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        三維條件下高糖對牙周膜干細(xì)胞成骨成脂分化潛能的影響

        2022-05-05 08:36:48張怡林安瑩陳發(fā)明
        實用口腔醫(yī)學(xué)雜志 2022年2期
        關(guān)鍵詞:環(huán)境

        張怡林 安瑩 陳發(fā)明

        牙周膜干細(xì)胞(periodontal ligament stem cells,PDLSCs)是一種來源于牙周膜組織的間充質(zhì)干細(xì)胞,具有良好的增殖和多向分化潛能,并且表達(dá)間充質(zhì)干細(xì)胞的表面標(biāo)記物,被認(rèn)為是牙周組織再生的種子細(xì)胞[1-2]。然而研究表明,糖尿病患者的高血糖微環(huán)境可損害干細(xì)胞性能,進(jìn)而阻礙糖尿病患者的組織再生進(jìn)程。有研究發(fā)現(xiàn),糖尿病小鼠來源骨髓間充質(zhì)干細(xì)的增殖能力下降、凋亡水平升高[3-4];另一方面,體外高糖環(huán)境培養(yǎng)的干細(xì)胞也表現(xiàn)出成骨分化潛能減弱[5-6]。因此,高糖環(huán)境下 PDLSCs的多向分化潛能受損,可能是糖尿病患者牙周組織再生困難的關(guān)鍵原因。

        細(xì)胞生活的體內(nèi)環(huán)境中具有廣泛的細(xì)胞-細(xì)胞以及細(xì)胞-細(xì)胞外基質(zhì)的相互作用,調(diào)控著細(xì)胞的生長及代謝活動[7]。但在傳統(tǒng)的體外二維培養(yǎng)條件下,這些相互作用顯著減少,進(jìn)而引起細(xì)胞的形態(tài)、生物學(xué)行為等發(fā)生改變,與細(xì)胞在體內(nèi)的真實狀態(tài)存在明顯差別[8]。因此,構(gòu)建合適的體外培養(yǎng)條件以模擬細(xì)胞生活的體內(nèi)微環(huán)境,是研究高糖環(huán)境下PDLSCs生物學(xué)行為和性能變化的重要基礎(chǔ)。本實驗以PDLSCs為研究對象,利用明膠和谷氨酰胺轉(zhuǎn)移酶材料構(gòu)建體外三維培養(yǎng)條件,觀察高糖環(huán)境對PDLSCs成骨和成脂分化潛能的影響,以期深入探討基于PDLSCs的干細(xì)胞療法在糖尿病患者牙周組織再生中的應(yīng)用前景。

        1 材料與方法

        1.1 材料與儀器

        胎牛血清、高糖DMEM培養(yǎng)基、低糖DMEM培養(yǎng)基(Gibco公司,美國);ALP染料、ALP活性檢測試劑盒(上海碧云天生物技術(shù)有限公司);茜素紅染料、油紅O染料、阿利辛藍(lán)染料(Sigma公司,美國);明膠、谷氨酰胺轉(zhuǎn)移酶(北京唯輝生物有限公司)。Real Time PCR儀(Bio-Rad公司,美國);激光共聚焦顯微鏡、倒置相差顯微鏡(Olympus公司,日本)。

        1.2 實驗方法

        1.2.1 人PDLSCs的分離培養(yǎng) 收集新鮮拔除的第三磨牙或者因其他原因拔除的牙齒,沿著牙根小心沖洗血跡,去除牙石和牙齦組織。將牙周膜刮下,剪成小塊(約1mm×1mm×1mm),用膠原酶消化45min后離心,用低糖DMEM培養(yǎng)基重懸組織塊并轉(zhuǎn)移到六孔板中,于37℃、5%CO2條件下培養(yǎng),每兩天更換培養(yǎng)基。選擇長勢良好的3~5代細(xì)胞進(jìn)行后續(xù)實驗。

