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        基于BV-2 條件培養(yǎng)基的SH-SY5Y 共培養(yǎng)系統(tǒng),探討丹參酮ⅡA 對內(nèi)毒素誘導(dǎo)神經(jīng)元壞死性凋亡的保護作用#

        2022-05-09 02:59:18馮梓琦巫瑤于洋朱玲萬莉紅
        四川生理科學(xué)雜志 2022年3期

        馮梓琦 巫瑤 于洋 朱玲 萬莉紅△

        (1.明遠學(xué)園——基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)拔尖學(xué)生培養(yǎng)基地(懷德班)2019 級,四川大學(xué)華西基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)與法醫(yī)學(xué)院,四川 成都 610041;2.四川大學(xué)華西基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)與法醫(yī)學(xué)院藥理學(xué)教研室,四川 成都 610041;3.四川大學(xué)華西醫(yī)院神經(jīng)外科,四川 成都 610041)

        膿毒癥相關(guān)性腦?。⊿epsis-associated encephalopathy,SAE)是膿毒癥累及大腦而引起的彌漫性腦功能障礙,臨床上主要表現(xiàn)為躁動、注意力下降、意識改變、睡眠節(jié)律紊亂、譫妄[1]。研究表明SAE 與膿毒癥患者預(yù)后相關(guān),可導(dǎo)致患者長期認知功能障礙[2]。脂多糖(Lipopolysaccharide,LPS)是革蘭陰性菌細胞壁的主要成分,是導(dǎo)致膿毒癥腦病的直接因素[3]。

        壞死性凋亡的概念在2005 年被首次提出,被證實在精密調(diào)控下參與神經(jīng)系統(tǒng)的正常發(fā)育[4]。目前研究發(fā)現(xiàn),炎癥環(huán)境中異常激活的神經(jīng)細胞壞死性凋亡(Necroptosis)與多種神經(jīng)系統(tǒng)疾病相關(guān),如:多發(fā)性硬化、肌萎縮性側(cè)索硬化癥、帕金森癥和阿爾茨海默癥[5]。尤其在神經(jīng)炎癥時,LPS 通過直接結(jié)合小膠質(zhì)細胞上的Toll 樣受體4(Toll-like receptor 4,TLR4)使小膠質(zhì)細胞向促炎M1 樣極化狀態(tài)激活,產(chǎn)生大量的神經(jīng)毒性因子和神經(jīng)免疫炎癥因子作用于神經(jīng)元細胞[6],在Caspase-8 活性被抑制時,受體結(jié)合絲氨酸/蘇氨酸蛋白激酶1(Receptor-interacting protein kinase 1,RIPK1)與受體結(jié)合絲氨酸/蘇氨酸蛋白激酶3(Receptor-interacting protein kinase 3,RIPK3)作用,將混合譜系激酶結(jié)構(gòu)域樣蛋白(Mixed lineage kinase domain-like protein,MLKL)磷酸化激活,使其移位至細胞膜處并破壞膜的完整性[7]。

        丹參酮ⅡA 是從中藥丹參中提取出的脂溶性有效成分,臨床主要用于治療心血管疾病。課題組既往研究發(fā)現(xiàn),丹參酮 ⅡA 對神經(jīng)元具有一定的保護作用,可明顯改善AD 小鼠的認知功能[8]。但目前尚無研究證實丹參酮 ⅡA 對SAE 神經(jīng)元的保護作用,因此本文擬LPS 刺激小膠質(zhì)細胞構(gòu)建條件培養(yǎng)基誘導(dǎo)神經(jīng)元損傷的共培養(yǎng)系統(tǒng),探究丹參酮 ⅡA 對神經(jīng)元活性以及壞死性凋亡通路蛋白MLKL 表達水平的影響。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        1.1.1 試劑

        DMEM(Cytiva,美國),胎牛血清(FBS,gibco,美國),青霉素/鏈霉素(普諾賽,中國武漢),RIPA 裂解液(北京索萊寶科技有限公司,中國北京),CCK8 Assay Kit(PAE×BIO,美國)BCA 蛋白質(zhì)測定試劑盒(上海碧云天生物技術(shù)有限公司,中國上海),聚偏二氟乙烯(PVDF)膜(Millipore,Billerica,MA,USA),抗MLKL 單克隆抗體(1 :1000,Cell Signaling Technology,USA),小鼠單克隆抗β-actin 抗體(1:1000,Cell Signaling Technology,USA)。

        1.1.2 細胞

        小鼠永生化小膠質(zhì)細胞株BV-2 購自武漢普諾賽生命科技有限公司(中國,武漢),人髓神經(jīng)母細胞瘤細胞株SHSY-5Y 購自武漢普諾賽生命科技有限公司(中國,武漢)。

