新品種提供理論基礎(chǔ)[12]。

1 材料與方法

1.1 試驗(yàn)材料

試驗(yàn)用的1齡健康合浦珠母貝來源于廣西北海的珍珠貝養(yǎng)殖場，在實(shí)驗(yàn)室條件下暫養(yǎng)7d后進(jìn)行溶藻弧菌感染試驗(yàn)。在暫養(yǎng)和試驗(yàn)期間，每天定時投喂藻類。

1.2 試驗(yàn)方法

1.2.1 溶藻弧菌懸液制備

將凍存的溶藻弧菌用牛肉膏蛋白胨固體培養(yǎng)基進(jìn)行劃線分離活化2次，取活化的溶藻弧菌接種于牛肉膏蛋白胨液體培養(yǎng)基中，在28℃下200r·min-1振蕩過夜培養(yǎng)，1600r·min-1離心10min后棄上清液，重新懸浮于PBS溶液，并配制成濃度為4.0 OD的具有活性的溶藻弧菌懸液，4℃保存?zhèn)溆谩?/p>

1.2.2 溶藻弧菌感染試驗(yàn)及轉(zhuǎn)錄組測序

將合浦珠母貝用氯化鎂溶液進(jìn)行麻醉開殼后，于閉殼肌注射100μL制備好的弧菌懸液；采集注射前0h和注射后6h和24h的合浦珠母貝肝胰腺組織樣品，每組各采集6個貝，所采集的組織樣品置于液氮中凍存后置于-80℃冰箱中待用。

1.2.3 轉(zhuǎn)錄組測序及IAP蛋白家族基因表達(dá)分析

將合浦珠母貝肝胰腺組織樣品在干冰保存的條件下送至中國上海美吉生物技術(shù)公司進(jìn)行cDNA文庫構(gòu)建和mRNA測序；再對轉(zhuǎn)錄組測序獲得的IAP蛋白家族中的基因按照p-adjust<0.001和|log2FC|≥1的標(biāo)準(zhǔn)進(jìn)行差異表達(dá)分析，并利用KEGG(Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes)數(shù)據(jù)庫對差異表達(dá)基因進(jìn)行功能注釋。

2 結(jié)果與分析

2.1 合浦珠母貝BIRC2基因在溶藻弧菌感染下的表達(dá)變化

轉(zhuǎn)錄組結(jié)果顯示，在感染溶藻弧菌后6h時，合浦珠母貝BIRC2基因的表達(dá)量顯著上升(P<0.05)；而在24h時表達(dá)量下降，但仍顯著高于感染前(0h)的表達(dá)量(P<0.05)，結(jié)果如圖1所示?；蚬δ芊治鼋Y(jié)果顯示，BIRC2基因富集到了KEGG中的NOD樣受體信號通路(NOD-like receptor signaling pathway)、Toll和IMD信號通路(Toll and Imd signaling pathway)以及弓形蟲病(Toxoplasmosis)等信號通路。

圖1 合浦珠母貝BIRC2基因在感染溶藻弧菌不同時間中的表達(dá)變化

2.2 合浦珠母貝BIRC3基因在溶藻弧菌感染下的表達(dá)變化

如圖2所示，在感染溶藻弧菌后6h時，合浦珠母貝BIRC3基因的表達(dá)量急劇上升，并顯著高于感染前0h和感染后24h(P<0.05)，而24h與0h的基因表達(dá)量差異不顯著(P>0.05)?；蚬δ芊治鼋Y(jié)果發(fā)現(xiàn)，BIRC3基因也富集到了NOD樣受體信號通路(NOD-like receptor signaling pathway)、Toll和IMD信號通路(Toll and Imd signaling pathway)以及弓形蟲病(Toxoplasmosis)等信號通路中。

圖2 合浦珠母貝BIRC3基因在感染溶藻弧菌不同時間中的表達(dá)變化

2.3 合浦珠母貝BIRC4基因在溶藻弧菌感染下的表達(dá)變化

如圖3所示，在感染溶藻弧菌后6h時，合浦珠母貝BIRC4基因的表達(dá)量較感染前(0h)有所增加，但與0h的表達(dá)量差異不顯著(P>0.05)；而在24h時，BIRC4基因的表達(dá)量明顯下降，并顯著低于6h(P<0.05)，但與0h的表達(dá)量差異不顯著(P>0.05)?；蚬δ芊治鼋Y(jié)果發(fā)現(xiàn)，BIRC4基因被富集到了泛素介導(dǎo)的蛋白質(zhì)水解(Ubiquitin mediated proteolysis)信號通路中。