        1.2.2 三維培養(yǎng)條件的構(gòu)建 根據(jù)材料的使用說明書,首先將明膠置于55℃水浴鍋中預(yù)熱約5 min至明膠呈液態(tài),在超凈工作臺上靜置5 min至室溫,然后向谷氨酰胺轉(zhuǎn)移酶粉末中加入100μL無菌ddH2O。使用胰酶消化細(xì)胞,細(xì)胞計數(shù)后將2×105個細(xì)胞轉(zhuǎn)移到無菌的1.5 mL離心管中,離心沉淀細(xì)胞后棄去培養(yǎng)基,按照2×106個細(xì)胞/mL膠加入100μL明膠后重懸細(xì)胞,然后按照明膠:谷氨酰胺轉(zhuǎn)移酶=20∶1的比例加入5μL谷氨酰胺轉(zhuǎn)移酶。吹打混合后將20μL混合液接種到24孔培養(yǎng)板(對于鬼筆環(huán)肽染色,將20 μL混合液接種于共聚焦小皿)中,將培養(yǎng)板置于孵箱中進(jìn)行交聯(lián)反應(yīng)約45 min。待膠凝固后,向每個培養(yǎng)孔中加入2 mL完全培養(yǎng)基。2~3 d更換一次培養(yǎng)基。

        1.2.3 鬼筆環(huán)肽染色 細(xì)胞在三維培養(yǎng)條件中培養(yǎng)48 h后棄去培養(yǎng)基,用4%多聚甲醛溶液固定細(xì)胞30 min。然后使用0.5%的Trixon 100溶液透析細(xì)胞15 min,用PBS溶液清洗,加入鬼筆環(huán)肽染液對細(xì)胞骨架進(jìn)行染色30 min,再次用PBS溶液清洗。然后加入DAPI溶液對細(xì)胞核進(jìn)行染色15min,使用共聚焦顯微鏡觀察細(xì)胞的伸展情況。

        1.2.4 成骨和成脂誘導(dǎo) 細(xì)胞在三維培養(yǎng)條件中培養(yǎng),待細(xì)胞融合至60%~70%后換成相應(yīng)的成骨或者成脂誘導(dǎo)液。對照組(CON組)誘導(dǎo)液的葡萄糖濃度為5.5 mmol/L,高糖處理組(HG組)誘導(dǎo)液的葡萄糖濃度為 25 mmol/L(糖濃度參考文獻(xiàn)[4,9-10])。成骨或成脂誘導(dǎo)液每2 d更換一次。

        1.2.5 ALP染色和活性檢測 成骨誘導(dǎo)第7天,收集培養(yǎng)基,用PBS清洗后加入4%多聚甲醛溶液固定細(xì)胞30min,然后用ALP染料染色15~30min,鏡下拍攝照片。將收集的培養(yǎng)基離心5 min,取上清進(jìn)行ALP活性檢測。

        1.2.6 茜素紅染色和礦化結(jié)節(jié)定量 成骨誘導(dǎo)第21天,棄去培養(yǎng)基,用PBS清洗后加入4%多聚甲醛溶液固定細(xì)胞30 min,然后用茜素紅染料染色5~10 min,鏡下拍攝照片。用10%十六烷基吡啶溶解礦化結(jié)節(jié),在560 nm處檢測其吸光度值,進(jìn)行礦化結(jié)節(jié)定量。

        1.2.7 油紅O染色和脂滴定量 成脂誘導(dǎo)第21天,棄去培養(yǎng)基,用PBS清洗后加入4%多聚甲醛溶液固定細(xì)胞30min,然后使用油紅O染料染色15~30min,鏡下拍攝照片。用異丙醇溶解脂滴,在560 nm處檢測其吸光度值,進(jìn)行脂滴定量。

        1.2.8 實時定量PCR(qRT-PCR)檢測 使用TRIzol裂解細(xì)胞并提取RNA后,使用逆轉(zhuǎn)錄試劑將提取的RNA逆轉(zhuǎn)錄成cDNA,對所得的cDNA進(jìn)行聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)。成骨和成脂相關(guān)引物序列見表1。

        表1 引物序列Tab 1 Primer sequences

        1.3 統(tǒng)計學(xué)分析

        所有的實驗數(shù)據(jù)都至少包括3個生物學(xué)重復(fù),每個生物學(xué)重復(fù)包括3次技術(shù)重復(fù)。數(shù)據(jù)采用Graphpad Prism 8軟件進(jìn)行統(tǒng)計,用±s表示。采用獨立樣本t檢驗對兩組間差異進(jìn)行比較,P<0.05則認(rèn)為有統(tǒng)計學(xué)差異。