        1.2 方法

        1.2.1 條件培養(yǎng)基為基礎(chǔ)的共培養(yǎng)系統(tǒng)構(gòu)建

        BV-2 細胞采用DMEM 高糖完全培養(yǎng)基(含10%胎牛血清、1%青霉素/鏈霉素)常規(guī)培養(yǎng)后,以每孔104接種于96 孔板,每孔體積100 μL,培養(yǎng)24 h 后加入不同濃度LPS(0、0.01、0.02、0.05、0.1、0.2、0.5、1、2 μg·mL-1)刺激24 h。取BV-2 培養(yǎng)上清液與DMEM 高糖完全培養(yǎng)基(含10%胎牛血清、1%青霉素/鏈霉素)按照體積比1:1 混合,建立共培養(yǎng)系統(tǒng)用于培養(yǎng)SH-SY5Y 細胞。

        1.2.2 CCK8 法測定細胞增殖能力

        以上述共培養(yǎng)系統(tǒng)培養(yǎng)SH-SY5Y 細胞24 h后,每孔加入CCK-8 溶液10 μL。繼續(xù)培養(yǎng)3h 后,用酶標儀(Bio-Tek,美國)測定各組樣品在450 nm 處的吸光度值。

        1.2.3 丹參酮IIA 對SH-SY5Y 細胞活性的影響

        (1)常規(guī)培養(yǎng)SH-SY5Y 后以不同濃度丹參酮IIA(0、0.1、1、5、10、20、40、80、160 μM)刺激24 h,采用1.2.2 中方法測定細胞增殖能力,計算丹參酮IIA 的IC50。

        (2)常規(guī)培養(yǎng)SH-SY5Y,以不同濃度丹參酮IIA(0、0.2、1 μM)預(yù)處理4 h 后,以上述共培養(yǎng)系統(tǒng)繼續(xù)培養(yǎng)SH-SY5Y 細胞24 h,采用1.2.2中方法測定細胞增殖能力。

        1.2.4 蛋白提取及Western blotting

        收集SH-SY5Y 細胞以RIPA 裂解液裂解后在4℃下以12000 rpm 離心10 min 后取上清,稀釋10 倍后用BCA 蛋白質(zhì)測定試劑盒測定蛋白質(zhì)濃度。取蛋白質(zhì)40 μL 在10%SDS-PAGE 中進行電泳分離,并轉(zhuǎn)移到聚偏二氟乙烯(Polyvinylidene fluoride,PVDF)膜,室溫下用5%脫脂牛奶孵化2 h 后以含0.1% Tween 20 的Tris 緩沖鹽水(Tris Buffered Saline with Tween 20,TBST)洗滌三次,每次10 min,然后將PVDF 膜在小鼠抗MLKL 單克隆抗體和小鼠單克隆抗β-actin 抗體中連續(xù)孵育3 h。經(jīng)TBST 洗膜三次后在室溫下加入二抗孵育2 h。使用Western Lightning TM Chemiluminescence Reagent Plus 檢測所有蛋白質(zhì),并使用ImagJ掃描灰度值對結(jié)果進行量化。

        1.3 統(tǒng)計學(xué)分析

        所有數(shù)據(jù)通過GraphPad Prism 8.0 進行分析,計量資料以均數(shù)±標準差()表示,采用oneway ANOVA 方差分析檢驗,其中P<0.05 表示差異具有統(tǒng)計學(xué)差異。

        2 結(jié)果

        2.1 共培養(yǎng)系統(tǒng)條件優(yōu)化

        不同濃度梯度LPS(0、0.01、0.02、0.05、0.1、0.2、0.5、1、2 μg·mL-1)刺激BV-2 小膠質(zhì)細胞后收集上清作為條件培養(yǎng)液,與DMEM 高糖完全培養(yǎng)基(含10%胎牛血清、1%青霉素/鏈霉素)按照體積比1:1 混合建立的共培養(yǎng)系統(tǒng)對SH-SY5Y細胞活性的影響呈現(xiàn)劑量依賴性,即隨LPS 濃度遞增SH-SY5Y 細胞活性逐漸下降,見圖1;LPS的IC50為0.27 μg·mL-1,故確定0.2 μg·mL-1作為后續(xù)試驗所需LPS 濃度。

        圖1 CCK8 法檢測SH-SY5Y 細胞活性

        2.2 LPS 刺激小膠質(zhì)細胞構(gòu)建條件培養(yǎng)系統(tǒng)可誘導(dǎo)神經(jīng)元壞死性凋亡

        LPS 刺激BV-2 構(gòu)建條件培養(yǎng)系統(tǒng)可顯著增加SH-SY5Y 細胞MLKL 蛋白表達水平(P<0.05),見圖2;說明條件共培養(yǎng)系統(tǒng)中SH-SY5Y 神經(jīng)元細胞發(fā)生壞死性凋亡。