圖3 合浦珠母貝BIRC4基因在感染溶藻弧菌不同時間中的表達(dá)變化

2.4 合浦珠母貝BIRC7基因在溶藻弧菌感染下的表達(dá)變化

基因表達(dá)結(jié)果顯示，在感染溶藻弧菌后6h時，合浦珠母貝BIRC7基因的表達(dá)量增加，并顯著高于感染前0h和感染后24h(P<0.05)；而24h與0h的基因表達(dá)量差異不顯著(P>0.05)，結(jié)果如圖4所示。基因功能分析結(jié)果顯示，BIRC7基因被富集到了弓形蟲病信號通路中。

圖4 合浦珠母貝BIRC7基因在感染溶藻弧菌不同時間中的表達(dá)變化

3 討論

凋亡抑制因子(inhibitor of apoptosis proteins，IAPs)是一類具有抑制由病毒感染引起的細(xì)胞凋亡作用的內(nèi)源性蛋白，大多數(shù)IAPs含有桿狀病毒IAP重復(fù)區(qū)域(baculoviral IAP repeat containing，BIRC)[13]。1993年Crook等首先在桿狀病毒CpGV和核多角體病毒OPMNPV中發(fā)現(xiàn)IAP家族[14]，隨后的研究發(fā)現(xiàn)人類細(xì)胞中存在7種IAPs，包括NAIP(BIRC1)、cIAP1(BIRC2)、cIAP2(BIRC3)、XIAP(BIRC4)、Survivin(BIRC5)、Apollon(BIRC6)和Livin(BIRC7)[15]。目前已在池蝶蚌(Hyriopsis schlegeli)[16]、太平洋牡蠣(Crassostrea gigas)[17]和中華絨螯蟹(Eriocheir sinensis)[18]組織中發(fā)現(xiàn)IAP分子能夠抑制細(xì)胞凋亡。苗國英等[19]使用脂多糖(Lipopolysaccharide，LPS)模擬細(xì)菌感染對櫛孔扇貝(Chlamys farreri)進(jìn)行刺激，發(fā)現(xiàn)CfIAP-1和CfIAP-1基因表達(dá)量在0～12h沒有明顯變化，在24h迅速上升達(dá)到最高點(diǎn)，到48h開始下降，72h恢復(fù)到正常水平，整體呈現(xiàn)先升高后下降的趨勢。Zhang等[20]利用鰻弧菌(Vibrio anguillarum)對太平洋牡蠣進(jìn)行刺激，發(fā)現(xiàn)IAP基因表達(dá)量在0～12h逐漸升高，在12h時達(dá)到最高水平，然后從12～48h逐漸下降，也呈現(xiàn)出先升高后下降的趨勢。

本研究共發(fā)現(xiàn)有4個IAP蛋白家族的基因在合浦珠母貝感染溶藻弧菌后表達(dá)變化顯著，這4個基因的表達(dá)量均在感染期間(0～24h)呈現(xiàn)先升后降的趨勢，結(jié)果與上述研究結(jié)果基本一致。其中，合浦珠母貝的BIRC2、BIRC3和BIRC7基因在感染6h時表達(dá)顯著上調(diào)，并均與0h和24h差異顯著(P<0.05)；BIRC4基因的表達(dá)量也在感染6h時明顯增加，并顯著高于感染24h時的表達(dá)量(P<0.05)，但與0h的表達(dá)量差異不顯著(P>0.05)。通過基因功能分析發(fā)現(xiàn)，BIRC2、BIRC3基因富集到了KEGG中的NOD樣受體信號通路、Toll和IMD信號通路以及弓形蟲病等通路中；而BIRC4基因則富集到了泛素介導(dǎo)的蛋白質(zhì)水解信號通路中，BIRC7基因富集到了弓形蟲病信號通路中。

綜上所述，本研究通過利用溶藻弧菌感染合浦珠母貝的轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)分析了IAP蛋白家族的基因表達(dá)變化，發(fā)現(xiàn)BIRC2、BIRC3、BIRC4和BIRC7基因的表達(dá)量發(fā)生顯著變化，并發(fā)現(xiàn)這些基因被富集到了一些免疫相關(guān)的信號通路中，表明IAP參與了合浦珠母貝的免疫應(yīng)答反應(yīng)過程，提示其在貝類非特異性免疫調(diào)節(jié)中發(fā)揮著重要作用。