        2 結(jié) 果

        2.1 人PDLSCs培養(yǎng)與鑒定

        人PDLSCs培養(yǎng)14 d后,經(jīng)甲苯胺藍(lán)染色可見藍(lán)紫色的細(xì)胞集落(圖1);CCK-8檢測結(jié)果顯示這些細(xì)胞具有體外增殖能力(圖1)。經(jīng)成骨、成脂或成軟骨誘導(dǎo)后,茜素紅染色可見紅色的礦化結(jié)節(jié)、油紅O染色可見紅色的脂滴、阿利辛藍(lán)染色可見藍(lán)色的成軟骨細(xì)胞(圖2)。流式細(xì)胞術(shù)結(jié)果顯示這些PDLSCs高表達(dá)間充質(zhì)干細(xì)胞表面標(biāo)記物(CD105、CD146),低表達(dá)CD31、CD34、CD45(圖 2)。

        圖1 PDLSCs的克隆形成實驗和CCK-8實驗Fig 1 Colony forming assay and CCK-8 assay of PDLSCs

        圖2 PDLSCs的多向分化潛能和免疫表型Fig 2 The multi-lineage differentiation potential and immunophenotypes of PDLSCs

        2.2 三維培養(yǎng)條件下PDLSCs的形態(tài)

        倒置顯微鏡可見,三維培養(yǎng)條件下PDLSCs呈圓形分層排列(圖3)。鬼筆環(huán)肽染色結(jié)果顯示,三維培養(yǎng)條件下細(xì)胞呈圓球形,細(xì)胞膜緊密地圍繞在細(xì)胞核的周圍(圖 3)。

        圖3 三維培養(yǎng)條件下PDLSCs的形態(tài)特點 (×200)Fig 3 The morphological feature of PDLSCs under 3D culture (×200)

        2.3 三維培養(yǎng)條件下高糖環(huán)境對PDLSCs成骨分化的影響

        與CON組相比,HG組ALP陽性細(xì)胞減少、細(xì)胞的 ALP活性降低(P<0.001)(圖 4);形成的礦化結(jié)節(jié)數(shù)量減少(P<0.001)(圖 4)。qRT-PCR結(jié)果顯示,HG組 PDLSCs中成骨相關(guān)基因 RUNX2(P<0.05)、BMP2(P<0.05)和 OCN(P<0.01)表達(dá)顯著降低,Col-1表達(dá)有所降低,但未見統(tǒng)計學(xué)差異(圖4)。

        圖4 三維培養(yǎng)條件下高糖環(huán)境對PDLSCs成骨分化的影響Fig 4 The effects of high glucose on the osteogenic differentiation of PDLSCs under 3D culture

        2.4 三維培養(yǎng)條件下高糖環(huán)境對PDLSCs成脂分化的影響

        油紅O染色和脂滴定量的結(jié)果顯示,與CON組相比,HG組 PDLSCs形成的脂滴增加(P<0.01)(圖 5)。qRT-PCR結(jié)果顯示,HG組PDLSCs中成脂相關(guān)基因Adiponectin表達(dá)顯著升高(P<0.01),PPARG表達(dá)有所升高,但未見統(tǒng)計學(xué)差異(圖5)。

        圖5 三維培養(yǎng)條件下高糖環(huán)境對PDLSCs成脂分化的影響Fig 5 The effects of high glucose on the adipogenic differentiation of PDLSCs under 3D culture