        圖2 LPS 刺激小膠質(zhì)細胞構(gòu)建條件培養(yǎng)系統(tǒng)對SH-SY5Y 細胞MLKL 表達水平的影響

        2.3 丹參酮ⅡA 對神經(jīng)元損傷的保護作用

        如圖3-A 所示,隨著丹參酮ⅡA 給藥劑量的增加,SH-SY5Y 細胞活性逐漸下降,其 IC50為7.94 μM,因此丹參酮ⅡA后續(xù)給藥劑量選擇0.2、1 μM。如圖3-B 所示,丹參酮ⅡA 可明顯增加共培養(yǎng)體系中SH-SY5Y 神經(jīng)元細胞活性。光鏡可見條件培養(yǎng)基刺激使神經(jīng)元數(shù)量減少、突起變短甚至消失(圖4-B),而丹參酮ⅡA 預(yù)保護后神經(jīng)元形態(tài)及數(shù)量改變均減輕(圖4-C,D)。經(jīng)WB 測定發(fā)現(xiàn),丹參酮ⅡA 可明顯降低LPS 刺激BV-2構(gòu)建條件培養(yǎng)系統(tǒng)引起的MLKL 上調(diào)(P<0.05),見圖5。

        圖3 CCK8 法測定丹參酮IIA 對SH-SY5Y 細胞活性的影響

        圖4 不同濃度丹參酮IIA 對神經(jīng)元形態(tài)及數(shù)量的影響(×20)

        圖5 不同濃度丹參酮IIA 對神經(jīng)元MLKL 水平的影響

        3 討論

        小膠質(zhì)細胞參與中樞神經(jīng)系統(tǒng)的炎癥反應(yīng)和免疫應(yīng)答。在致炎因子作用下,小膠質(zhì)細胞被激活,呈現(xiàn)促炎表型M1 樣和抗炎表型M2 樣兩種極化狀態(tài)。脂多糖是革蘭陰性菌細胞壁的主要成分,可直接結(jié)合小膠質(zhì)細胞膜上的TLR-4 使其處于促炎的M1 樣極化狀態(tài)[9],通過激活NF-κB 通路,釋放各種炎癥因子,從而對神經(jīng)元細胞造成損傷[6]。在本研究中,先用LPS 對BV-2 進行24 h 刺激模擬體內(nèi)內(nèi)毒素激活小膠質(zhì)細胞,取其含多種炎癥因子的上清液培養(yǎng)SH-SY5Y,排除了神經(jīng)元與小膠質(zhì)細胞接觸及其他復(fù)雜環(huán)境作用的影響,針對性地模擬了SAE 中小膠質(zhì)細胞細胞介導(dǎo)的炎癥環(huán)境所造成的神經(jīng)元損傷。實驗結(jié)果顯示,LPS 間接刺激神經(jīng)元使其增殖能力降低,形態(tài)發(fā)生異常改變、細胞數(shù)量減少。

        神經(jīng)元的壞死性凋亡通路在多種炎性因子作用下被激活,上調(diào)MLKL 激活后破壞膜完整性,形態(tài)異常具有壞死和凋亡的混合特征。壞死性凋亡已被證實在SAE 大鼠模型中參與神經(jīng)元損傷過程,引起中樞功能異常[10]。本研究通過構(gòu)建以條件培養(yǎng)為基礎(chǔ)的共培養(yǎng)體系,在體外驗證了內(nèi)毒素刺激BV-2 產(chǎn)生的含炎癥因子的上清能夠上調(diào)SH-SY5Y 中的MLKL,鏡下神經(jīng)元間聯(lián)系及樹突軸突減少,胞體由圓形多邊形縮小成異常梭形,核凝集固縮,發(fā)生壞死性凋亡。說明在SAE中小膠質(zhì)細胞激活后介導(dǎo)的炎癥環(huán)境即可通過誘導(dǎo)壞死性凋亡造成神經(jīng)元損傷,引起中樞功能異常。

        丹參藥用歷史悠久,具有活血通經(jīng)、祛瘀止痛、清心除煩等功效?,F(xiàn)代藥理學(xué)證明其有保護心血管、抗炎、抗氧化等多種生物學(xué)活性。丹參酮ⅡA 是從中藥丹參中提取出的脂溶性有效成分,屬于菲醌類化合物衍生物,臨床主要用于治療心血管疾病。本研究結(jié)果顯示,在基于LPS 刺激BV-2 的條件共培養(yǎng)環(huán)境中,丹參酮ⅡA 可以減輕SHSY5Y 的形態(tài)異常及數(shù)量減少,能夠下調(diào)炎癥刺激引起的MLKL 高表達,抑制神經(jīng)元發(fā)生壞死性凋亡,緩解小膠質(zhì)細胞介導(dǎo)的炎癥環(huán)境中神經(jīng)元的損傷。

        在本文中,我們通過體外構(gòu)建條件共培養(yǎng)體系,模擬膿毒癥相關(guān)性腦病中內(nèi)毒素激活小膠質(zhì)細胞介導(dǎo)的炎癥環(huán)境,發(fā)現(xiàn)丹參酮ⅡA 可以保護神經(jīng)元免受壞死性凋亡造成的損傷,表明中藥丹參對治療膿毒癥腦病具有較強的潛在臨床應(yīng)用價值。

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