        3 討 論

        人體內(nèi)的細(xì)胞生活在三維立體的環(huán)境中,細(xì)胞與相鄰細(xì)胞之間、細(xì)胞與細(xì)胞外基質(zhì)之間密切接觸、相互影響,共同調(diào)控著細(xì)胞的生命活動[11-12]。目前研究者們通常使用二維培養(yǎng)條件來進(jìn)行體外細(xì)胞研究,這種平面培養(yǎng)條件與細(xì)胞生活的體內(nèi)微環(huán)境存在明顯差別,可能造成細(xì)胞生長狀態(tài)的差異[13]。本實驗借助明膠材料和谷氨酰胺轉(zhuǎn)移酶來構(gòu)建體外三維細(xì)胞培養(yǎng)條件,以更好地模擬體內(nèi)細(xì)胞生活的微環(huán)境;本研究發(fā)現(xiàn),三維培養(yǎng)條件下PDLSCs呈分層排列、沒有向周圍形成的突起,且細(xì)胞膜緊密地圍繞在細(xì)胞核周圍。三維條件下細(xì)胞的這種形態(tài)特征與其在二維條件下呈單層排列并向四周伸出突起樣結(jié)構(gòu)的形態(tài)存在明顯差異[8]。有研究發(fā)現(xiàn),三維培養(yǎng)條件下細(xì)胞高度聚縮的形貌有利于降低其對外界不利刺激的敏感度,提高細(xì)胞的存活率,更接近細(xì)胞在體內(nèi)的狀態(tài)[12];一些研究也發(fā)現(xiàn),三維支架材料中培養(yǎng)的脂肪間充質(zhì)干細(xì)胞緊縮成圓球形,體積減小,其成軟骨分化潛能也明顯增強(qiáng)[14]。與之前的研究相似,本實驗的結(jié)果表明體外三維條件下細(xì)胞的形態(tài)和伸展情況與傳統(tǒng)的二維條件下存在明顯差異,這些變化在一定程度上可能影響細(xì)胞的生物學(xué)行為及其對外界刺激的反應(yīng)。因此,構(gòu)建合適的體外培養(yǎng)條件以模擬體內(nèi)微環(huán)境,是探索高糖環(huán)境對細(xì)胞多向分化性能影響的重要基礎(chǔ)。

        良好的成骨分化潛能是牙周膜干細(xì)胞應(yīng)用于牙周組織再生的關(guān)鍵。另外大量研究表明,高血糖微環(huán)境是糖尿病引起細(xì)胞性能受損的關(guān)鍵因素[15]。因此,本實驗在三維培養(yǎng)條件的基礎(chǔ)上,通過構(gòu)建體外高糖環(huán)境,進(jìn)一步探索三維培養(yǎng)條件下高糖環(huán)境對PDLSCs成骨和成脂分化潛能的影響。結(jié)果顯示,高糖環(huán)境下細(xì)胞形成的礦化結(jié)節(jié)數(shù)量減少、成骨相關(guān)基因的表達(dá)降低,表明高糖環(huán)境下PDLSCs的成骨分化減弱;另一方面,高糖環(huán)境下PDLSCs形成的脂滴增加、成脂相關(guān)基因的表達(dá)升高,表明高糖環(huán)境下PDLSCs的成脂分化增強(qiáng)。和本研究的結(jié)果相似,有研究發(fā)現(xiàn)體外高糖環(huán)境下培養(yǎng)的干細(xì)胞表現(xiàn)出增殖和成骨分化潛能受損[16-17],而成脂分化潛能增強(qiáng)[18];但也有一些研究發(fā)現(xiàn),高糖環(huán)境可促進(jìn)小鼠成骨前體細(xì)胞的成骨分化[19]。本實驗通過構(gòu)建體外三維培養(yǎng)條件,發(fā)現(xiàn)高糖環(huán)境可抑制PDLSCs的成骨分化并促進(jìn)其成脂分化,這些結(jié)果有望進(jìn)一步揭示高糖環(huán)境對干細(xì)胞性能的損害。

        本實驗初步發(fā)現(xiàn)在體外三維培養(yǎng)條件下細(xì)胞的形態(tài)特征與傳統(tǒng)二維培養(yǎng)條件下具有顯著差異。進(jìn)一步證實在體外三維培養(yǎng)條件下高糖環(huán)境可抑制PDLSCs的成骨分化,而促進(jìn)其成脂分化,提示PDLSCs應(yīng)用于糖尿病人群牙周組織再生可能面臨的風(fēng)險。采用合適的策略和手段抵抗高糖環(huán)境對PDLSCs成骨分化潛能的損害,是糖尿病人群牙周組織再生的關(guān)鍵。此外,有研究發(fā)現(xiàn),高糖環(huán)境下細(xì)胞的 AMPK、Wnt/β-catenin等通路發(fā)生改變[20-21]。因此,關(guān)于高糖環(huán)境影響細(xì)胞性能的作用機(jī)制還有待深入研究,以期為糖尿病人群牙周組織再生策略的制訂提供參考。

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